100
20
60
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100
20
60
40
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0
10 0 20 30 40 10 0 20 30 40
Mo
rtali
dad
(%
)
Glifosato (mg/l)
Fig. 2. Curvas de mortalidad (medias e intervalo del 95% de confianza) en función de la dosis (de 0
a 36 mg. de glifosato por litro) para las cuatro poblaciones examinadas con la correspondiente
concentración en la cual la mortalidad en significativamente mayor que en el control (asteriscos). En
rojo las poblaciones con baja diversidad genética y en verde las de alta.
Azkorri
Ribaguda
Txingudi
Herramélluri
* *
* *
Vulnerabilidad ante pesticidas y diversidad genética: un experimento de
cruzamiento con dos poblaciones de sapo corredor. Carlos Cabido, Ion Garin-Barrio, Xabier Rubio and Alberto Gosá.
Departamento de Herpetología, Sociedad de Ciencias Aranzadi. [email protected]
Métodos
Para examinar si la diversidad genética afecta a la vulnerabilidad ante el glifosato, determinamos:
1. La concentración que causa un 50% de mortalidad (LC50) en larvas provenientes de puestas obtenidas en
el laboratorio a partir de amplexos capturados durante 2010 en dos poblaciones aisladas de baja diversidad
genética (Azkorri, N= 7; Txingudi, N= 6; Fig 1, en rojo) y en dos de alta diversidad, próximas a las anteriores
(Herramélluri, N= 7; Ribaguda, N= 8; Fig 1, en verde).
2. Para descartar efectos maternos derivados de diferencias ambientales entre poblaciones, durante 2011
obtuvimos, en el laboratorio, amplexos “cruzados” entre individuos de una de las poblaciones de baja
diversidad genética y otra de alta (♂ de Txingudi x ♀ Herramélluri, N=7; ♂ de Herramélluri x ♀ Txingudi,
N=7) y amplexos “puros” entre individuos de la misma población (♂ y ♀ de Herramelluri, N=11; ♂ y ♀ de
Txingudi, N=9 ). Con las puestas resultantes de ambos tipos de amplexos también obtuvimos los valores
correspondientes de LC50.
Las pruebas de LC50 se realizaron cuando las larvas alcanzaron el estadío Gosner 25. Para ello, 10 larvas
provenientes de cada puesta se mantuvieron en cajas con 4 litros de 5 concentraciones de glifosato y un
control (0 mg /l, 9 mg/l, 18 mg/l, 27 mg/l and 36 mg/l), A intervalos de 8 h. se extrajeron los cadáveres, hasta
las 96 h., cuando se cuantificó la supervivencia final. Los valores de LC50 se estimaron a partir de los datos
de supervivencia en cada concentración usando el programa Probit. La menor concentración que provoca
una mortalidad significativamente mayor que el control se calculó con el test de Dunnett.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Tercer Congreso de la Sociedad Española de Biología Evolutiva. Madrid, Noviembre de 2011.
a baja diversidad genética se considera tradicionalmente un factor de riesgo para la viabilidad de las poblaciones. Existen estudios que demuestran su incidencia sobre la fecundidad, supervivencia y la adaptación a las variaciones
ecológicas naturales en distintas especies. El actual efecto antrópico sobre los ecosistemas introduce nuevas y rápidas variaciones, como la presencia de sustancias tóxicas, a las que las poblaciones y especies deben adaptarse
rápidamente. Previsiblemente, la capacidad adaptativa a las nuevas condiciones dependería, en gran medida, de la diversidad genética de cada población. El aislamiento y la reducción de algunas poblaciones a menudo supone una pérdida
de diversidad genética debido a fenómenos de deriva genética, cuellos de botella o adaptación a condiciones concretas. Las consecuencias de esa baja diversidad genética es especialmente relevante, en el caso de las poblaciones o
especies amenazadas, para el diseño de planes de gestión y su correcta conservación.
