LAPORAN PRAKTIKUM

BIOKIMIA 2

ACARA 1

UJI SIFAT FISIK DAN KIMIA CAIRAN TUBUH

(AIR LIUR & EMPEDU)

DISUSUN OLEH

APRIANA SYAFITRI

G1C 011 002

PROGRAM STUDI KIMIA

FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM

UNIVERSITAS MATARAM

2015

ACARA I

UJI SIFAT FISIK DAN KIMIA CAIRAN TUBUH

(AIR LIUR & EMPEDU)

A. PELAKSANAAN PRAKTIKUM

1. Tujuan Praktikum

Untuk mengetahui sifat fisik dan kimia dari air liur dan empedu.

2. Waktu Praktikum

Senin, 02 April 2015

3. Tempat Praktikum

Lantai III, Laboratorium Kimia, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Mataram.

B. LANDASAN TEORI

Saliva atau ludah adalah cairan yang bersifat alkali. Ludah mengandung musin, enzim ptialin, dan sedikit zat padat. Ludah bekerja secara fisis dan kimiawi. Kerja fisisnya ialah membasahi mulut, membersihkan lidah dan memudahkan orang berbicara. Ludah membasahi makanan agar mudah untuk di telan. Dengan membasahi makanan itu, ludah melarutkan beberapa unsur, sehingga memudahkkan kerja kimiawi terhadapnya. Kerja kimiawi ludah disebabkan enzim ptialin (amilase ludah) yang di dalam lingkungan alkali bekerja atas zat gula atau zat tepung yang telah masak (Pearce, 2006 :184).

Air liur terdiri dari air, elektrolit dan molekul organik seperti asam amino, peptida, protein, glikoprotein dan glikolipid berasal dari pembuluh darah lokal yang berasal dari karotis arteries.6 Air liur mengandung biomarker yang berasal dari serum, cairan sulkus gingiva dan mukosa transudat. Banyak analit yang terkait dengan penyakit periodontal telah terdeteksi dalam air liur (Trivedi, 2012).

Terdapat tiga kelenjar saliva yaitu kelenjar sublingual, kelenjar submaksilar, dan kelenjar parotid. Kelenjar sublingual adalah kelenjar saliva yang paling kecil, terletak di bawah lidah bagian depan. Kelenjar submaksilar terletak di belakang kelenjar sublingual dan lebih dalam. Kelenjar parotid ialah kelenjar saliva paling besar dan terletak di bagian mulut pada bagian depan telinga. Setiap hari sekitar 1-1,5 liter saliva dikeluarkan oleh kelenjar saliva. Saliva terdiri atas 99,24% air dan 0,58% ion-ion Ca2+, Mg2+, Na+, K+, PO43-, Cl-, HCO3-, SO42-, dan zat-zat organik seperti musin dan enzim amilase (ptialin). Musin suatu glikoprotein dikeluarkan oleh kelenjar sublingual dan kelenjar submaksilar, sedangkan ptialin dikeluarkan oleh kelenjar parotid. Liur mengandung amilase dan lipase.-amilase liur mampu membuat pati dan glikogen dihidrolisis menjadi maltosa dan oligosakarida lain dengan menyerang ikatan glikosidat (1-4). Amilase liur akan segera terinaktivasi pada pH 4,0 atau kurang, sehingga kerja pencernaan makanan di dalam mulut akan terhenti begitu lingkungan lambung yang asam menembus partikel makanan (Murray, 2009: 632).

-amilase adalah endoenzyme yang melakukan beberapa serangan terhadap bagian linear dari AM dan AP dengan maltosa dan maltotriosa sebagai pokok produk rantai pendek hanya sejumlah kecil glukosa diproduksi. Studi kinetik menggunakan Malto-oligosakarida sebagai substrat digunakan untuk menentukan energi bebas yang mengikat (G) yang berhubungan dengan masing-masing lima sisi. Nilai G menjadi lebih negatif (kira-kira 5to 16 kJ / mol), yaitu mengikat menjadi lebih kuat, sebagai sub-situs 1-5 menjadi penuh dengan residu glukosa dalam substrat. Energi ikat situs 3 is17.6 kJ / mol dan kondisi yang tidak menguntungkan ini mungkin muncul dari distorsi paksa cincin glukan pada mengikat. Energi ikatannya mirip dengan yang diamati pada sisi di lisozim. Total energi bebas ikatan yang diperoleh dari masing-masing subsite (Butterworth, dkk, 2011).

