UE2 : Biologie cellulaire Chapitre 2 : Méthodes d’études...
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Chapitre 2 :Méthodes d’études
en biologie cellulaireDocteur Laurent PELLETIER
Année universitaire 2010/2011Université Joseph Fourier de Grenoble - Tous droits réservés.
UE2 : Biologie cellulaire
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Méthodes d’études
• Cellule animale : 10-20 µm
• Microscopie photonique0,2 m à 1 mm
1838 : Doctrine cellulaire de Schleiden et Schwann
• Microscopie électronique1940 : 1-2 nm
• Fixation, colorations
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Méthodes d’étude
• DNA : 1944 O.T. Avery1953 J.D. Watson & F.H.C. Crick
• Genetic code : 1961-1966 M. Nirenberg & H.G. Khorana
• DNA cloning : 1972 P. Berg• Hybridization : 1975 E.M. Southern • Fast Sequencing : 1977 W. Gilbert & F. Sanger • PCR : 1983 K. Mullis • Transgenesis : 1993 S. Spielberg• Human genome sequenced : 2001
Historique
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Méthodes d’étude
Lancet 2010; 375: 1525–35
Aujourd’hui…
Séquençage du génome d’un patient :- Infarctus du myocarde- Diabète type II- cancers
Cet exemple n’est pasà apprendre
par coeur
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Méthodes d’étude
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Méthodes d’étude
Même génomeAdipocyte Neurone
Expression différente
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Méthodes d’étude
Genome Statique, connu
Transcriptome Dynamique, dépendant du context, inconnu
Proteome Dynamique, dépendant du context, inconnu
30 000 gènes30 000 gènes
100 000 protéines100 000 protéines
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Méthodes d’étude
• Immuno-histochimie
• Immuno-fluorescence
• Hybridation In Situ
Les techniques de ciblage moléculaire
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Méthodes d’étude
Immuno-histochimie, Immunofluorescence, FACS, Hybridation In Situ, Southern-blot, western blot,
northern-blot
… même combat !
Cible
Sonde
Secondaire
Enzyme, fluorochrome…
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Méthodes d’étude
• Immuno-histochimie
CD31
Les techniques de ciblage moléculaire
PCNAFort immuno-marquage nucléaire PCNA des cellules épithéliales normales du colon.Marquage modéré dans les cellules musculaires.
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Méthodes d’étude
• Immuno-fluorescence
Immunohistochemistry markers to distinguish between vascular smooth muscle and endothelial cells. A cryosection of mouse heart ventricle was simultaneously stained with FITC-conjugated smooth muscle α-actin antibody (A) and an antibody against the apical endothelial membrane protein, ICAM-2 (B). The secondary antibodies to detect ICAM-2 was Cy-5 conjugated donkey anti-rat (pseudo-colored red for clarity). Panel C is an overlay of the preceding two panels. ICAM-2 (Cy5)
Actine α-SM (FITC)
Les techniques de ciblage moléculaire
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Méthodes d’étude
• Hybridation in situ (HIS)
Les techniques de ciblage moléculaire
Section de cerveau de souris :Les points noirs indiquent l’expression d’un gène dans des régions spécifiques
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FACS
Cytométrie en flux
(FACS : Fluorescence
Activated Cell Sorter)
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FACS
2N-2C 2N-4C
2N-2C
2N-4C
2N-4►2C
2N-2►4C
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FACS
DNA Analysis
0 200 400 600 800 1000
Intensité de Fluorescence1Q 2Q
Nom
bre
de c
ellu
les
7515
022
530
0
Pic d’aneuploïdie(DNA index 1.21)
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ELISA(Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay)
Dosage d’un anticorps
Dosage d’un antigène
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ELISA
ELISA anticorps anti-HIV GP120
http://www.snv.jussieu.fr/bmedia/lafont/dosages/D3.html
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Southern blot Séparation des fragments génomiques dans un gel
Fragmentation ménagée du génome
Transfert des fragments séparés sur une membrane
Incubation de la membrane avec une sonde
Révélation du marquage (visualisation de la cible)
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Western blot
Coloration des protéines au bleu de
Coomassie
Séparation & transfert des protéines + détection protéine d’intérêt= WB
Electrophorèse en gel d’acrylamideou PAGE-SDS (PolyAcrylamide Gel Electrophoresis – Sodium Dodecyl Sulfate)
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Western blotPréparation et séparation des protéines
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Western blot
Electro-transfert sur nylon ou nitrocellulose
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Western blot
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Culture cellulaire
• Culture cellulaire 1907 : doctrine neuronale
• Explants tissulaires
• Cellules isolées
– Dissociation mécanique, enzymatique, EDTA
• Sélection
EDTA : Acide éthylène diamine tétracétique
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Culture cellulaire• Sélection
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Culture cellulaire
Culture primaire : Population polymorphe
de cellules
Cellule unique(clonage)
• Culture primaire
• Culture secondaire
Culture secondaire
Culture secondaire
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Culture cellulaireObservation
• Microscopie à contraste de phase
• Vidéo-microscopie
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Culture cellulaireObservation
• Immunofluorescence
Mitochondries : jauneFilaments d’actine : vertADN : rouge
Mitochondries : rougeFilaments d’actine : vertADN : bleu
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Culture cellulaire
Conditions de culture
• 37°C, pH, sels, CO2
• Milieu de culture
• Milieu de base
• +/- Sérum
• Facteurs de croissance
• Support
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Culture cellulaire
Immortalisation
– Les cellules normales ont un nombre de divisions limité
Cro
issa
nce
cellu
laire
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Culture cellulaire
Immortalisation
– Introduction d’un oncogène (SV 40, Myc) qui immortalise la cellule sans la rendre tumorale
– Cellules tumorales
– exple : He(nrietta) La(cks)
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Culture cellulaireCellule normale
Cellule immortalisée
Cellule transformée
Divisions
Ancrage, Fact. Croiss.,Inhib. Contact.
