UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO BIOLOGICAS
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UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE MICROBIOLOGIA Y PARASITOLOGÍA
Frecuencia de Erysipelothrix sp en cerdos
beneficiados en el camal del Distrito de
Florencia de Mora – Trujillo 2016
TESIS
PARA OBTENER EL TÍTULO PROFESIONAL DE
BIÓLOGO - MICROBÍOLOGO
AUTOR: Br. MIRELLY NAYARIT SILVA MUJICA ASESORA: Dra. MANUELA NATIVIDAD LUJÁN VELÁSQUEZ
TRUJILLO – PERU 2016
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Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE
TRUJILLO
Dr. ORLANDO GONZÁLES NIEVES
RECTOR DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE
TRUJILLO
Dr. RUBÉN VERA VELEZ
VICE-RECTOR ACADÉMICO DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL
DE TRUJILLO
Dr. STEBAN ALEJANDRO ILICH ZERPA
SECRETARIO GENERAL DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE
TRUJILLO
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AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS
BIOLÓGICAS
Dr. FREDDY ROGGER MEJIA COICO
DECANO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
Dr. WILLAN ZELADA ESTRAVER
SECRETARIO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
Dra. BERTHA SORIANO BERNILLA
DIRECTORA DE ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL
DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA
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DEDICATORIA
A DIOS Por regalarme la vida, ser mi guía espiritual, cuidarme y darme la
fortaleza necesaria para seguir cumpliendo con mis metas y objetivos trazados.
A MIS QUERIDOS PADRES Melina Mujica Alfaro Y César Silva Quiroz,
quienes fueron participes en mi formación y mis valores quienes durante todos estos
años confiaron ciegamente en mí, hasta convertirme en lo que soy ahora; los amo a
ustedes y a mi hermana Medaly.
A MIS TIOS Edgar Mujica Alfaro, John Mujica Alfaro, Aldo Mujica Alfaro
y Dina Mujica Alfaro, por creer siempre en mí, por su apoyo incondicional y
desinteresado al haber contribuido con mi formación profesional.
A LA MEMORIA DE Mi siempre amado y recordado Mauricio
Jesús Mujica Huamán, quien a su corta edad me enseño a mostrar siempre
una sonrisa y luchar siempre hasta el final, hasta donde nuestras propias
fuerzas se agotan.
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AGRADECIMIENTO
A mi profesora asesor Dra. Manuela Natividad Lujan Velásquez, de la
Universidad Nacional de Trujillo por sus orientaciones y apoyo incondicional
para la realización del presente trabajo de investigación.
A los servicios brindados por el Departamento Técnico Microbiología y
Parasitología, en especial al Sr T.M. Carlos Alberto Guzmán Delgado por su gran
apoyo y asistencia técnica presentada durante este proceso de investigación .
A Mis amigos Mario Trelles Zegarra , Omar Rosas Alfaro, Reyna Simón
Gómez , Roxana Rodríguez Pérez , Marieta Orbegoso y Manuel Rodríguez Aguilar
por sus sabios consejos, constante motivación y desinteresada amistad, en especial
por su apoyo incondicional durante todo el tiempo que duró la presente
investigación.
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PRESENTACIÓN
Señores miembros del jurado:
En cumplimiento con las disposiciones establecidas en el reglamento de
grados y títulos de la Universidad Nacional de Trujillo, pongo a vuestra
consideración y criterio el presente trabajo de tesis titulada: Frecuencia de
Erysipelothrix sp en cerdos beneficiados en el camal del distrito de Florencia
de Mora - Trujillo 2016, con lo cual pretendo obtener el título de Biólogo-
Microbiólogo.
Esperando que el presente sea de vuestra aprobación.
Br. Mirelly Nayarit Silva Mujica.