Kantung empedu atau kandung empedu (Bahasa Inggris: gallbladder) adalah organ berbentuk buah pir yang dapat menyimpan sekitar 50 ml empedu yang dibutuhkan tubuh untuk proses pencernaan. Pada manusia, panjang kantung empedu adalah sekitar 7-10 cm dan berwarna hijau gelap - bukan karena warna jaringannya, melainkan karena warna cairan empedu yang dikandungnya. Organ ini terhubungkan dengan hati dan usus dua belas jari melalui saluran empedu. (Vogel, 117 : 1985).

Cairan empedu dibuat dalam hati dan disimpan dalam kantong empedu apabila tidak digunakan. Kantong empedu ini dapat melekat dalam hati. Pada waktu ada proses pencernaan makanan kantung empedu berkontraksi, dan mengeluarkan cairan empedu ke dalam duodenum, melalui saluran yang menyatu dengan saluran cairan pangkreas pada bagian akhir. Cairan empedu merupakan cairan jernih, berwarna kuning, agak kental dan berasa pahit. Cairan empedu mengandung zat-zat anorganik yaitu, HCO3-, Cl-, Na+ dan K +, serta zat-zat organic yaitu asam-asam empedu, bilirubin, kolesterol (Poedjiadi, 244 : 1994).

Asam empedu tersusun atas asam empedu primer yang terdiri dari asam kolat dan kenedeoksikolat dan asam empedu sekunder yang terdiri dari asam deoksikolat dan litokolat. Jumlah gugus hidroksil pada masing-masing asam empedu menunjukkan sifat hidrofobik dan kepolaran asam empedu. Pengikatan asam empedu oleh serat pangan dipengaruhi sifat kehidrofobikan asam empedu, hal ini dikarenakan pengikatan asam empedu oleh serat pangan melalui interaksi hidrofobik. Asam kolat memiliki 3 gugus hidroksil merupakan asam empedu yang kurang hidrofobik dan kurang terikat oleh serat pangan yang tak larut sedangkan asam deoksikolat memiliki 2 gugus hidroksil. Asam deoksikolat adalah salah satu asam empedu yang bersifat hidrofobik, dan asam litokolat memiliki 1 gugus hidroksil. Sifat hidrofobik dari asam deoksikolat dapat mempercepat pengikatan asam empedu oleh serat pangan, karena pengikatan asam empedu oleh serat pangan terjadi melalui interaksi hidrofobik (Rizkiyanto, 2013).

Asam asam empedu disekresikan ke usus dalam kombinasi dengan garam garam natrium dari glisin atau taurina (H2NCH2CH2SO3H). Ikatan asam empedu asam amino itu berupa ikatan amida antara gugus karboksil asam empedu dan gugus amino dari asam amino. Dalam bentuk gabungan ini, asam empedu asam amino berperan untuk menjaga agar lipid mengemulsikan dalam usus itu, sehingga melancarkan pencernaan lipid lipid ini (Fessenden, 1982: 427).

Garam empedu adalah sebuah senyawa amphipatik. Struktur amphipatik inilah yang menyebabkan garam empedu mampu mengemulsifikasi lemak dan secara lansung mempengaruhi kehidupan mikroorganisme dalam saluran pencernaan khususnya ketika berada di usus halus. Hal ini berhubungan dengan fungsi dari garam empedu didalam usus halus yaitu sebagai emulgator pada proses pencernaan lemak (emulsifikasi lemak). Emulsifikasi lemak merupakan proses awal darimetabolisme lemak yaitu proses pencampuran (emulsi) lemak yang berukuran besar menjadi ukuran lebih kecil, sehingga lemak yang telah diemulsifikasikan tadi pada larut dalam air (Umniyati, dkk, 2011).

