8/3/2018 Carátula de Trabajo
http://www.feriadelasciencias.unam.mx/inscripciones 1/1
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Dudas o sugerencias sobre este sistema: [email protected] © 2018 Escuela Nacional Colegio de Ciencias y Humanidades, Hecho en México, Comité Organizador
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Resumen.
La Drosophila melanogaster, denominada la “mosca de fruta” se utiliza comúnmente
como modelo de estudio en las investigaciones científicas relacionadas con la
genética y la genómica, esto se debe a su fácil cultivo y ciclo de vida relativamente
corto que le permite tener tres generaciones cada treinta días. Este modelo se basa
en importantes investigaciones que llevaron a Morgan a ganar el premio nobel de
medicina y fisiología en 1933, así como en la actualidad Michael Rosbash que en
2017 ha conseguido el premio nobel de medicina por descubrir los mecanismos
moleculares que controlan el ritmo circadiano, es decir, el reloj biológico de los
organismos.
Teniendo en cuenta investigaciones previas, el objetivo de este trabajo es conocer las
características morfológicas de la mosca de la fruta, Drosophila melanogaster, su
cultivo y manejo; con el fin de inducir una mutación exógena con luz ultravioleta en
una cepa de yellow-white-forked. Todo esto con ayuda de nuestra asesora externa
procedente de la Facultad de Estudios Superiores Iztacala, que nos proporcionó el
espacio de trabajo, conocimiento acerca de la genética de las Drosophilas
melanogaster y las técnicas de cultivo de las mismas.
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La genética es una parte de la biología que ha tomado una gran importancia en
ámbitos como la medicina, la industria y el conocimiento de los procesos hereditarios
en los sistemas vivos. Desde acontecimientos importantes como el estudio de las
leyes de herencia por Gregor Mendel, después donde Albrecht Kossel descubrió las
5 bases nitrogenadas (adenina, citosina, guanina, timina y uracilo), pasando por la
teoría cromosómica de Morgan, también el gran trabajo que hicieron Watson y Crick
con la ayuda de Rosalind Franklin y Maurice Wilkins al descubrir la estructura de doble
hélice del ADN.
Pero no todo se limita a sólo esos acontecimientos sino a muchos más. Una parte
importante de la genética que hay que entender, son las mutaciones; ya lo decía
Hermann Müller: “Es posible influir artificialmente en la mutación … no es un dios
inalcanzable que nos gasta bromas desde una ciudadela inexpugnable en el plasma
germinal”. 1
La síntesis moderna ha demostrado que las grandes mutaciones no representan la
fuerza transformadora de la evolución. Sin embargo, la evolución no podría tener lugar
sin la existencia de alteraciones genéticas de algún tipo. Por lo cual la investigación
se centra en investigar los procesos de mutaciones, que ocurren en la mosca de la
fruta Drosophila melanogaster y su cepa mutante yellow white fork. T. H. Morgan con
la mosca Drosophila melanogaster; especie la cual convirtió en una especie de “mina
de oro” y en unos de los mejores modelos de estudio para entender la herencia por
sus notables característica: pequeña, fácil de criar en laboratorio, tolera muy bien las
experiencias de mutación y cruzamiento, se reproduce todo el año sin interrupción,
por lo que hay una nueva generación cada 12 días; el macho y la hembra son fáciles
de diferenciar; posee 4 cromosomas. En resumen, un animal ideal para el estudio de
la herencia.
Por lo que se hizo la tarea de realizar un experimento con la mosca de fruta, en donde
se trabajó en inducir alguna mutación con luz ultravioleta (hv) a una línea yellow-white-
forked y observar cambios en su fenotipo, con el fin de conocer y entender de una
1 Una de las frases de Müller que posteriormente le hicieron ganar el Premio Nóbel de la Paz. Vease: 50 genetic ideas you really need to know, trad. Española de Santiago Madero, edit. Barcelona, España, p. 26.
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mejor manera el efecto de un agente mutágeno, que se abordó en la unidad de
variación genética.
ANTECEDENTES Y MARCO TEÓRICO:
Las mutaciones aportan la evidencia definitiva de que el DNA es el material genético.
Cuando un cambio en la secuencia del DNA causa una alteración en una proteína,
podemos concluir que el DNA codifica esa proteína. Es más, un cambio
correspondiente en el fenotipo de un organismo nos puede permitir la identificación
de la función de esa proteína. La existencia de muchas mutaciones en un gen permite
comparar muchas formas de variantes de una proteína, y el análisis detallado puede
utilizarse para identificar las regiones de la proteína responsable de una función
determinada, enzimática o de otro tipo.