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MIEMBROS DEL JURADO
Dr. RAÚL ANHUAMÀN AZABACHE
PRESIDENTE
MsC. EDUARDO MUÑOZ GANOZA
SECRETARIO
Dra. MANUELA LUJÁN VELÁSQUEZ
VOCAL
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APROBACION
Los profesores que suscriben, miembros del jurado dictaminador, declaran que el
presente informe de tesis ha cumplido con los requisitos formales y fundamentales,
siendo aprobado por unanimidad.
Dr. RAUL ANHUAMÁN AZABACHE
PRESIDENTE
MsC. EDUARDO MUÑOZ GANOZA
SECRETARIO
Dra.. MANUELA LUJÁN VELÁSQUEZ
VOCAL
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DEL ASESOR
La q u e suscribe, asesor de la presente tesis titulada: Frecuencia de
Erysipelothrix sp en cerdos beneficiados en el camal del distrito de
Florencia de Mora - Trujillo 2016
CERTIFICA:
Que la investigación ha sido desarrollada de conformidad con su correspondiente
proyecto de tesis y con las orientaciones pertinentes.
El informe ha sido redactado bajo mi asesoramiento, acogiendo las observaciones
y sugerencias alcanzadas. Por lo tanto autorizo al bachiller Mirelly Nayarit
Silva Mujica a continuar con los procedimientos según sus fines.
Dra. Manuela Luján Velásquez
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INDICE
AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO ii
AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIA BIOLOGICAS iii
DEDICATORIA iv
AGRADECIMIENTO v
PRESENTACION vi
MIENBROS DEL JURADO vii
APROBACION viii
DEL ASESOR ix
INDICE x
RESUMEN xi
ABSTRACT xii
I. INTRODUCCION 1
II. MATERIAL Y METODO 5
2.1. Material biológico 5
2.2 Procedimiento 5
2.2.8 Análisis de datos 8
III.RESULTADOS 9
IV.DISCUSION 11
V.CONCLUSIONES 15
VI.REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 16
ANEXOS 21
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RESUMEN
El objetivo de la presente investigación fue determinar la frecuencia de Erysipelothrix
sp en cerdos beneficiados en el camal del distrito de Florencia de Mora - Trujillo 2016,
para ello se realizó un muestreo sistemático al azar, recolectándose 196 muestras
obtenidas en hisopado de tonsilas de Sus scrofa domesticus “porcino”, las cuales
fueron colocadas en tubos de ensayo conteniendo Caldo Glucosa Azida de Sodio e
incubadas a 37ºC durante 48 horas . Posteriormente, se evaluó la capacidad hemolítica
en Agar Soya Tripticasa con azida de sodio suplementada con sangre. Para la
identificación de género y especie bacteriana se realizó coloración Gram, pruebas de
catalasa y bioquímica en Agar Tres Azúcares Hierro. Se determinó que la frecuencia
Erysipelothrix sp fue de 32.65% de los cuales el 13.26 % corresponde a E.
rhusiopathiae y el 19,39% a E. tonsillarum .
Palabras clave: Erisipela porcina, Erysipelothrix rhusiopatiae,
Erisipelothrix tonsillarum.
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ABSTRACT
The objective of this research was to determine the frequency of Erysipelothrix sp in
pigs benefited in the slaughterhouse district of Florencia de Mora - Trujillo 2016 , to
do a systematic random sampling 196 samples obtained from swabbing the tonsils of
Sus scrofa domesticus , was performed ,collecting " pig " domesticus , which were
placed in test tubes containing Sodium azide Glucose broth and taken to the lab to be
incubated at 37ºC during 48 hours. Subsequently, the hemolytic capacity assessment,
which was made in Trypticase Soy Agar with sodium azide and supplemented with
blood .For the identification of bacterial species and genus gram staining, catalase and
biochemical tests, was conducted in Triple Sugar Iron Agar t. It was determined that
Erysipelothrix sp frequency was 32.65 % of which corresponds to 13.26 % E.
rhusiopathiae and E. tonsillarum 19.39 %.