C. ALAT DAN BAHAN

1. Alat Praktikum

a. Tabung reaksi

b. Penjepit tabung reaksi

c. Pipet volume 2 mL

d. Pipet volume 5 mL

e. Rubber bulb

f. Rak tabung reaksi

g. Pipet tetes

h. Gelas kimia 250 mL

i. Gelas kimia 600 mL

j. Corong kaca 75 mm

k. Spatula

l. Kertas saring

2. Bahan Praktikum

a. Air liur

b. Empedu

c. Larutan NaOH 10%

d. CuSO4 0,1 M

e. Reagen Molisch(aq)

f. H2SO4 Pekat

g. HNO3 Pekat

h. Larutan CH3COOH 2M

i. Larutan HCl 1M

j. Larutan BaCl2 2%

k. Larutan Sukrosa 5%

l. Minyak Goreng

m. Aquades

n. pH stick

D. SKEMA KERJA

1. Air Liur

a. Penetapan pH Air liur

(Air Liur)

Diukur pH dengan pH stick

(Hasil)

b. Uji Biuret

(2 mL (30 tetes) Air liur)

Dimasukkan dalam tabung reaksi

+2mL NaOH 10%

(Hasil) (Hasil)

+beberapa tetes CuSO4 0,1M

c. Uji Molisch

(2 mL (30 tetes) Air liur HasilHasil)

Dimasukkan dalam tabung reaksi

+2 tetes pereaksi molish dan dicampur dengan baik

Dimiringkan tabung reaksinya

+2 mL H2SO4 pekat melalui dinding

d. Uji Presipitasi

(2 mL (30 tetes) Air liurHasil)

+1 tetes asam asetat encer dengan baik

e. (2 mL (30 tetes) Air liur)Uji Sulfat

Dimasukkan ke tabung reaksi

+3-5 tetes HCl 1M

(Hasil)

+5-10 tetes BaCl2 2%

(Hasil)

2. Empedu

a. (EmpeduHasil)`Sifat Empedu

Diperhatikan dan dicatat sifat fisik empedu

b. Preparasi Empedu

(EmpeduHasil)

Dilumatkan

+ aquades

disaring

c. Uji Gmelin

(Tabung reaksi )

Dimasukkan 3 mL HNO3 Pekat

+ 3 mL larutan empedu encer (melalui dinding tabing reaksi)

(Hasil )

d. Uji Pettenkofer

(5 mL larutan empedu encerHasilHasil)

Dimasukkan ke dalam tabung reaksi

+ 5 tetes larutan sukrosa 5%

+ 3 mL H2SO4 pekat melalui

dinding tabung

e. Fungsi Empedu Sebagai Emulgator

(2 tabung reaksiTabung ITabung II+ 3mL aquades+3mL minyak goreng+3mL larutan empedudikocokHasilHasil+ 3mL aquades+3mL minyak gorengdikocok)

E. HASIL PENGAMATAN

1. Uji sifat fisik dan kimia Air Liur

Air Liur

No

Langkah Kerja

Hasil Pengamatan

1

Penetapan pH Air liur

Diukur pH air liur tanpa penyaringan.

pH = 8

2

Uji Biuret

2 ml air liur

+ 2 ml NaOH 10%

+ CuSO4, Dikocok

Warna awal air liur putih keruh,

Setelah ditambah larutan NaOH warna menjadi bening dan terdapat gumpalan putih melayang.

Selanjutnya warna larutan menjadi ungu bening dan terdapat endapan biru di dasar tabung

3

Uji Molisch

2 ml air liur + 2 tetes pereaksi molisch

+ 2 ml H2SO4 melalui dinding tabung

Warna air liur tetap namun terdapat gumpalan kecil berwarna merah maroon

Kemudian terbentuk 3 lapiran larutan bagian atas berwarna keruh, tengahnya coklat, dan bagian bawah berwarna bening hijau.

Bagian tengah merupakan cincin.

4

Uji Presipitasi

2 ml Air liur yang sudah disaring + CH3COOH encer

Warna air liur yang tadinya putih berubah menjadi bening

5

Uji Sulfat

1 ml air liur yang telah disaring + 3-5 tetes HCl

+ 5-10 tetes BaCl2 2%

Warna air liur tetap putih keruh, namun terdapat gumpalan berwarna bening

Setelah ditambah BaCl2 tetap terdapat gumpalan bening

2. Uji sifat fisik dan kimia Empedu Ayam

Empedu

No

Langkah kerja

Hasil Pengamatan

1

Sifat Empedu

Warna hijau tua (hijau lumut), terbungkus oleh kantung yang berisi cairan empedu.