Todos los organismos sufren un determinado número de mutaciones como resultado
de las funciones celulares normales o de interacciones al azar con el entorno. Se les
llama mutaciones espontáneas, y la velocidad con la cual se producen
características de cada organismo en particular.
La aparición de mutaciones puede incrementarse mediante el tratamiento con ciertos
compuestos. Se les llama mutágenos, y los cambios que causan se denomina
mutaciones inducidas. La mayoría de los mutágenos modifica una base
determinada del DNA o se incorpora en el ácido nucleico. La potencia de un mutágeno
se determina a partir de la medida en que aumenta la tasa de mutaciones por encima
del valor basal. Con el uso de mutágenos, es posible inducir muchos cambios en
cualquier gen. La posibilidad de mutaciones de reversión se debe seguir o cumplir
con ciertas características:
● Una mutación puntual puede revertirse mediante el restablecimiento de la
secuencia original o la aparición de una mutación compensatoria en otro lugar
del gen.
● Una inserción puede revertirse mediante la deleción de la secuencia insertada.
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● Una deleción de una secuencia no puede revertirse en ausencia de algún
mecanismo que restablezca la secuencia perdida. 2
Las mutaciones que inactivan un gen se llaman mutaciones primarias o directas. Sus
efectos son revertidos por retromutaciones, que son de dos tipos: reversiones
verdaderas y reversión de segundo sitio.
Una reversión exacta de la mutación original se llama reversión verdadera. Así, si un
par A-T fue reemplazado por un par C-G en la mutación original, otra mutación que
restablezca el par A-T regenerará exactamente la secuencia original.
El segundo tipo de retromutación, la reversión de segundo sitio puede ocurrir en
cualquier lugar del gen, y sus efectos compensan los de la primera mutación. Una
mutación directa produce cualquier cambio que altera la función de un producto
génico, mientras que una retromutación debe restablecer la función original del
producto alterado.
Puede ocurrir también que las mutaciones en otros genes permitan sortear los efectos
de la mutación en el gen original. Este efecto se llama mutación supresora. Un locus
en el cual una mutación suprime el efecto de una mutación en otro locus se llama
supresor. Por ejemplo, una mutación puntual puede causar la sustitución de un
aminoácido en un polipéptido, mientras que una segunda mutación en el gen de un
tRNA puede hacer que está reconozca el codón mutado, y que como resultado inserte
el aminoácido original en la traducción.
Las transversiones son más raras que las transiciones, ya que requieren el
apareamiento temporal entre dos purinas o entre dos pirimidinas, lo que altera el
diámetro del dúplex de DNA. Sin embargo, una causa de transversión es un de
desplazamiento de un protón seguido por una rotación de 180° de la base alrededor
del enlace glucosídico.
Durante mucho tiempo se creyó que las mutaciones puntuales eran la principal forma
de cambio de los genes individuales. Sin embargo, sabemos ahora que las
inserciones de secuencias cortas son bastante frecuentes. Algunos mutágenos, como
2 Vease: Genes Fundamentados (2012)., Krebs, J., Goldstein, E., & Kilpatrick Lewin,
S. Ed. Médica Panamericana. México, pp. 19, 22
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los agentes intercalantes, pueden causar inserción o la deleción de un solo par de
bases. Un agente intercalante se inserta entre dos pares de bases adyacentes en el
DNA de cadena doble, por lo que el dúplex se distorsiona y la DNA polimerasa puede
saltear o agregar una base durante la replicación. Si esto ocurre en la secuencia
codificante de un gen, se produce una mutación por corrimiento del marco de lectura.
A menudo, las inserciones son producidas por elementos de transposición, que son
secuencias de DNA con la capacidad de moverse desde un sitio a otro. Una inserción
dentro de una región codificante generalmente suprime la actividad del gen.
Cualquier par de bases del DNA puede mutar. Una mutación puntual cambia
solamente un par de bases y puede estar causada por dos tipos de eventos:
● Una modificación química del DNA que cambia directamente una base por otra
diferente.
● Un error durante la replicación del DNA que hace que se inserte una base
equivocada en un polinucleótido.
