Torregrosa Bueno, Melani. Martin Quiroga, Teresa Reina. Caparroz Martín, Eugenia Victoria. Tomás López, Estefanía.
Se realizó una búsqueda bibliográfica durante Enero-Abril de 2017 en bases de datos y en revistas especializas utilizando los descriptores de los tesauros correspondientes a las bases de datos y Descriptores en Ciencias de la Salud (DeCs). Las estrategias de búsqueda se expresan en la tabla 1.
Criterios de selección:
Criterios de inclusión: estudios observacionales transversales o revisiones sistemáticas que contuvieran los descriptores nombrados.
Criterios de exclusión: estudios que se centraban en una de las consecuencias de las diabetes o estudios cuya muestra solo incluyera gestantes o estudios in vitro
Tabla 1. Estrategia de búsqueda según los Sistemas de búsqueda
BASES DE DATOS CONSULTADA
ESTRATEGIA DE BÚSQUEDANº DE ARTÍCULOS
ENCONTRADOS
Nº ARTÍCULOS
RELEVANTES
CSICDiabetes Mellitus AND (Phenols
OR Phenolic Compounds)49 7
Dialnet Idem 8 2
Recolecta Idem 1 0
PubMed Idem 387 59
Cochrane Idem 7 4
SCIELO Idem 12 5
Web of Knowledge Idem 3 2
INTRODUCCIÓN OBJETIVOS
EXTRACTOS VEGETALES COMO ALTERNATIVA TERAPÉUTICA DE LA DIABETES MELLITUS TIPO II.
METODOLOGÍA
RESULTADOSNumerosos extractos naturales han demostrado tener efecto antidiabético y eficacia
en el metabolismo de la glucosa, gracias a sus componentes bioactivos que difieren
en el mecanismo de acción.
Fla
vo
no
ides
Abelmoschus Moschatus (Miricetina) Abroma Augusta (Miricetina, Quercetina y
Aperginina) Allium Cepa (Quercetina)
Bauhinia Forficata (Kaempferol) Bauhinia Monandra (Quercetina) Camellia Sinensis (Catequinas) Camellia Sinensis (Quercetina) Cassia Occidentalis (Apigenina) Pinus Roxburghii (Quercetina)
Disminuye la resistencia a la insulina Incrementa expresión de GLUT4
Inhibe a la G6Pase Inhibición de la α-amilasa.
Inhibición de la α-glucosidasa. Inhibición perioxidación lípidos
Protección de los islotes pancreáticos Reducción de la actividad de fructosa-1,6-bifosfatasa.
Regeneración de las Cél. β.
Ácido clorogénico
Acacia Arabica Caesalpinia Bonducella Cecropia Pachystachya
Estimulación de Cél. b Inhibición G6Pase
Otros compuestos
fenólicos
Combretum Dolichopetalum (Ácido elágico) Ocimum Gratissimum (Ácido cicórico)
Inhibición de la aldosa reductasa. Inhibición α-amilasa.
Regulación secreción y transporte insulina
Tioles Allium Cepa (Disulfuro de alilo propilo)
Allium Sativum (Súlfidos alílicos) Excitación de la producción pancreática de insulina.
Terp
en
os A. Aspera (Ác. oleanólico)
Astianthus vimunalis (Ác. oleanólico y ác. ursólico) Brucera Javanica (Quasinoides)
Lagerstromia speciosa (Ác. corosólico) Psidium Guajava (Ác. psidiumoico)
Aumento de glucógeno hepático. Estimulación GLUT4.
Inhibición de la α-glucosidasa.
Fit
oeste
role
s
Butea monosperma Kuntza (Estigmasterol) Chrozophora Plica (β-sitosterol)
Inhibición de la α-glucosidasa. Inhibición G6Pase.
Reducción de la grasa visceral. Regeneración de las Cél. β.
Sap
on
inas
Astragalus membranaceus (Astragalósidos) Dioscorea polygonoides y Trigonella foenum-
graecum (Dioscina) Platycodi radix (Ác. Platiconico)
Terminalia arjuna (Ác. Arjunólico)
Atenuación de la resistencia a la insulina. Estimula los islotes de Langerhans.