Bau amis

Ada selaput warna kuning

2

Preparasi Empedu

Dilumatkan

Ditambahkan aquades

Disaring

Warna empedu setelah dilumatkan adalah hijau tua.

Setelah ditambah aquades warna empedu tetap namun lebih encer.

Warna empedu menjadi lebih muda dari sebelumnya

3

Uji Gmelin

3 ml HNO3 pekat

+ 3 ml empedu melalui dinding tabung reaksi

Warna awal HNO3 adalah bening

Setelah ditambahkan 3ml larutan empedu, warnanya menjadi hijau tua kemudian terbentuk 3 lapisan. Lapisan bawah berwarna bening (warna HNO3), tengah membentuk lapisan coklat dan bagian atasnya berwarna hijau toska (empedu)

4

Uji Pattenkofer

5 ml empedu encer + 5 tetes sukrosa 5 %

+ 3 ml asam H2SO4 pekat

Warna larutan empedu menjadi hijau tua (tidak terjadi perubahan).

Setelah ditambahkan asam sulfat pekat, warna empedu menjadi hijau toska kemudian berubah menjadi hijau tua dan terakhir warnanya berubah menjadi ungu.

5

Fungsi Empedu sebagai emuglator

Tabung 1 : 3 ml air suling + 3 ml minyak goreng

Campuran minyak dan air ditambahkan 3ml larutan empedu

Tabung II : 3 ml air suling + 1 tetes minyak

Warna awal aquades bening dan warna awal minyak goreng kuning bening, kemudian setelah aquades dan minyak goreng dicampur dan dikocok, terbentuk 2 lapisan yang tidak saling bercampur karena perbedaan kepolaran.

Setelah ditambahkan larutan empedu minyak dan air bercampur dan terdapat butiran kecil didasar tabung serta terdapat cincin putih dibagian atas.

Warna awal aquades bening dan warna awal minyak goreng kuning bening, kemudian setelah aquades dan minyak goreng dicampur dan dikocok, terbentuk 2 lapisan yang tidak saling bercampur karena perbedaan kepolaran.

F. ANALISIS DATA

1. Air Liur

a. Uji Biuret

b. Uji Molish

c. Uji Presipitasi

Na+ + CH3COOH CH3COONa (mengendap)

d. Uji Sulfat

BaCl2 + SO42- BaSO4(s) + 2 Cl-

Penguraiannya:

BaCl2 + HCl Ba2+ + 3Cl- + H+

Ba2+ + SO42- BaSO4(s) (endapan putih)

2. Empedu

a. Sifat-sifat empedu

Berbentuk bulat memanjang (seperti kantong)

Terdapat cairan hijau kehitaman (hijau pekat) di dalamnya dengan ditutupi oleh selaput bening bagian luarnya.

Berbau amis jika didiamkan beberapa jam.

b. Uji Gmelin

Bilirubin + HNO3 kompleks senyawa warna-warni

c. Uji Pattenkofer

d. Fungsi Empedu sebagai Emulgator

Garam-garam empedu + minyak micelles

Micelles + air larut

G. PEMBAHASAN

Praktikum kali ini dilakukan percobaan yang bertujuan untuk menguji sifat fisik dan kimia cairan tubuh. Dalam praktikum kali ini, cairan tubuh yang digunakan adalah air liur dan empedu.

Cairan liur adalah campuran hasil sekresi berasal dari kelenjar submaksilaris, sublingualis, parotis serta kelenjar pipi. Kelenjar kadar zat lendirnya sedikit akan tetapi kaya akan enzim amilase yang dikenal dengan nama ptialin. Enzim dapat mengekskresi obat-obatan tertentu seperti alkohol dan morfin. Pada saliva (air liur) dilakukkan beberapa pengujian yaitu penetapan pH,uji Biuret, uji Molisch, uji Presipitasi, dan uji Sulfat.

Pada percobaan yang pertama yaitu uji air liur,dilakukan penetapan pH air liur dimana indikator universal dicelupkan ke dalam air liur yang tidak disaring dan didapatkan pH air liur =8. Pada umumnya pH air liur manusia adalah 6,6-7,05 jika masih segar. Hal ini dikarenakan air liur memiliki Pada percobaan tersebut didapatkan pH 8 karena air liur yang diuji sudah terkontaminasi dengan udara luar, inilah yang menyebabkan PH air liur bertambah. Karena air liur jika dibiarkan agak lama pH-nya dapat meningkat karena kehilangan CO2.