Las mutaciones puntuales pueden dividirse en dos tipos, dependiendo de la
naturaleza de la sustitución de bases:
● La clase más común es la transición producida por la sustitución de una
pirimidina por otra, o de una purina por otra. Esto reemplaza a un par C-G por
un par A-T o viceversa.
● La clase menos frecuente es la transversión, en la cual una purina es
reemplazada por una pirimidina o viceversa, por lo que un par A-T se
transforma en T-A o en C-G.3
Las transiciones también pueden estar causadas por el apareamiento erróneo de
bases, cuando bases no complementarias se aparean en lugar de hacerlo con el
esquema habitual de Watson y Crick. El apareamiento erróneo de bases
generalmente ocurre como una aberración producida por la incorporación al DNA de
una base anormal, que tiene propiedades de apareamiento flexible.
Sabiendo con claridad lo que son las mutaciones y de qué manera intervienen
podemos continuar con el objeto de estudio (Drosophila melanogaster).
3 Vease: Genes Fundamentados (2012)., Krebs, J., Goldstein, E., & Kilpatrick Lewin,
S. Ed. Médica Panamericana. México, pp. 20
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A.H. Sturtevant, C.B. Bridges y H. J. Müller establecieron la genética de Drosophila y
la linealidad de los genes, las duplicaciones, inversiones, translocaciones, alelos
múltiples, pleiotropía, herencia poligenética, entre otros
El nombre Drosophila proviene del griego “amor al rocío” y melanogaster, por la
“barriga oscura” en el macho. Ocasionalmente poliniza cereales, y se le conoce
también como mosca del vinagre, de la manzana, del vino o de la salmuera. Se
alimenta de bacterias y levaduras que crecen en restos vegetales. El sexo
determinado por la proporción de los autosomas a los cromosomas sexuales X, ya
que él Y es sexualmente (neutro).
Este díptero es un organismo eucariota pluricelular con cuatro pares de cromosomas:
Los sexuales que son los Y (submetacéntrico) y el uno (X) que es acrocéntrico. Los
cromosomas dos y tres (metacéntricos), cada uno con un brazo derecho (R) e
izquierdo (L), y el cromosoma cuatro, pequeño y con apariencia de punto.
El científico británico William Bateson (1861-1926), uno de los cuatro investigadores
que redescubrieron en 1900 las leyes de Mendel; y el que inventó el termino genética,
observó que en plantas y animales algunas estructuras aparecen y desaparecen
súbitamente, en 1915 un estudiante de Morgan, Calvin Bridges, observó una mutación
en Drosophila en la que la mosquita parece tener cuatro alas, (la mosquita es de la
familia de los dípteros , 2 alas y no cuatro como las mariposas y libélulas); Bridges
llamó a esa mutación bithorax4
A partir de ese momento muchos laboratorios se dieron a la tarea de trabajar, e
investigar las mutaciones en este pequeño organismo, que posee muchas virtudes
que se ven más adelante.
El ciclo tiene una secuencia de eventos bajo estricto control de expresión génica.
Puede durar desde 10 días a 25 +- 2 centígrados y 65% de humedad relativa (HR)
hasta 2 semanas a 21 grados. Inicia con la oviposición donde una hembra puede
depositar entre 600 a 800 huevos en sus 40-60 días de vida. El huevo de Drosophila
mide menos de medio milímetro de largo, tiene apariencia traslúcida y presente 2
4 Sampedro, J. (2002). Deconstruyendo a Darwin. Ed. Crítica. Madrid, España.
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micrópilos que le permiten respirar y flotar en los jugos de frutas fermentadas donde
es ovopositado.
Teniendo claras dichas bases de la mutación se continuará explicando a detalle el
objeto de estudio (Drosophila melanogaster). Tomando en cuenta su ciclo de vida,
morfología e incluso las variantes que pueden existir. A pesar de ello a lo largo de
esta investigación solamente se tomarán en cuenta las silvestres (+++/+++ o +++/Y)
y la trimutante yellow-white-forked (ywf / ywf o ywf / Y).
El ciclo de vida de la Drosophila
melanogaster posee una gran
ventaja para la investigación
científica, ya que con este
organismo presenta varios estados
de desarrollo que pueden ser
expuestos a diversos tratamientos
experimentales (Fig.1).