Incrementa expresión GLUT 4 Inhibe digestión y absorción de hidratos de carbono. Inhibe glucógeno fosforilasa, G6Pase, α-glucosidasa
y α-amilasa. Mejora señalización de insulina
Otr
os
po
life
no
les
Curcumina Marsupina con epicatequina
Polifenoles del Aceite de oliva extra Resveratrol
Regulación de la secreción de insulina Inhibición de la α-amilasa.
Reducción del tamaño de los adipocitos. Expresión adecuada de los marcadores de
señalización de la vía de insulina. Reducción de la expresión de los PDE.
1. Gil IE. Alternativas naturales a los fármacos para la prevención de los procesos patológicos asociados a la diabetes mellitus.
Universidad Católica San Antonio de Murcia. 2016.
2. Aranceta-Bartrina, J., Pérez-Rodrigo, C., Alberdi-Aresti, G., Ramos-Carrera, N., Lázaro-Masedo, S. Prevalencia de obesidad
general y obesidad abdominal en la población adulta española (25–64 años) 2014–2015: estudio ENPE. Rev Esp Cardiol.
2016;69:579-87 - Vol. 69 Núm.06 DOI: 10.1016/j.recesp.2016.02.010.
3. C. Santangelo CF, R. Varì, B. Scazzocchio, T. Filardi, V. Fogliano, M. D’Archivio, C. Giovannini, A. Lenzi, S. Morano, R. Masella.
Consumption of extra-virgin olive oil rich in phenolic compounds improves metabolic control in patients with type 2 diabetes
mellitus: a possible involvement of reduced levels of circulating visfatin. J Endocrinol Invest. 2016.
4. Fernandes, J., Ogurtsova, K, Linnenkamp, U., Guariguata, L.,Seuring, T., Zhang, P., Cavan, D., Makaroff, L.E. IDF Diabetes Atlas
estimates of 2014 global health expenditures on diabetes. diabetes research and clinical practice. 2016; 117: 48 – 54
5. Fukuda T, Fukui M, Tanaka M, Senmaru T, Iwase H, Yamazaki M, et al. Effect of Brazilian green propolis in patients with type 2
diabetes: A double-blind randomized placebo-controlled study. Biomed Rep. 2015;3(3):355-60.
6. Mário C.L. Neto CFBdV, Valerium N. Thijan, Germana F.R. Caldas, Alice V. Araújo, João H. Costa-Silva, Elba L.C. Amorim,
Fabiano Ferreira,, Antonio F.M. de Oliveira AGW. Evaluation of antihyperglycaemic activity of Calotropis procera leaves extract on
streptozotocin-induced diabetes in Wistar rats. Rev Bras Farmacogn. 2013;23:913-9.
7. Helison de Oliveira Carvalho BSFeS, Igor Victor Ferreira dos Santos, Rafael Lima Resque , Hady Keita, Caio Pinho Fernandes,
José Carlos Tavares Carvalho. Hypoglycemic effect of formulation containing hydroethanolic extract of Calophyllum brasiliense in
diabetic rats induced by streptozotocin. Revista Brasileira de Farmacognosia. 2016;26:634-9.
8. Berná GO-L, M.J.; Jurado-Ruíz, E.; Tejedo, J.; Bedoya, F.; Soria, B.; Martín, F. Nutrigenetics and Nutrigenomics Insights into
Diabetes Etiopathogenesis. Nutrients. 2014;6:5338-69.
9. Martin MA, Goya L, Ramos S. Antidiabetic actions of cocoa flavanols. Mol Nutr Food Res. 2016;60(8):1756-69.
10. Rakesh K. Joshi WNS, Valdir F. da Veiga Junior. Aromatic and medicinal plants with anti-diabetic potential from India: A review.
AJEONP. 2015;2(4):22-8.
11. Makwana A R1 SKD, Rao S K. A Review on Medicinal Plants of Gujarat with Anti-diabetic assal. International Journal of
Pharmacognosy and Phytochemical Research. 2016;8(1):167-73.