Pada uji Biuret dan Uji Molisch,air liur tidak disaring supaya semua bahan atau kandungan yang ada didalamya utuh atau alami. Pada percobaan kedua ini dilakukan uji biuret. Uji biuret ini merupakan metode yang digunakan untuk menentukan jumlah protein terlarut dalam air liur. Pereaksi biuret terdiri dari CuSO4 dalam basa kuat. Pereaksi ini mengikat ikatan peptida pada sampel. Sampel harus mengandung minimal dua ikatan peptida. Jika terdapat peptida maka warna larutan akan berubah menjadi ungu. Perubahan warna sesuai dengan kadar protein dalam larutan sampel. Semakin tinggi kadar protein sampel warna larutan semakin gelap. Warna awal air liur berwarna putih keruh kemudian di tambah dengan NaOH 10%, larutan berubah menjadi bening dan terdapat butiran-butiran dan terdapat gumpalan putih melayang. Penambahan larutan NaOH berfungsi untuk memberikan suasan basa dalam larutan dimana pada pereaksi biuret dalam suasana basa akan bereaksi dengan polipeptida. Setelah itu di tambahkan larutan CuSO4, dan menunjukkan hasil dengan berubahnya warna larutan menjadi ungu dan terdapatn endapan berwarna biru di dasar tabung. Perubahan warna ini terjadi karena dengan adanya suasana basa, larutan CuSO4dalam bentuk Cu2+ dapat bereaksi dengan ikatan peptide protein. Protein melarutkan hidroksida tembaga untuk membentuk kompleks warna ungu. Reaksi pembentukan warna ini dapat terjadi pada senyawa yang mengandung gugus karbonil atau amina yang terikat pada asam amino yang terkandung dalam protein. Perubahan warna pada larutan ini menunjukkan adanya kandungan protei pada saliva.

Uji molisch bertujuan untuk mengetahui ada tidaknya karbohidrat yang terkandung di dalam saliva. Pereaksi Molisch terdiri atas larutan naftol dalam alkohol. Warna awal air liur berwarna putih keruh kemudian setelah ditambahkan pereaksi molisch larutan tetap berwarna putih keruh namun terbentuk gumpalan melayang berwarna merah maroon. Selanjutnya campuran larutan ditambahkan asam sulfat melalui dinding tabung. Hasil dari penambahan ini yaitu terbentuk tiga lapisan larutan. Lapisan atas berwarna putih keruh, tengah membentuk cincin coklat keunguan dan lapisan bawah berwarna hijau bening. Adanya cincin ungu yang terbentuk menunjukan hasil uji yang positif untuk uji molisch. Dimana cincin ungu yang terbentuk merupakan hasil reaksi kondensasi antara hidroksimetilfurfural dengan -naftol (Poedjadi, 1994). Hidroksimetilfurfural terbentuk dari reaksi dehidrasi dengan H2SO4 dengan gula heksosa. Hal ini dikarenakan adanya karbohidrat yang dapat berupa maltose atau glukosa (yang merupakan gula heksosa) hasil pemecahan amilum oleh enzim maltase yang masih tersisa dari proses pencernaan makanan. Hasil positif pada uji molisch menunjukkan adanya kandungan karbohidrat dalam protein.

Percobaan keempat yaitu uji presipitasi pada air liur yang bertujuan untuk mengetahui adanya protein/lipoprotein di dalam saliva. Dalam uji ini digunakan asam asetat untuk denaturasi protein. Adanya denaturasi protein menyebabkan terjadinya penggumpalan protein karena adanya kerusakan pada protein tersebut. Air liur yang ditambahkan asam asetat encer pada uji presipitasi menghasilkan endapan putih. Hal ini terjadi karena adanya koagulasi dari melekul-molekul yang berupa protein (misalnya enzim amilase) yang terkandung pada air liur. Dimana protein pada penambahan asam akan menyebabkan terjadinya koagulasi. Proses koagulasi terjadi karena ion-ion H+ dari asam akan terikat pada gugus-gugus yang bermuatan negatif sehingga terjadi perubahan pengutuban dari molekul protein. Perubahan pengutuban tersebut menyebabkan perubahan konformasi dari protein atau rusaknya struktur tersier (jembatan disulfida) atau kuarterner protein. Berdasarkan hasil percobaan setelah air liur ditambahkan asam asetat tidak terjadi perubahan. Hal ini deisebabkan kerana pH air liur pada awalnya adalah 8 dan tergolong basa lemah sementara asam asetat yang ditambahkan hanya satu tetes sehingga pH di dalam campuran larutan belum mampu mencapai pH asam sehingga tidak terjadi penggumapalan.