Figura 1. Ciclo de vida de Drosophila
melanogaster. Imagen tomada de http://webs.ucm.es/info/genetica/grupod/Genenzima/ciclovid.htm
El huevo de Drosophila mide menos de medio milímetro de largo, tiene apariencia
translúcida y presenta dos micrópilos que le permite respirar y flotar en los jugos de
frutas fermentadas donde es ovopositado (Fig 1.1).
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Figura 1.1 Embrión de la Drosophila melanogaster. Fotografía tomada de
https://es.wikipedia.org/wiki/Embriogénesis_en_Drosophila#/media/File:DrosophilaKutikula.jpg
Del huevo eclosiona la larva que pasa por tres estadios: primero (24hrs), segundo
(48hrs) y tercero (72hrs). Durante la fase larvaria la ingesta de alimento es continua,
llegando a consumir de 3 a 5 veces su peso, incrementando de 0.5 a 0.2 mg (Fig.
1.2).
Figura 1.2 Larva de la Drosophila melanogaster. Fotografía tomada de
https://www.treknature.com/gallery/photo87571.htm
La pupa es considerada la fase reorganizativa del ciclo de la Drosophila, durante el
cual la mayoría de las estructuras larvarias son destruidas y las estructuras adultas
se desarrollan a partir de tejidos embrionarios llamados anlagen. La fase de la pupa
tarda alrededor de 4 días a 25°C (Fig 1.3)
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Figura 1.3 Pupa de Drosophila melanogaster. Fotografía tomada de
https://www.irbbarcelona.org/es/news/descubren-en-drosophila-el-mecanismo-que-regula-la-produccion-de-
hormonas-esteroides
Cinco días más tarde emerge el imago: una mosca con apariencia de adulto que no
volverá a cambiar físicamente y que es la fase reproductiva del ciclo. Sin embargo,
emerge del pupario, la mosca tiene un cuerpo alargado de color blanquecino y las
alas están enrolladas en el dorso. En unos minutos, expandirá el exoesqueleto para
que se endurezca al contacto con el aire y cambie a un color sepia; además, circulará
hemolinfa hacia las venas de las alas para extenderlas y dejar que sequen hasta
adquirir su consistencia rígida (Fig 1.4).
Figura 1.4 Drosophila melanogaster en su etapa adulta. Fotografía tomada de http://naukas.com/2010/10/06/la-
evolucion-suavecita-y-las-moscas-aceleradas/
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La morfología de la Drosophila melanogaster está compuesta por un variado número
de caracteres que son parte fundamental en la estructura de su sistema; entre sus
características principales se hacen presente las aristas, antena, ojo, ocelos, húmero,
mesonoto, escutelo, ala, palpo, probóscide, cuello, mesopleura, coxa 1,
esternopleura, ptenopleura, coxa 2, hipopleura, coxa 3, metanoto, halterio, abdomen,
setas dorsales, entre otros aspectos. Es necesario destacar las diferencias
morfológicas que se da entre hembras y machos en el abdomen expresadas en el
siguiente cuadro comparativo:
Figura 1.5 Anatomía de la Drosophila melanogaster. Fotografía tomada de
http://www.bioscripts.net/zoowiki/temas/30C/imagen_10.JPG
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Figura 1.6 Ejemplo de la tri mutante (ywf). Fotografía tomada de https://3.bp.blogspot.com/_8-
X6eYWO41g/TEI4nmmgzbI/AAAAAAAAEK0/gXaKZoi6s_I/s1600/Drosophila+melanogaster+salvatge.jpg
SEXO
Macho Hembra
- 7 Tergitos
- Halterio
- Espiráculo
- 5 Esternitos
- Pene
- Arco genital
- Placa anal
- Tonalidad del abdomen más
oscuro
- 8 Tergitos
- Halterio
- Espiráculo
- Esternitos
- Placa vaginal
- Placa anal
- Tonalidad del abdomen más claro
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Materiales y métodos.
Materiales para la elaboración de la sustancia conservadora:
• 1 L de agua corriente.
• 5 mL de una solución de ácidos propiónico: ortofosfórico (10.1) como
bactericida.
• 5 ml de Nipagín (Tegosept) al 12% como fungistático (12 y aforados a 100 ml
de solución con alcohol al 96%).
• Diluir la solución de ácidos en un poco de agua y agitar; añadir el Nipagin y
agitar. Añadir el resto del agua. Conservar en envase ámbar.
• Incubadoras a 25 ° C +/- 2 ° C.