Key words: Swine erysipelas ,Erysipelothrix rhusiopatiae, Erisipelothrix
tonsillarum.
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I. INTRODUCCIÓN
El género Erysipelothrix incluye tres especies Erysipelothrix inopinata,
Erysipelothrix tonsillarum y Erysipelothrix rhusiopatiae (E.insidiosa). E. rhusiopatiae
es la única especie patógena para seres humanos y la de mayor importancia veterinaria
por ser el agente etiológico de la erisipela porcina la cual constituye una de las
enfermedades de mayor importancia en la industria ganadera1,2,3.
Erisipela porcina “Mal Rojo” o “enfermedad de la piel de Diamante” es una
enfermedad infectocontagiosa de distribución mundial que provoca grandes pérdidas
económicas en explotaciones porcinas. Se ha reportado en países de Europa, Asia,
Canadá Australia, Nueva Zelanda, Estados Unidos y también en Jamaica, Guyana,
Surinam, Brasil, Argentina, Chile y Perú4, 5,6. En el Perú, la erisipela porcina es
registrada por el Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA) 7 como una de las
principales enfermedades en ganado de este tipo.
Los animales de cualquier edad son susceptibles, aun antes del destete, sin
embargo la mayor frecuencia se produce en animales mayores de tres meses hasta el
peso del beneficio8,9,10.
El principal reservorio natural es el cerdo siendo las tonsilas y la válvula
ileocecal las fuentes más importantes de infección en los portadores (ciclo endógeno).
Las heces y la saliva son la principales vías de eliminación en los portadores, al igual
que los animales enfermos, aunque estos últimos con mayor profusión11 .
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Un reservorio telúrico constituye el principal reservorio extra -animal (ciclo
exógeno), debido a una continua contaminación del suelo por los residuos orgánicos
animales 12. El estado de portador permanente se da en animales con presencia de la
enfermedad crónica y la vacunación no elimina dicha condición debido a la variedad
de serotipos circulantes 13.
El contagio en los animales se produce por diferentes vías: secreción oral, nasal
y venérea e incluso por vía percutánea, aunque normalmente el mecanismo de
transmisión es indirecto, mediante la ingestión de agua y alimentos contaminados14.
E. rhusiopathiae produce una enfermedad ocupacional en el hombre
denominada Eripeloide o Erisipeloide15. Sobre todo en personas con empleos
estrechamente relacionados con animales, sus productos o residuos16. Las personas
con mayor riesgo de exposición son carniceros, matarifes, veterinarios, agricultores,
pescadores cocineros que manipulan carne de animales contaminados.
Es un microorganismo Grampositivo patógeno oportunista, compuesto por los
serotipos 1a,1b,2ª,2b,4-6,8,9,11,12,15-17,19,21 y tipo N que sobrevive
multiplicándose intracelularmente dentro de macrófagos y leucocitos
polimorfonucleares (PMN)debido a sus enzimas antioxidantes que le confieren
protección frente a las especies reactivas del oxígeno y fosfolipasas 17. Produce varios
factores que pueden aumentar la virulencia de estos microorganismos. La
neuraminidasa, enzima que libera residuos de ácido siálico terminal de glucolípidos y
glicoproteínas, al parecer funciona promoviendo la fijación de las bacterias y ulterior
invasión celular de E. rhusiopathiae 18.
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La mayor propagación en los tejidos puede deberse a la producción de
hialuronidasa por el microorganismo aunque el papel de esta enzima en la patogenia
de la enfermedad, no es muy claro. E. rhusiopsthiae también produce una capsula de
polisacárido la cual tiene un peso molecular de 14 a 22 KDa y funciona ayudando al
microorganismo a resistir la fagocitosis por los leucocitos polimorfonucleares19.
En presencia del suero normal, los macrófagos pueden fagocitar a este
microorganismo pero la cápsula les permite sobrevivir y reproducirse
intracelularmente por la inhibición de la explosión oxidativa dentro de los macrófagos
y una producción reducida de metabolitos oxidativos reactivos 20.