Uji sulfat, yaitu uji sulfat dilakukan bertujuan untuk mengetahui adanya zat anorganik sulfat di dalam saliva. Berdasarkan konsepnya, untuk pengujian sulfur, dengan adanya penambahan BaCl2 ke dalam sampel yang telah diberikat HCl, akan menyebabkan terjadinya disosiasi atau penguraian dari BaCl2 menjadi ion-ionnya yaitu Ba2+ dan Cl-, dengan adanya ion sulfat didalam saliva akan menyebabkan terjadinya suatu reaksi antara ion SO42- dengan Ba2+ membentuk BaSO4 yang berupa endapan putih, halus air liur berwarna bening di tambah HCl, warna larutan tetap bening dan terdapat endapan putih dan terbentuk seperti gel, Kemudian di tambah + BaCl2, terbentuk Warna larutan berubah menjadi bening dan terdapat gumpalan putih. Berdasarkan hasil praktikum yang dilakukan menunjukkan hasil negatif dan tidak sesuai dengan yang diharapkan karena tidak terbentuknya endapan berwarna putih. Diperolehnya hasil yang negatif menunjukkan bahwa tidak terdapat sulfat pada saliva tersebut. Hal ini kemungkinan disebabkan oleh kondisi dari saliva yang basa (pH = 8), yang diperoleh dari praktikan. Dengan kondisi basa dari saliva yang digunakan menyebabkan konsentrasi sulfat pada air liur bekurang (sangat sedikit) atau bahkan tidak ada sama sekali.

Percobaan kedua yaitu pengujian dengan menggunakan sampel uji berupa cairan empedu yang diperoleh dari empedu ayam. Pengamatan yang dilakukan terhadap empedu bertujuan untuk mengetahui sifat fisika maupun kimia dari empedu. Berdasarkan hasil pengamatan untuk sifat fisika dari empedu dapat dilihat dari bentuk fisiknya, dimana empedu ayam yang digunakan berupa kantong berwarna hijau lumut yang dilapisi oleh membran transparan, dimana warna hijau lumut yang terlihat dari empedu tersebut berasal dari cairannya. Berdasarkan referensi yang ada, cairan empedu (hijau lumut) dihasilkan dari hati dan disimpan didalam kandung empedu yang memiliki panjang sekitar 5-7 cm dan merupakan membran berotot. Kandung empedu terbagi ke dalam sebuah fundus, badan, dan leher. Cairan empedu yang berwarna hijau tua berasal dari bilirubin yang merupakan pigmen empedu. Pigmen empedu ini dapat berupa pigmen biliverdin, yaitu zat warna empedu yang berasal dari pemecahan hemoglobin pada butir darah merah maupun bilirubin yang terbentuk dari penguraian hemoglobin, asam-asam empedu, dan kolesterol. Adanya bilirubin dapat dibuktikan dengan reaksi gmelin sehingga diperoleh hasil positif yang berupa kompleks kuning kemerahan. Empedu berbau amis hal ini dikarenakan empedu banyak mengandung garam-garam anorganik, kolesterol, lemak dan pigmen-pigmen yang bercampur menjadi satu. Keadaan wujud dari empedu adalah cair dan kental, banyaknya zat-zat yang terkandung dalam empedu mengakibatkan cairan empedu kental.

Percoban selanjunya yaitu preparasi empedu. Proses persiapan ini dilakukan untuk mengurangi kekentalan dari cairan empedu agar lebih memudahkan selama proses pengujian dengan beberapa metode yang digunakan berlangsung. Empedu yang sudah diencerkan diuji dengan beberapa cara yaitu uji Gmelin, uji Pettenkofer dan uji fungsi emepdu sebagai emulgator.