• Frascos cremeros de 240 ml, esterilizados en calor húmedo a 20 atmósferas
por 20 min (autoclave u olla exprés). Marcarlos con los datos
correspondientes: cepa de Drosophila, fecha de cultivo, responsable de la
siembra.
• 1 caja de 125 gr de hojuelas de papa Maggi®.
• 1 balanza granataria.
MUTANTES CON MÚLTIPLES ALELOS
Ejemplares Características
Silvestre (+/+) Cuerpo Sepia, ojos rojos y alas de borde
continuo y más largas que el cuerpo
Vestigial (vg/vg) Alas pequeñas y atrofiadas
Beaded Serratia (Bd / +) Alas con borde “aserrado”
Curly (Cy) Alas “curvas o rizadas”
Multiple wing hairs (mwh/mwh) Tricomas (pelos) múltiples en el ala
Miniature (m/m) Alas “miniatura” del tamaño del cuerpo
ebony (e/e) Cuerpo color ébano
Yellow (y/y). Yellow-white-forked
(ywf)
Cuerpo amarillo, ojos blancos, setas
dorsales curvas.
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• Abatelenguas o espátula para pesar las hojuelas de papa.
• 1 probeta de 1000 ml, 2 pipetas de 10 ml y vasos de precipitado para
preparar la solución conservadora.
• Tapones para frascos de hule espuma (denso como el que se usa para usar
cojines) lavados con detergente enjuagados abundantemente o de algodón
con gaza que puede esterilizarse varias veces.
• 1 pedazo de neopreno (como el que se usa para mover el “ratón” de la
computadora).
• Cultivos de Drosophila melanogaster con 11-12 días de edad (contados
desde el trasvase de siembra)5.
Técnica de trasvasado
Instrucciones para una persona diestra:
• Poner el frasco con medio “nuevo” a la izquierda- tapón limpio y el frasco de
cultivo “viejo” que se va a trasvasar* a la derecha sobre neopreno
• Retirar el tapón del frasco entre “nuevo” vacía. Dar un ligero golpe al frasco de
cultivo “viejo” sobre el neopreno evitando que las moscas se atasquen en el
medio, - retirar el tapón “viejo” y colocarlo boca arriba aun –a continuación,
voltear el frasco “viejo” colocarlo boca a boca con el frasco “nuevo”.
Manteniendo las bocas de los frascos juntas con la ayuda de las manos,
golpear suavemente sobre el neopreno para que un número suficiente de
moscas pase del cultivo “viejo” al frasco con medio “nuevo”. Si el medio de
cultivo “viejo” está muy liquido – empieza a moverse, evitar que pase al
“nuevo”.
• Golpear con suavidad el frasco “nuevo” para que las moscas no vuelen,
separar los frascos, y taparlos de inmediato con sus respectivos tapones
5 Esta es la elaboración de la solución conservadora por profesoras de la licenciatura de biología de FES Iztacala. Véase Drosophila Melanogaster un modelo experimental, edit. México: Facultad de Estudios Superiores Iztacala, pp. 16,17
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• Incubar a 25° +- 2°C y 60% humedad relativa (HR) hasta la emergencia de los
imagos, es decir, 10 días aproximadamente.6
OBJETIVO
• Conocer las características morfológicas de la mosca de la fruta, Drosophila
melanogaster, su cultivo y manejo; con el fin de inducir una mutación
(reversión) con un agente mutágeno (rayos UV) en una línea de yellow-white-
forked.
JUSTIFICACIÓN
• En este semestre en la clase de biología abordamos los principales tipos de
mutación y su papel en la variación de los organismos, posteriormente y a partir
de una visita guiada al laboratorio de Genética Toxicológica de la FES Iztacala
despertó nuestro interés por conocer el trabajo con mosquitas mutantes y cómo
se cultivan (silvestres y mutantes), y así mediante donación de cultivos de
silvestres y mutantes empezar a trabajar.
HIPÓTESIS.
• Si a la cepa trimutante ywf de Drosophila melanogaster, la exponemos a luz
ultravioleta con una longitud de onda de 365 nm por 3 minutos y en vista de
que son mutaciones recesivas entonces se verán alteradas en sus
características morfológicas con la posibilidad de obtener revertantes.
• Así mismo si tenemos una línea silvestre (+/+) de Drosophila melanogaster, y
la exponemos a luz ultravioleta con una longitud de onda de 365 nm por 3
minutos y en vista de que son mutaciones recesivas entonces se verán
alteradas en sus características morfológicas con la posibilidad de obtener
revertantes.