En la realidad del siglo XXI El Mal Rojo es frecuente en países de ganaderías
porcinas desarrolladas, manifestándose en Norteamérica, Australia y Europa,
particularmente en la cuenca mediterránea y los países Centro Europeos21, 22. En el
ámbito del sector español y la Unión europea esta enfermedad se presenta en un 40%
de cerdos que son portadores asintomáticos23, mientras en Inglaterra hasta el 50% de
cerdos pueden ser identificados como portadores asintomáticos24.
En Sudamérica se ha aislado el agente etiológico, de las amígdalas de hasta el
30% de cerdos aparentemente sanos25. Estudios realizados en Chile afirman que de
400 cerdos de un matadero se aisló la bacteria de 53,5% de muestras de amígdalas y
el 25,6% de las muestras de suelo y las deposiciones26. En el Perú, esta enfermedad
fue reportada por SENASA en las provincias de Chepén y Pacasmayo del
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departamento de La Libertad la cual causó grandes pérdidas económicas en la industria
ganadera en Marzo del 2010 27.
Considerando que las bacterias pertenecientes al género Erysipelothrix son
causantes de enfermedades que generan pérdidas económicas en la industria porcina,
problemas de salud pública y que afectan no solo a los animales sino también a los
humanos, el estudio de este microorganismo es importante por lo que en la presente
investigación se planteó como objetivo determinar la frecuencia de Erysipelothrix
sp en cerdos beneficiados en el camal del distrito de Florencia de Mora - Trujillo
2016.
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II. MATERIAL Y MÉTODOS
2.1 Material Biológico
Se trabajó con 196 ejemplares de Sus scrofa domesticus “porcino” sacrificados en
el camal del distrito de Florencia de Mora, a los cuales se les realizó un hisopado de
las tonsilas, tomando una muestra por cada ejemplar.
2.2 Procedimiento
2.2.1 Determinación del tamaño de muestra para estimar la cantidad de
ejemplares a muestrear28.
Se determinó el tamaño de muestra mediante la siguiente fórmula:
𝑛 =𝑧2 𝑝. 𝑞. 𝑁
Ne + 𝑧2 𝑝. 𝑞
Donde
Z= Nivel de confianza 1,96
p= Probabilidad a favor 0,50
q= Probabilidad en contra 0,50
N= Universo
e= Error de estimación 0,05
n= Tamaño de muestra.
𝑛 =(196)2 (0.5)(0.5). (400)
(400)(0.05) + (1.96)2 (0.50)(0.5)
𝑛 = 196
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2.2.2 Recolección de las muestras de hisopado de tonsila
Las muestras se obtuvieron mediante hisopado de las tonsilas de los cerdos
beneficiados en el camal del distrito de Florencia de Mora – Trujillo (Anexo
3).
2.2.3 Transporte de las muestras e Incubación en medio Líquido.
Las muestras fueron colocadas en tubos de ensayo de 16 x 150 mm
conteniendo 10 ml de Caldo Glucosa Azida de Sodio al 0,1%, las cuales
fueron llevadas al laboratorio para ser incubadas a 37ºC con una atmosfera
de CO2 al 5% por un tiempo de 48 horas. En caldo se observó una ligera
turbidez a las 24 horas, así como un incipiente precipitado a las 48 horas
(Anexo 4 y 5).
2.2.4 Aislamiento en medio sólido
Después de haber transcurrido el tiempo de incubación, las muestras se
repicaron en Agar Soya Tripticasa con Azida de Sodio al 0.1% suplementado
con sangre al 5% mediante la técnica de estriado y se incubaron a 37 °C con
una atmosfera de CO2 al 5% por 24 h 29,30,31 . Luego de transcurrido este
tiempo se observó un halo de color verdoso alrededor de algunas colonias,
correspondientes a una alfa hemolisis, característica del género Erysipelothrix
sp 32 (Anexo 6 y 7).