Pada uji pertama yaitu Gmelin bertujuan untuk mengetahui adanya bilirubin pada cairan empedu. Percobaan ini diawali dengan memasukkan asam nitrat pekat kedalam tabung reaksi dan didapatkan warna awal asam nitrat yaitu bening. Kemudian setelah ditambahkan larutn empedu encer terbentuk 3 lapisan. Lapisan bawah berwarna bening (asam nitrat), lapisan tengah berwarna coklat dan lapisan atas berwarna hijau tosca (empedu). Terjadinya perubahan warna menunjukkan hasil yang positif dimana terjadi reaksi bilirubin dengan HNO3 membentuk cincin berwarna coklat.

Selanjutnya uji pettenkofer. Uji pettenkofer bertujuan untuk mengetahui adanya garam empedu dalam cairan empedu. Garam empedu bereaksi dengan asam sulfat membentuk asam empedu sedangkan heksosat dari sukrosa, jika bereaksi dengan asam sulfat akan membentuk hidroksimetilfural. Asam empedu akan bereaksi dengan fulfural atau hidroksimetilfulfural membentuk kompleks merah bata. Pada saat percobaan ini dilakukan dengan penambahan larutan sukrosa dan asam sulfat pekat pada larutan empedu, warna awal lautan empedu yaitu hiju tua kemudian setelah larutan sukrosa tidak terjadi perubahan sedangkan setelah ditambahkan asam sulfat pekat arna larutan berubah-ubah mulai dari hijau tosca kemudian berubah hijau tua dan terakhir berubah menjadi ungu. berwarna bening terbentuk 3 lapisan yaitu hijau (atas), coklat (tengah), dan bening (bawah). Adanya warna coklat pada lapisan tengah disebabkan karena terjadinya kondensasi heksosa dari sukrosa yang bereaksi dengan asam empedu membentuk kompleks berwarna. Namun perbedaan warna secara teori dan praktik ini dapat saja disebabkan karena pereaksi yang ditambahkan dalam jumlah berlebih sehingga warna yang dihasilkan akan lebih pekat. Secara teori percbaan ini telah membuktikan adanya garam empedu dalam cairan empedu.

Pengujian terakhir untuk sampel uji berupa cairan empedu adalah uji fungsi empedu sebagai emulgator. Pengujian ini bertujuan untuk mengetahui sifat pengemulsi lemak dari cairan empedu. Pada saat percobaan tabung I yang berisi aquades ditambahkan minyak menunjukkan hasil yang tidak dapat bercampur (emulsi tidak stabil). Tabung II aquades ditambahkan minyak tidak dapat bercampur kemudian ditambahkan empedu, larutan menjadi tercampur (emulsi stabil) dan berwarna hijau tua. Proses tersebut membuktikan bahwa empedu di dalam tubuh berfungsi sebagai emulgator. Hal ini disebabkan karena empedu memiliki struktur amphipatik (salah satu sisinya dapat larut dalam air (polar/ hydrophilic) dan sisi yang lainnya tidak larut dalam air (nonpolar/ hydrophobic)). Oleh karena itu sebelum masuk ke dalam usus halus lemak yang masuk ke dalam empedu akan mengalami proses emulsifikasi. Emulsifikasi lemak merupakan proses awal dari metabolisme lemak yaitu proses pencampuran (emulsi) lemak yang berukuran besar menjadi ukuran lebih kecil, sehingga lemak yang telah diemulsifikasikan tadi pada larut dalam air. satu bagian mempunyai sifat polar atau sifat hidrofil, bagian lainnya bersifat non polar atau hidrofob sehingga empedu dapat digunakan sebagai pengemulsi pada lemak. Dan juga menjadi penstabilnya dalam tubuh. Empedu dapat berfungsi sebagai emulgator apabila ditambahkan dengan minyak. Ini terbukti dengan terjadinya emulsi saat empedu ditambahkan dengnan minyak.

H. KESIMPULAN

Berdasarkan hasil pengamatan maka dapat disimpulkan bahwa sifat fisik air liur diantaranya berwarna putih keruh dan sifat kimia air liur diantaranya memiliki pH 8 yang berarti bersifat basa dan beberapa senyawa terkandung di dalam saliva seperti senyawa organik diantaranya karbohidrat dan protein serta senyawa anorganik seperti sulfat yang dapat dibuktikan dengan beberapa uji reaksi kimia. Selain itu, dapat disimpulkan pula bahwa sifat fisik empedu diantaranya berwarna hijau, terdapat selaput, kenjal dan berbau amis serta sifat kimia empedu diantaranya bersifat emulgator.