6 La técnica de trasvasado que se utiliza comúnmente para el cultivo de Drosophilas Melanogaster. Véase Drosophila Melanogaster un modelo experimental, edit. México: Facultad de Estudios Superiores Iztacala, p. 18
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DESARROLLO.
Calendarización de actividades.
Noviembre 2017 Diciembre 2017 Enero 2018 Diciembre 2018
• Inicio de planeación del
proyecto.
• Primera visita de asesoramiento a
FES Iztacala. Entrega de las
dos cepas.
• Accidente y contratiempo en el primer conjunto de
Drosophila melanogaster a
causa de mortalidad
poblacional.
• Segunda entrega de dos cepas de
Drosophila melanogaster.
• Primer trasvase de las Drosophilas melanogaster en
el medio de propagación.
• Segundo trasvase de las Drosophilas
melanogaster (+/+)
• Se realizó la compra de los
materiales para la elaboración de la
solución conservadora.
• Día de planeación acerca del trabajo de investigación
o Planeación de
visita a Ciudad Universitaria.
o Obtención de
información acerca de las mutaciones.
o Se pospuso el
trasvase de las cepas de
Drosophila melanogaster y se arreglaron detalles de la investigación.
o Se encontró anomalías en los
cultivos que tenía a su
disposición el equipo.
o Suspensión de
actividades del equipo.
o Último trasvase del año de cepas de
Drosophila melanogaster.
(Se trasvasaron
dos cultivos por precaución).
▪ Se retoma las
actividades para la
elaboración de proyecto.
▪ Día de trasvase
general, para la propagación.
▪ Se realiza la
radiación con luz ultravioleta.
➢ Primera revisión de
ejemplares a través de microscopios estereoscópicos.
➢ Segunda revisión de
ejemplares a través de microscopios estereoscópicos.
➢ Tercera revisión de
ejemplares a través de microscopios estereoscópicos
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Figura 1.7
Figura 1.8
Figura 1.9
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Figura 2.0
Figura 2.1
Figura 2.2
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Figura 2.3
Resultados.
Drosophilas Melanogaster radiadas con rayos UV.
Generaciones Ejemplares Silvestres (+/+) Ejemplares yellow-white-forked (ywf)
1 23-Nov 2017
13-Dic 2017
11-Ene 2018
Nuestras observaciones no
encontraron cambios visibles en los
ejemplares por lo cual se entiende que
no hubo mutación.
Figura 2.4 Revisión de ejemplares
Ninguno de los 3 marcadores tuvo
modificaciones visibles en las Drosophilas
radiadas, por lo tanto, no se encontró
mutación.
Figura 2.5 Revisión de ejemplares
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Análisis de resultados.
Basándose en el objetivo el cual consiste principalmente en inducir una mutación (en
la Drosophila melanogaster) existió una pequeña variación en las yellow white forked
esta trimutante, es llamada de este modo ya que presenta tres marcadores recesivos,
los cuales son caracteres fenotípicos de nuestra muestra de estudio. Es decir, tiene
un marcador “y” el cual indica que su cuerpo es de una tonalidad amarilla; por otro
lado, el marcador “w” nos hace referencia al color de los ojos los cuales son blancos,
finalmente el marcador “f” nos señala que tienen setas dorsales curvas). Analizando
los resultados obtenidos nos dimos cuenta que en la muestra de las silvestres (+/+)
no hubo cambio, sin embargo en la trimutante nos percatamos de una alteración en
una de sus alas, la cual sobrepasaba la media, con esto hacemos referencia a que
una de ellas tenía mayor tamaño, por otro lado en una segunda muestra notamos que
una de ellas con contenía el marcador “f”, vimos que a diferencia de la población esta
no contenía las setas curvas, sino que llegaba a parecerse a las setas de una
silvestre, es decir que surgió una regresión en dicho marcador. Como sabemos una
mutación generalmente no se muestra en su totalidad, muchas veces solamente se
presenta en una pequeña proporción.
Del 2 al 28-Nov.
2017.
Del 3 al 11-Dic.
2017.
Nuestras observaciones nuevamente
nos rectificaron la inexistencia de
cambio en las Drosophilas
melanogaster (+/+).
