Chg.-ODN 的免疫刺激作用

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Chg.-ODN 的免疫刺激作用. CPG 概念. 为非甲基化的胞嘧啶鸟嘌呤二核苷酸重复序列,即 CpG 基序。 一种免疫佐剂 作用靶点 TLR9 细胞免疫,体液免疫. Th1 免疫应答. 慢性乙型肝炎患者细胞免疫低下 HBV 免疫耐受,持续感染 肿瘤微小残留病的清除. CPG 提高 PBMC 中 Th1 细胞. Th1 占淋巴细胞百分比. CPG 提高 PBMC 中 Th1 、 Tc1 细胞百分率. *. *. * : 与对照组比较, P

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Chg.-ODNChg.-ODN 的免疫刺激作用的免疫刺激作用

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CPG 概念

为非甲基化的胞嘧啶鸟嘌呤二核苷酸重复序列,即 CpG 基序。

一种免疫佐剂 作用靶点 TLR9 细胞免疫,体液免疫

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Th1 免疫应答

慢性乙型肝炎患者细胞免疫低下

HBV 免疫耐受,持续感染

肿瘤微小残留病的清除

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CPG 提高 PBMC 中 Th1 细胞

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Th1 占淋巴细胞百分比

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CPG 提高 PBMC 中 Th1 、 Tc1 细胞百分率

0

2

4

6

8

10

12

14

16

Th1 Tc1 Th2

对照 CPG-ODN

*

*

* :与对照组比较, P<0.05

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CPG 刺激 BPMC 分泌细胞因子

0

10

20

30

40

50

60

70

80

IFN-γ IL-2 I L-4 I L-10

对照组 CPG-ODN组

*

* :与对照组比较, P<0.05

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CPG 诱导 PBMC 杀伤靶细胞

1. 收集 CPG 活化的 PBMC2. 细胞毒性实验:效应细胞为 CPG 活化的 PB

MC ;靶细胞为 CFSE 预染的 K562 细胞。对照组效应细胞为未经 CPG 活化的 PBMC 。

3. 效:靶= 20 : 1 ,混合培养 2h 。流式细胞术检测靶细胞死亡率。

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CPG 诱导 PBMC 杀伤靶细胞

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CFSE 染色靶细胞1. 浓度为 5μmol/ L 的 CFSE ( 2 羧基

荧光素二醋酸盐琥珀酰亚胺酯)工作液2. 取对数生长期的靶细胞浓度 108/ L3. 细胞悬液与等体积 CFSE 工作液混合4. 37 ℃ 孵育 10 min 。5. 离心洗涤两次后6. 悬浮细胞备用

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CFSE 染色靶细胞

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实验结果

CpG 活化 PBMC 对 K562 细胞的杀伤作用 (N=5)

CPG 活化 PBMC    16.85±5.14 %  对照组     8.62±2.83 %

*

* :与对照组比较, P<0.05

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CIK 细胞杀伤靶细胞

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CIK 细胞杀伤靶细胞

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研究背景

通过主动免疫、过继特异性免疫、过继非特异性免疫等方式,清除慢性乙肝患者体内残存的 HBV ,达到治疗效果。

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研究背景

B 淋巴细胞具有抗原递呈细胞的性质,同时具有 CpG-ODN 受体: TLR-9 。本研究探讨 CpG-ODN 诱导 B 淋巴细胞成为高效 APC ,使之具有类似于树突状细胞功能的可行性。

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TOLL 受体

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TOLL 受体在血细胞中的表达

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活化 B 细胞负载核心抗原

1. 磁珠分选 B 淋巴细胞

2. CPG 活化 B 淋巴细胞

3. 核心抗原肽 :FLPSDFFPSV-FITC

4. 流式细胞仪、荧光显微镜检测抗原负载状况

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磁珠分选 B 细胞

分选前 B 细胞 7.89%

分选后 B 细胞 89.6%

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活化 B 细胞负载抗原肽

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All 100.00

M1 41.34

M1

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活化 B 细胞负载核心抗原

荧光显微镜观察 B细胞负载 HBcAg18-27肽

Page 23: Chg.-ODN 的免疫刺激作用

APC 与 T 细胞作用机制

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CPG 对 B 细胞抗原递呈相关分子的作用研究

1. CpG2006 、 2216由上海生物工程技术服务有限公司合成,全硫代化修饰

2. 对照组为含 10%FCS 的 RPMI1640+外周血 PBMC ,细胞量 107/孔, 37℃ 、 5%CO2 、 48 小时

3. 实验组加入 CpG2006或 CpG2216 ,终浓度均为 1umol/mL ,余同上

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CpG 提高淋巴细胞 CD69 表达

0

5

10

15

20

25

30

35

对照

CpG2006

Cp

G221

6

对照

CpG2

006

CpG2

216

T 淋巴细胞 B 淋巴细胞

CD69

表达率

(%

*

*

* :与对照组比较, P<0.05

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B 细胞 CD80 、 CD86 表达

对照组 加 CPG-ODN 组 加 CPG-ODN 组

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CpG 提高 B 细胞表面 CD80 、 CD86 的表达

01020304050607080

对照

Cp2006

Cp

G221

6

对照

CpG2

006

CpG2

216

CD80    CD86

CD80

、CD86

表达率

(%

*

*

*

*

* :与对照组比较, P<0.05

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B 细胞 MHC-Ⅰ、 MHC-Ⅱ表达

对照组 加 CPG-ODN 组

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CpG 提高 B 细胞表面MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ的表达

0

500

1000

1500

2000

2500

对照

CpG2006

Cp

G221

6

对照

CpG2

006

CpG2

216

MHC-Ⅰ          MHC-Ⅱ

MHC

表达量(M

FI

*** *

* :与对照组比较, P<0.05

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活化 B 细胞诱导 CTL

1. 负载了抗原的活化 B 细胞与淋巴细胞混合培养 (含 IL-2 的 RPMI1640 培养液 ).

2. 收集细胞 , 以五聚体技术检测 HBV 特异性 CTL.

3. 实验组特异性 CTL 为 0.50±0.19%,对照组为 0.20±0.10%。

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特异性 CTL 诱导

Pro5TM MHC Pentamers检测对照组和实验组 HBcAg18-27 抗原特异性 CTL ( Q2-1区)。前者为对照组(未加 APC ),后者为实验组(加 APC )。

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结论1. CpG 能够活化 B 细胞,对 T 细胞无明显的作用

2. CpG 能够提高 B 细胞表面抗原递呈相关分子的表达

3. CPG 诱导 PBMC产生高水平的 IFN-γ

4. CPG 诱导淋巴细胞向 Th1 、 Tc1 分化

5. CPG增强 PBMC 对 K562 细胞的杀伤作用

6. 通过 B 细胞介导 , CPG 可诱导特异性 CTL

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