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2.2.5 Examen Microscópico
Se seleccionaron las colonias con morfología circular, convexa, lisa y rugosa
de aproximadamente (0.1 a 0.5 mm) traslucidas compatibles con el género
Erysipelothrix sp33 y se procedió a realizar la coloración de Gram con el fin
de identificar la morfología microscópica y grupo al que pertenecen dichas
bacterias (Anexo 8).
2.2.6 Preparación de cultivo puro
Una vez identificada la morfología microscópica de la colonia se repicó en
Agar Soya Tripticasa con azida de sodio al 0.1% suplementado con sangre al
5% e incubó en microaerofilia a 37 °C, así mismo en Agar Nutritivo a 37 °C
por 24 horas 34, para obtener un cultivo puro y continuar con las siguiente
parte de los procedimientos .
2.2.7 Identificación de las colonias aisladas:
Posteriormente se realizó la identificación de las colonias aisladas mediante:
Prueba de la Catalasa
Se colocó una gota de peróxido de hidrógeno al 3% en una lámina portaobjetos
conteniendo una colonia bacteriana y se mezcló con H2O2 35. Para la
interpretación la producción de burbujas es una reacción positiva, mientras la
ausencia de estas es una reacción negativa (Anexo 9)
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Bioquímica
La siembra se realizó en Agar Triple Sugar Iron (TSI) 36,37,38 é incubó de 18-
24 horas. Transcurrido el tiempo se procedió a dar lectura a los tubos, primero
la parte del pico de flauta y en segundo lugar la reacción del fondo39.
Para el caso de Erysipelothrix rhusiopatie se observó producción de H2S, y
producción de ácido a partir de glucosa. Mientras en el caso de, Erisipelothrix
tonsillarum producción de ácido a partir de glucosa y sacarosa. (Anexo 10 y 11)
2.2.8 Análisis de Datos
El diseño estadístico considero un muestreo sistemático al azar con una muestra total
de 196 ejemplares de Sus scrofa domesticus “porcino” 40y se utilizó estadística
descriptiva para determinar la frecuencia en base a los porcentajes41.
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III. RESULTADOS
De un total de 196 muestras extraídas de las tonsilas de ejemplares de Sus scrofa
domesticus “porcino” sacrificados en el camal del distrito de Florencia de Mora
se determinó que el 32.65% (64) corresponden a bacterias del género
Erysipelothrix sp(Tabla 1), de las cuales 13.26 % (26) pertenecen a la especie
E.rhusiopathiae y 19,39% (38) a la especie E. tonsillarum (Tabla 2).
Tabla 1. Porcentajes de muestras positivas y negativas procedentes de cerdos
sacrificados en el camal de Florencia de Mora compatibles con el
género Erysipelothrix sp
Muestras
Compatibles a género
Erysipelothrix sp
Nº %
positivas
64
32.65
negativas
132
67.35
Total
196
100
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Tabla 2. Porcentajes de muestras de tonsilas procedentes de cerdos
sacrificados en el camal de Florencia de Mora positivas
compatibles a E.rhusiopathiae y E. tonsillarum
Bacteria
Porcentaje de muestras positivas
Nº
%
E.rhusiopathiae
26
13.26
E. tonsillarum
38
19.39
Total
64
32.65
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IV. DISCUSÓN
En este estudio se utilizaron ejemplares de Sus scrofa domesticus “porcino”
para extraer las muestras de tonsilas debido a que el cerdo actúa como portador y
es la especie más sensible a Erysipelothrix sp, presentando notables variaciones
en su sensibilidad (pueden enfermar a cualquier edad) aunque los lechones con
inmunidad calostral o los adultos que hayan soportados reiteradas infecciones
subclínicas desarrollan altos niveles de resistencia a las formas agudas 42,43.