Cellules normales cellules cancéreuses
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Culture cellulaireUlex Europeaus Agglutinin-1 (UEA-1)
Collagène IV
Facteur de Von Willebrand (vWF)
Culture de cellules demoelle osseuse humaine
N
N
NN
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Culture cellulairevWFActine SM
ABC
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C E
Ultrasonicdissociation
Aspirating canula
"human auto-culture medium"
Dissociatedtissues
Techniques d’étude des fonctions cellulaires
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Méthodes d’étude in vivo
– Greffes de cellulescellules souches
cellules tumorales
– Transfert de gènes
– Souris transgéniquessouris mucoviscidose
souris prédisposées au cancer
– Souris Knock-out
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0 3 6 9 12 15
TémoinAnti-angiogénique
Temps (jours)
Volu
me
tum
oral
Méthodes d’étude in vivo
Témoin
Modèles de tumorigenèse
Anti-angiogénique
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Méthodes d’étude in vivo
Transfert de gènes : Modifications expérimentales du patrimoine génétique
– Transfert de gènes in vitro ou in vivo
– Vecteurs viraux ou non viraux
Une expérience heureuse ou malheureuse à l’hôpital Necker ?
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Méthodes d’étude in vivo
Transfert de gène
Promoteur
Profil d’expression spatial et temporel
cDNA Intron
Gène d’intérêt
AAAA
AAAA
Transgène
<1kb to >200kb
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Méthodes d’étude in vivo
Transfert de gène
Promoteur
cDNAGain de fonction
- Gène sauvage- mutant
1- Constitutif2- Spécifique d’un tissu (Cerveau, foie, muscle …)3- Inductible (tétracycline, interféron...)
Perte de fonction
- dominant négatif- antisens
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Méthodes d’étude in vivoGène rapporteur :
Gène XPromoteur du gène X
Gène rapporteur
- β galactosidase- Luciférase- GFP- autres….
Promoteur du gène X
GFP : Green Fluorescent Protein
Aequorea victoria
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Méthodes d’étude in vivoGreen Fluorescent Protein (GFP)
Témoin
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Méthodes d’étude in vivo
![Page 43: UE2 : Biologie cellulaire Chapitre 2 : Méthodes d’études ...campus.cerimes.fr/media/disquemiroir/2015-06-09/UNF3Smiroir/paces... · Les techniques de ciblage moléculaire. ...](https://reader037.fdocument.pub/reader037/viewer/2022102822/5b9db45609d3f29a298d181c/html5/thumbnails/43.jpg)
Cellules demoelle osseuse
GFP
Souris irradiée léthalement
Coupes de cervelet
4 semaines 15 semaines
?Cellules sanguines
Méthodes d’étude in vivo
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A
C D
BHémisphère témoin Hémisphère lésé
1 j Après lésion
14 j Après lésion
Méthodes d’étude in vivo
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Méthodes d’étude in vivo
• FVB/N-TgN(MMTVneu)202Mul
• Promoter: MMTV, mouse mammary tumor virus
• Gene : Erbb-2 (HER-2; HER2; Neu; Neu oncogene; c-erbB2; c-
neu; neu protooncogene)
• Souris homozygotes viables et fertiles
• Pas de phénotype chez les mâles
• Expression du transgène détectable dans l’épithélium
mammaire normal, les glandes salivaires et le poumon.
• Tumeurs focales apparaissent autour de 4 mois
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Alain Fischer, Hôpital Necker, Paris - 1999
• Déficit Immunitaire Combiné Sévère lié à l’X (DICS-X)
• Moelle osseuse : cellules précurseurs• γc : sous-unité des R des IL-2, 4, 7, 9, 15• γc absente ou inopérante
Exemple de thérapie génique
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Alain Fischer, Hôpital Necker, Paris - 1999Déficit Immunitaire Combiné Sévère lié à l’X (DICS-X)
• 10 patients de 1-9 mois • Aspiration médullaire • Selection des progéniteurs CD34+• Exposition à des vecteurs rétroviraux contenant le
cDNA de la chaîne c• Greffe des cellules
Exemple de thérapie génique
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Alain Fischer, Hôpital Necker, Paris - 1999Exemple de thérapie génique
Suivi précoce :
• T, NK → Reconstitution normale du pool
• Réponses vaccinales normales
• 3 mois : Retour à la maison
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Science 17th October 2003
• Octobre 2002 : 2 patients développent une leucémie
• Vecteur rétroviral intégré dans ou à proximité de LMO2
• Surexpression de LMO2
Alain Fischer, Hôpital Necker, Paris - 1999
Exemple de thérapie génique
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NON !!!
Insertion dans
la chromatine “ouverte”
transcriptionnellement active
“Intégration aléatoire”Des rétrovirus
Alain Fischer, Hôpital Necker, Paris - 1999Exemple de thérapie génique
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