12. Sharifuddin Y, Chin YX, Lim PE, Phang SM. Potential Bioactive Compounds from Seaweed for Diabetes Management. Mar
Drugs. 2015;13(8):5447-91.
13. Marisa F. Mendes IDLB. Evaluation of the Effects and Mechanisms of Bioactive Components Present in HypoglycemicPlants.
International Journal of Chemical and Biomolecular Science. 2015;1(2):167-78.
14. Jimenez-Gomez Y, Mattison JA, Pearson KJ, Martin-Montalvo A, Palacios HH, Sossong AM, et al. Resveratrol improves adipose
insulin signaling and reduces the inflammatory response in adipose tissue of rhesus monkeys on high-fat, high-sugar diet. Cell
Metab. 2013;18(4):533-45.
15. Rivas-Alpizar E, Zerquera-Trujillo G, Hernández-Gutiérrez C, Vicente-Sánchez B. Manejo práctico del paciente con diabetes
mellitus en la Atención Primaria de Salud. Revista Finlay [revista en Internet]. 2011 [citado 2017 Ene 5]; 1(3):[aprox. 22 p.].
Disponible en: http://www.revfinlay.sld.cu/index.php/finlay/article/view/69.
16. Emami-Riedmaier A, Schaeffeler E, Nies AT, Morike K, Schwab M. Stratified medicine for the use of antidiabetic medication in
treatment of type II diabetes and cancer: where do we go from here? J Intern Med. 2015;277(2):235-47.
17. GROCHANKE BSG, I.T.S.; GOETTEMS-FIORIN, P.B.; BRUXEL, M.A.; BASSO, E.G.P.; HECK, T.G.; LUDWIG, M.S. Compostos
fenólicos da casca de Handroanthus heptaphyllus (Mart.) Mattos e efeitos do extrato aquoso no perfi lipídico, glicêmico e na
lipoperoxidação em ratos diabéticos. Rev Bras Pl Med, Campinas. 2016;18(1):264-72.
18. P.T. Kanellos M.Sc. ACKPD, N.K. Tentolouris M.D., Ph.D., V. Argiana M.D., D. Perrea Ph.D., N. Kalogeropoulos Ph.D., A.M.
Kountouri Ph.D., V.T. Karathanos Ph.D. A pilot, randomized controlled trial to examine the health outcomes of raisin consumption
in patien ts with diabetes. Nutrition. 2014;30:358-64.
19. Lic. Carlos Jonnathan Castro Juárez DCNVR, Dr. C. Sergio Alberto Ramírez García, Dr. C. Clemente Mosso González. Uso
medicinal de plantas antidiabéticas en el legado etnobotánico oaxaqueño. Revista Cubana de Plantas Medicinales.
2014;19(1):101-20.
20. Om Prakash RK, Ritika Srivastava, Pragya Tripathi, Shradha Mishra, Ajeet. Plants Explored with Anti-diabetic Properties: A
Review. American Journal of Pharmacological Sciences. 2015; 3(3):55-66.
21. Kaushik P, Singh G, Khokra SL, Kaushik D (2015) Bioassay Guided Fractionation and α-Amylase Inhibitory Activity of Flavanoid
Isolated from Pinus roxburghii Sarg. Nat Prod Chem Res 3: 179. doi:10.4172/2329-6836.1000179
22. Cersosimol, E., Solis-Herreral, C., Trautmann, M.E., Malloy, J., Triplitt, C.L. Assessment of Pancreatic beta-Cell Function: Review
of Methods and Clinical Applications. Current Diabetes Reviews; 2014, 10 (1): 2-42.
23. Mittermayer, F., Caveney, E., De Oliveira, C., et. al. Addressing Unmet Medical Needs in Type 2 Diabetes: A Narrative Review of
Drugs under Development. Current Diabetes Reviews; 2015, 11: 17-31
24. Harlev, E., Nevo, E. , Mirsky, N., Ofir, R. Antidiabetic Attributes of Desert and Steppic Plants: A Review. Planta Med 2013; 79:
425– 436.
REFERENCIAS
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