La especie porcina es reservorio natural de E. rhusiopathiae, los cerdos
aparentemente sanos portan con frecuencia el germen en las amígdalas, válvula
íleocecal, e incluso en otros órganos (piel, ganglios ilíacos, riñones, bazo),
eliminándolo en las heces y descargas oronasales 44.
En lugares donde el microorganismo es endémico los cerdos son expuestos a
E. rhusiopathiae cuando son pequeños y tienen anticuerpos maternos, por tanto,
desarrollan inmunidad activa sin enfermedad visible, esto puede explicar el hecho
de que los cerdos se encontraban aparentemente normales convirtiéndose en
portador es asintomáticos 45.
En la especie porcina la tonsila palatina o amígdala se ubica en la zona caudal
del paladar blando; esta estructura actúa como primera línea de defensa
inmunológica para el organismo y es el órgano más indicado para el muestreo, por
ser el lugar de colonización de Erysipelothrix 46.
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E.rhusiopathiae posee factores de virulencia tales como hialuronidasa y
neuraminidasa, las que permiten la invasión dentro del huésped. La primera
facilita la diseminación dentro de los tejidos y la segunda produce la escisión del
ácido siálico, molécula que se distribuye ampliamente en la superficie de células
eucariotas y podría servir como un requerimiento nutricional para Erysipelothrix
47.
El caldo glucosa - azida de sodio se usó como medio de enriquecimiento
selectivo. Se fundamenta en que la glucosa va a ser el carbohidrato que va a ser
fermentado por la bacteria y la azida de sodio disminuye la carga microbiana
acompañante 48.
El aislamiento de Erysipelothrix se hizo en agar soya tripticasa- azida de
sodio más sangre 5%, este medio se fundamenta porque en su composición
contiene peptona de caseína, peptona de harina de soya, cloruro de sodio y agar;
los dos primeros componentes proporcionan a la bacteria fuente de nitrógeno,
mientras tanto el cloruro de sodio tiende a mantener el
equilibrio osmótico y la sangre es el componente de enriquecimiento para
determinar la hemólisis y hacer un diagnóstico diferencial con otros
microorganismos 49,50.
Para las pruebas bioquímicas se utilizó El Agar Triple sugar iron, (TSI). La
composición de este medio se fundamenta en que el extracto de carne y la
pluripeptona, aportan los nutrientes adecuados para el desarrollo bacteriano. La
lactosa, sacarosa y glucosa son los hidratos de carbono fermentables. El tiosulfato
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de sodio constituye es el sustrato necesario para la producción de ácido
sulfhídrico, el sulfato de hierro y amonio, es la fuente de iones Fe3+ , los cuales se
combinan con el ácido sulfhídrico y producen sulfuro de hierro, de color negro.
El rojo de fenol es el indicador de pH, y el cloruro de sodio mantiene el balance
osmótico.
Por fermentación de azúcares, se producen ácidos, que se detectan por medio
del indicador rojo de fenol, el cual vira al color amarillo en medio ácido. El
tiosulfato de sodio se reduce a sulfuro de hidrógeno el que reacciona luego con
una sal de hierro proporcionando el típico sulfuro de hierro de color negro51,52.
La producción de H2S en este medio constituye la prueba bioquímica más
significativa, E. rhusiopathiae se distingue de otros bacilos Gram positivos, por
el tipo de hemólisis, ausencia de movilidad,esporas y catalasa, siendo el único
bacilo Gram positivo, microaerófilo que produce H2S cuando se inocula en
(TSI/KIA)53.
Una segunda especie, E tonsillarum, proveniente de porcinos, descrita por
Takahashi y col 54, se diferencia sobre todo por la homología DNA-DNA y
también por la capacidad de fermentar la sacarosa.