L
La amenaza: el glifosato
Se trata del herbicida más usado en USA y cada vez más usado en Europa, debido a su
amplio espectro y baja especificidad que lo convierten en muy efectivo para el manejo
forestal, de cultivos agrícolas en general o, incluso, de control de flora exótica. La atención
prestada a su impacto sobre la fauna potencialmente más vulnerable también ha aumentado
paralelamente en los últimos años. Los anfibios, debido a su vinculación tanto al medio
terrestre como al acuático (que concentra por lixiviado muchos agro-químicos), son
uno de los grupos más perjudicados por el herbicida, como demuestran numerosos
estudios realizados en Norte América y Australia [1]. Los estudios sobre las especies
europeas aún son escasos y no existen estudios que examinen si existen diferencias
entre poblaciones de una misma especie en cuanto a vulnerabilidad.
[1] Relyea, R.A. & Devin, K.J. 2009. Environmental Toxicology and Chemistry 28: 2004-2008.
El sapo corredor (Bufo calamita) tiene una
distribución prácticamente continua en la península
ibérica, excepto en la costa cantábrica, donde sólo
existen dos poblaciones (Azkorri y Txingudi)
completamente aisladas (Fig. 1). Estudios previos
[1] han demostrado que la diversidad genética de
ambas poblaciones es menor que la del resto de la
península. Además, Azkorri y Txingudi pertenecen a
diferentes haplogrupos [1: Iraola, A., García-París,
M. & Gómez-Moliner, B. 2007. Informe para el
Gobierno Vasco].
Depende la vulnerabilidad ante el glifosato
de la diversidad genética de la población
1. Se detectan diferencias en la mortalidad entre concentraciones (Kruskal-Wallis, p<0.001; Fig. 2). En el caso de las dos poblaciones de baja
diversidad, la concentración más baja que causa mayor mortalidad que el control fue de 9 mg/l de glifosato, mientras que las poblaciones con
mayor diversidad genética aguantaron concentraciones de 18 mg/l. (Tests de Dunnett, p < 0.05 en todos los casos; Fig. 2). Igualmente, los
valores de LC50 estimados muestran que ambas poblaciones con baja diversidad genética son más vulnerables (valores más bajos) que las
de alta diversidad (Tabla 1).
2. Los valores de LC50 de las larvas provenientes de amplexos “cruzados” muestran valores intermedios con respecto a las de los amplexos
“puros” (Tabla 2), como se esperaría si las diferencias en vulnerabilidad observadas entre poblaciones tuviesen una causa genética y
descartando un posible efecto ambiental (materno). No se observaron dieferencias en función del tipo de cruce, lo que parece descartar un
posible efecto dependiente del sexo.
Población LC50 (+ 95% confianza)
Azkorri
11,065 (10,096-12,015)
Txingudi 11,098 (9,968-12,218)
Ribaguda 15,177 (13,230-16,615)
Herramélluri 14,607 (13,046-15,966)
Tabla 1. Valores de LC50 a las 96 horas en
larvas en estadío Gosner 25 estimados con los
datos de 2010. Entre paréntesis el intervalo de
confianza del 95%.
Cruce ( ♂ x ♀ ) LC50 (+ 95% confianza)
Txingudi x Txingudi 13,245 (12,464-13,963)
Txingudi x Herramélluri 14,059 (13,311-14,770)
Herramélluri x Txingudi 13,976 (13,178-14,734)
Herramélluri x Herramélluri 14,850 (14,132-15,517)
Tabla 2. Valores de LC50 a las 96 horas en larvas en estadío
Gosner 25 estimados con los datos de 2011. Entre paréntesis
el intervalo de confianza del 95%.
Fig. 1. Distribucion de B. calamita en la península ibérica
(en negro) y en el País Vasco (en azul). Los círculos
señalan las poblaciones estudiadas (rojos: baja
diversidad genética; verdes: alta).
Herramélluri
Ribaguda
Azkorri Txingudi
Según nuestros datos, las
diferencias poblacionales
en cuanto a vulnerabili-
dad ante un pesticida
dependen de su diver-
sidad genética.
La interacción entre diversidad
genética y efectos antrópicos debe
ser tenida en cuenta a la hora de
valorar y gestionar la conservación
de las poblaciones amenazadas.
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