DAFTAR PUSTAKA

Butterworth, Peter J., dkk. 2011. Humana-amylase and starch digestion: And interesting

Marriage. London: School of Medicine.

Feseenden dan Fessenden. 1986. Kimia Organik Edisi Ketiga Jilid 2. Jakarta: Erlangga.

Murray, Robert. Dkk. 2003. Biokimia Harper Edisi 25. Jakarta : Penerbit Buku Kedokteran.

Pearce, Evelin C. 2006. Anatomi Dan Fisiologi Untuk Paramedis. Jakarta: PT Gramedia.

Poedjadi, Anna. 1994. Dasar-Dasar Biokimia. Jakarta : UI.

Rizkiyanto, 2013. Variasi pH dan Lama Perebusan Kacang Panjang (Vigna Sesquipedalis (L) Fruhw) terhadap Kadar Asam Kolat dan Asam Deoksikolat pada Feses Hewan Coba (Rattus Norvegicus L). Surabaya: UNESA.

Trivedi, Dhiraj dan Chhaya Trivedi. 2012. Salivary Proteome In Periodontal Diagnosis. India: SDM College of medicalsciences and Hospital.

Umniyati, Siti, dkk. 2011. Pengaruh Garam Empedu terhadap Pertumbuhan dan Produksi Asam Laktat Streptococcus Sp dari Cymeusus Halus Ayam Broiler Strain Lohman. Yogyakarta: Universitas Negeri Yogyakarta.

Vogel, A.I. 1985. Buku Teks Analisis Anorganik Kualitatif Anorganik Makro dan Semimikro, Penerjemah L. Setiono dan A.H Pudjaatmaka, Jakarta : Kalman Media Pustaka.

O

H

O

C

H

R

N

H

3

+

N

a

O

H

O

O

C

H

R

N

H

3

+

O

O

C

H

R

N

H

3

+

C

u

S

O

4

+

- Na

+

-

+

Larutan ungu

O

H

O

H

O

H

O

H

H

H

O

H

H

O

H

+

H

2

SO

4

O

O

O

H

+

O

H

Hidroksimetilfulfural

a

naftol

heksosa

OH

O

HOH

OHH

HOH

HOH

+

H

2

SO

4

O

O

OH

+

OH

Hidroksimetilfulfural

naftol

heksosa

O

H

O

O

H

H

H

O

H

H

O

H

+

H

2

SO

4

O

O

+

O

H

pentosa

fulfural

a

naftol

O

O

H

O

H

O

H

O

O

H

O

O

H

S

O

3

H

H

2

S

O

4

+

Hidroksi metil furfural

naftol

cincin ungu

O

O

C

H

R

N

H

3

+

O

O

C

H

R

N

H

3

+

C

H

3

C

O

O

H

C

H

3

C

O

O

N

a

p

e

n

g

g

u

m

p

a

l

a

n

/

e

n

d

a

p

a

n

p

u

t

i

h

- Na

+

-

+

HCl

O

O

H

H

O

H

O

H

H

O

H

O

H

O

H

H

H

O

H

O

H

H

O

H

H

O

H

O

terhidrolisis

O

H

O

H

O

H

O

H

H

H

O

H

H

O

H

sukrosa

glukosa

O

H

O

H

O

H

O

H

H

H

O

H

H

O

H

glukosa

+

H

2

SO

4

O

C

H

C

H

C

H

O

C

H

2

O

H

5-hidroksimetil furfural

H

2

S

O

4

(

l

)

garam empedu

asam empedu

O

C

H

C

H

C

H

O

C

H

2

O

H

5-hidroksimetil furfural

+

asam-asam empedu

kompleks coklat kehitaman (merah bata)

CO

2

H

C

H

3

O

H

O

H

C

H

3

O

H

C

H

3

+

H

2

NCH

2

CO

2

-

NA

+

enzim

-H

2

O

CONHCH

2

CO

2

-

NA

+

C

H

3

O

H

O

H

C

H

3

O

H

C

H

3