Los resultados obtenidos en el estudio corresponden a cerdos portadores
clínicamente sanos, es decir mantienen el germen en su cuerpo y pueden
transmitirlo a otros sin padecer la enfermedad, representando la fuente más
importante de infección. Pero cuando éstos sufren inmunodepresión por efectos
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estresantes como cambio brusco de alimentación, cambios de temperatura, ser
transportados a largas distancias o cualquier otra circunstancia se convierten en
animales enfermos, la fuente más importante de infección55, 56. Por lo cual El
Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA) por Resolución 422/2003
incluye a Erisipela Porcina dentro de la “Lista de las enfermedades animales” que
deben ser notificadas. Debido a ello la importancia del estudio de este
microorganismo57.
En estudios realizados por Carrada58 se reportan que de 100 cerdos
beneficiados en el 30% de ellos se aisló la bacteria, similar a los resultados
obtenidos en la presente investigación reportan que el 32.65% de cerdos
beneficiados presentó la bacteria en estudio Erysipelothrix.
Los datos de frecuencia obtenidos en la presente investigación tienen
similitud en el porcentaje hallado, en otras investigaciones en las cuales se
determinó la frecuencia de esta bacteria, se reportó en Inglaterra con un 50%,
España 40% y en el caso de Chile Sudamérica, con un 30% de ejemplares
porcinos asintomáticos, portadores de este microorganismo , por ende un alto
porcentaje de los cerdos constituyen importantes reservorios de la enfermedad
,debido a que las bacterias son eliminadas con las heces de los animales
portadores o enfermos , contaminándose así el medio ambiente , lo cual viene a
constituir una fuente importante de infección .la persistencia en el suelo es
variable como se indicó , siendo influida por una serie de factores como el PH y
la temperatura 23,24,25..
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V. CONCLUSIÓN
La frecuencia del genero Erysipelothrix sp es de 32.62%, siendo de frecuencia
alta, encontrándose que E. rhusiopathiae representa el 13.26 % y E. tonsillarum
el 19,39%.
Recomendaciones
Debido a la exposición que surge de la actividad laboral de las personas , por la
manipulación o el uso deliberado del agente biológico, éste puede llegar al
trabajador a través del contacto con animales infectados o sus productos, así como
el contacto con elementos o medios donde dicho agente vive o puede sobrevivir
(materiales, agua, suelo, alimentos, residuos,etc )por lo que se recomienda
mantener siempre la higiene en los espacios donde se ubican los animales , y usar
protección para las manos al momento de manipular el animal , su carne u otros
medios que tengan contacto directo con el animal..
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ANEXOS
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Anexo 1. Características fenotípicas para la identificación de especies de
Erysipelothrix
Anexo 2 .Composición del medio caldo glucosa azida de sodio
Característica
E.rusiopathiae
E. tonsillarum
Hemolisis
Ninguna,α
Ninguna,α
catalasa - -
H2S en agar + +
Producción de ácido a partir de
glucosa
+ +
Producción de ácido a partir de
sacarosa
- +
Formula
g/L
Tripteina
Extracto de carne
Glucosa
Cloruro de sodio
Azida sódica
PH final 7-7.4
15
4.8
7.5
7.5
0.1
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Anexo 03. Toma de muestra de hisopado de tonsila de Sus scrofa domesticus.
Anexo 04. Sistema de anaerobiosis para incubación de las muestras .
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Anexo 05. Precipitado y turbidez en medio de cultivo caldo glucosa azida.
Anexo 06. Cultivo en Agar soya tripticasa suplementado con sangre.
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Anexo 07. Colonias alfa hemolíticas compatibles a Erysipelothrix en agar sangre.
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Anexo 08 .Observación microscópica de bacilos Gram ( + )largos y
curvados, compatibles a Erysipelothrix.
Coloración: Gram
Aumento: 1000A
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Anexo 09. Prueba de la catalasa .Erysipelothrix es catalasa negativo.
Anexo 10 E. rhusiopathiae E. en agar TSI.(K/A) con producción de H2S.
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Anexo 11 E. tonsillarum E. en agar TSI.(A/A) con producción de H2S.
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