•

•

•

.

•

•

•

En proceso de revisión la versión 2017. Actualización de acuerdo con : NOM-017-SSA2-2012 Para la vigilancia epidemiológica NOM-011-SSA2-2011 Para la prevención y control del la rabia. Guía para la atención médica y antirrábica de la persona expuesta al virus de la rabia (CENAPRECE 2011)

•

•

•

•

Algoritmo diagnóstico

LRAB-F-15, BITACORA DE RESULTADOS

(MENSUAL) Y LRAB-F-01

OFICIO DE SOLICITUD ,

BITACORA DE RESULTADOS Y

LRAB-F-01

¿La muestra cumple con los criterios de aceptación?

LINEAMIENTOS PARA LA RED NACIONAL DE LABORATORIOS DE SALUD PÚBLICA PARA LA

VIGILANCIA DE LA RABIA EN MÉXICO

Rechazar Muestra

GABI-P-05

BITACORA DE GENERACION DE

RPBI

Desechar Muestra

INICIO

Recibir Muestras por parte de REMU/REMU

DE LRAB

Registra muestra en área analítica e INFOLAB

ETAPA ANALITICA

• Muestras inadecuadas (diferentes a las establecidas) • Muestras derramadas • Muestra insuficiente • Muestras en estado de descomposición • Muestras no identificadas • Muestras sin oficio de petición, formato de envío (indispensable llenar el rubro de vacunación) e historia clínica • Muestras para referencia o aseguramiento de la calidad que no cuenten con resultado escrito y la firma del responsable del diagnóstico en la historia clínica • Muestras en formaldehído, fenol o alcohol • Tiempo de evolución, la muestra enviada al InDRE para diagnóstico de rabia no debe rebasar los 30 días después de la muerte del ser humano o del animal.

Criterios de rechazo :

Catálogo de rechazos:

1. Sin historia clínica (SHC) 2. Mal capturadas (MC)

3. Tubo vacío (TV) 4. No llegó muestra (NLL)

5. Muestra inadecuada (MI) 6. Tubo roto (TR)

7. Muestra insuficiente (MIN) 8. Sin identificación (SI)

9. Muestras derramadas (MD) 10. Tiempo de evolución (TE) 11. Muestras mezcladas (MM)

12. No llegó información requerida (NODOC) 13. Datos erróneos (DE)

14. Datos de muestra ilegibles (DI) 15. Falta de información (FI)

16. Muestra derramada y mezclada (MDM) 17. Muestra enviada por error (MEE)

18. Muestra hemolizada (MH) 19. Muestra para investigación interna (MPI)

¡Nuevo formato!

SISTEMA DE

MUESTRA PRIMARIA

Post-mortem (todos los

mamíferos silvestres y

domésticos)

Encéfalo completo

Asta de Ammón

Cerebelo

Médula espinal

Ante-mortem* (humanos)

Biopsia de Cuero Cabelludo*

Hisopo Sublingual*(contenido en

tubo con tapón de rosca de vidrio

o plástico)

Líquido

Cefalorraquídeo*(contenido en

tubo con tapón de rosca de vidrio

o plástico)

Impronta de Cornea**

Algoritmo diagnóstico de rabia

*En estas muestras primero se realiza el aislamiento del virus (“Método para el Aislamiento del Virus de Rabia en Células de

Neuroblastoma Murino” y “Aislamiento del Virus de la Rabia en Ratón”); posteriormente se realiza la IFD.

**En caso de que las improntas de corneas no lleguen fijadas se sumergirán en acetona a -20° C durante 10 min

HISOPO SUBLINGUAL

El hisopo se coloca dentro de un tubo de

ensaye con 2.0 mL de solución salina

fisiológica Guardar entre 4 y 8°c.

Algoritmo diagnóstico de rabia

NERVIO OPTICO

Algoritmo diagnóstico de rabia

°

Algoritmo diagnóstico de rabia

°

Algoritmo diagnóstico de rabia

Algoritmo diagnóstico de rabia

Hacer una impresión del tejido (de aproximadamente 0.5 cm de

diámetro)

Quitar el exceso de tejido con un pedazo de papel absorbente, presionando la impronta y dejar secar al aire.

Colocar los portaobjetos en una caja para tinción con acetona a -5°C a -20°C durante 30 minutos.

Delimitar las áreas de las improntas

Sacar y colocar los portaobjetos en una rejilla con PBS pH 7y.4, lavar agitando

manualmente

GUIA RAPIDA Inmunofluorescencia Directa para el Diagnóstico de Rabia en Muestras de Encéfalo

Colocar a cada impronta de 20 a 25 µL de conjugado

Sacar los portaobjetos de la acetona y dejar secar al aire

Preparar todo el material y la Cabina de Bioseguridad

Con un palito de madera o abate lenguas tomar una porción del cerebro seleccionando

Colocar los portaobjetos en una cámara húmeda e incubar 30

minutos a 37 °C.

Dejar secar las preparaciones y agregar una gota de glicerina o líquido de

montaje sobre cada impronta y colocar un cubreobjetos.

El control positivo presenta fluorescencia específica en un 90 % de los campos y . El control negativo no presenta fluorescencia específica, se observa el fondo obscuro, y solo se distingue la presencia de los núcleos celulares de color rojo-naranja por la presencia del yoduro de propidio

1. Sostenga al animal por la cabeza, exponiendo el agujero occipital

2. Introduzca la aguja con una inclinación aproximada de 45°

3. Realice la retracción del émbolo de la jeringa suavemente.

4. Verifique que la cantidad de tejido sea suficiente, si no, repita la

operación hasta que cuente con la cantidad necesaria.

5. Realizar la impronta que se empleará en el diagnóstico

6. Realizar el diagnóstico de rutina (Ver Guía Rápida II) y congele el

ejemplar a -20°C en un contenedor

BITACORA DE RESULTADOS BITACORA DE BANCO DE

MUESTRAS

REMU-F-10

LRAB-P-16

LRAB-P-16, REMU-F-05

Entregar Informe de Resultado y

Expediente a REMU

FIN

¿Los datos verificados en el INFOLAB son

correctos? REMU-F-10

Solicitar corrección de datos en REMU

Verificar y aprobar Informe de resultados

¿El Informe de Resultados cumple con los requisitos?

No

Corregir Informe de Resultados

Capturar Informe de resultados y Verificar datos en INFOLAB

ETAPA ANALITICA