2 frascos no tuvieron ninguna alteración, sin
embargo 1 de ellos que contaba con 34
ejemplares si la tuvieron en 2 casos. Uno de
ellos es el tamaño de una de las alas que
supera la media y el otro caso es que el
marcado f que hace referencia a las setas
dorsales de la parte superior de la espalda no
tenía la forma de tenedor hacia arriba, sino
estaba en un sentido contrario (abajo) así
como las Drosophilas melanogaster (+/+).
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Las Drosophilas melanogaster ywf muestran una tonalidad más clara cuando nacen,
además de mostrar un instinto de supervivencia cuando estas se encuentran en las
pupas cuando estuvieron siendo analizadas por nosotros ya que existe la hipótesis
que los movimientos que realizamos con el material de estudio probablemente llevaba
a nuestros ejemplares ywf a hacer lo posible por salir de la pupa.
Figura 2.6 Ejemplar ywf recién nacida.
A lo largo del desarrollo de la actividad experimental se utilizó variedades de
materiales; ya sea de laboratorio como soluciones, probetas, vasos de precipitado,
agitadores, etc. así como materiales caseros.
A continuación, un listado de todo el material utilizado en la investigación:
● Para todos los trasvases se utilizó:
○ 22 frascos vacíos y estériles de Café Olé®.
○ 18 gasas.
○ 18 ligas elásticas.
○ 2 cajas de 125 gramos de puré de papa Maggi® (5 gramos por
cada frasco).
○ 1 L de solución conservadora (20 ml por cada frasco de solución
conservadora).
○ 4 paquetes de algodón.
○ 1 pipeta de vidrio graduada de 10 ml.
○ 1 probeta de 20 ml.
○ 1 embudo.
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○ 1 balanza granataria.
● Para la creación de la solución conservadora se utilizó:
○ 1 probeta de plástico de 2000 ml.
○ 1 pipeta de vidrio graduada de 10 ml.
○ 1 vaso de precipitado de 500 ml.
○ 1 vaso de precipitado de 250 ml.
○ 1 vaso de precipitado de 150 ml.
○ 1 vaso de precipitado de 50 ml.
○ 1 probeta de 10 ml.
○ 1 probeta de 50 ml.
○ 1 probeta de 5ml.
○ 1 L de agua de la llave.
○ 1 envase de ámbar (envase de caguama).
○ 40 gramos de Nipagín (Tegosept), del cual se utilizaron 12
gramos.
○ 100 ml de alcohol al 96%.
○ 5 ml de ácido propiónico.
• Instrumentos usados:
o 1 paquete de palillos.
o 4 microscopios estereoscópicos.
o 1 lampara de luz ultravioleta de 365 nanómetros.
o 1 estufa de laboratorio a 25°C +-2.
A lo largo de la investigación, la bata de laboratorio fue fundamental y un requisito.
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Conclusiones
Con base en las hipótesis ya establecidas encontramos que en una trimutante (ywf)
el marcador “f” (forked el cual se caracteriza por tener setas dorsales curvas) tuvo una
reversión ya que originalmente deberían ser curvas, sin embargo, se presentaron
como setas dorsales normales asimilándose de este modo a las de las silvestres (+/+).
Por lo tanto, llegamos a la conclusión de que una de nuestras hipótesis se cumplió,
ya que una mosca de la cepa de las yellow-white-forked, tuvo una reversión que afectó
una característica fenotípica, en este caso de setas dorsales curvas (f) a setas
dorsales normales.
También se comprobó que para obtener una mutación se necesita afectar a un
número alto poblacional y/o generaciones para suscitarse la mutación que afecta a
un fenotipo en algún ejemplar de Drosophila melanogaster, en especial si este posee
caracteres genéticos dominantes como es el caso de la silvestre (+/+).
Se aprendió la técnica de cultivo de la Drosophila melanogaster, su morfología, su
ciclo de vida, sus alelos y el método de inducción de una mutación exógena, en este
caso con luz UV de 365 nanómetros de longitud de onda.
Se sugiere que la investigación se podría extender con el estudio de mutaciones a
Drosophilas melanogaster (+/+) a características fenotípicas recesivas como por
ejemplo yellow, white, forked, etc.
“Todos somos unos genios, pero si juzgas a un pez por su habilidad de escalar un
árbol vivirá su vida entera creyendo que es estúpido”. Albert Einstein.
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Cibergrafía
http://flybase.org/
http://www.bbc.com/mundo/noticias-41512082
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