POLLOS DE ENGORDE GALLINAS DE POSTURA - … · El presente Manual de Procedimientos contiene los...
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Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
1
MANUAL DE PROCEDIMIENTOS OPERATIVOS
PROGRAMA DE VIGILANCIA Y CONTROL DE LA
CONTAMINACIÓN POR SALMONELLAS SPP. EN GRANJAS AVÍCOLAS
Programa de Sanidad Avícola Dirección de Programación Sanitaria
Dirección Nacional de Sanidad Animal
POLLOS
DE ENGORDE
GALLINAS
DE POSTURA
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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CONTENIDO
PROLOGO .................................................................................................................... 3
OBJETIVOS ................................................................................................................. 3
RESPONSABILIDADES ............................................................................................... 3
ACTIVIDADES EN GRANJAS DE POLLO DE ENGORDE ........................................... 4
1. FRECUENCIA DE TOMA DE MUESTRA .................................................................. 4
2. INDICACIONES ........................................................................................................ 4
3. MÉTODO DE MUESTREO ........................................................................................ 4
3.1 CANTIDAD DE MUESTRA .............................................................................. 4
3.2 MATERIALES A UTILIZAR .............................................................................. 4
3.3 PROCEDIMIENTO DE MUESTREO ............................................................... 5
ACTIVIDADES EN GRANJAS DE GALLINAS DE POSTURA ...................................... 6
1. FRECUENCIA DE TOMA DE MUESTRA .................................................................. 6
2. INDICACIONES ........................................................................................................ 6
3. MÉTODO DE MUESTREO ........................................................................................ 6
3.1 CANTIDAD DE MUESTRA .............................................................................. 6
3.2 MATERIALES A UTILIZAR .............................................................................. 6
3.3 PROCEDIMIENTO DE MUESTREO ............................................................... 7
ACTIVIDADES ANALÍTICAS A REALIZAR POR LOS LABORATORIOS ..................... 8
MEDIDAS A ADOPTAR ANTE UNA GRANJA POSITIVA............................................. 9
LISTADO DE LABORATORIOS ADHERIDOS ………………………………………..….10
PROTOCOLO DE REMISIÓN DE MUESTRAS…………………………………………..12
PLANILLA DE INFORME DE RESULTADOS…………………………………………….13
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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PRÓLOGO
El presente Manual de Procedimientos contiene los principios básicos técnicos
y operativos del Programa de vigilancia y control de la contaminación por Salmonellas
spp. en granjas avícolas de pollos de engorde y gallinas de postura establecido por la
Resolución SENASA N° 86/2016, como parte integrante del Plan Nacional de Sanidad
Avícola (PNSA) establecido por Resolución N° 882/02 del Servicio Nacional de
Sanidad y Calidad Agroalimentaria.
Está dirigido principalmente a los veterinarios de las oficinas locales, a los
responsables de los laboratorios adheridos y veterinarios de las empresas avícolas
que desempeñan su actividad.
OBJETIVOS
Controlar y disminuir las Salmonellosis producidas por Salmonella enteritidis,
S. tiphymurium y S. Heidelberg en pollos de engorde y gallinas de postura
comerciales, mitigando la contaminación del producto avícola final, con gérmenes que
se encuentran en el ambiente, que ponen en riesgo la salud humana.
RESPONSABILIDADES
VETERINARIO RESPONSABLE DEL ESTABLECIMIENTO
Cada granja avícola deberá contar con un profesional veterinario como
RESPONSABLE SANITARIO ante el Programa, que será el encargado de la toma de
muestra y envío al laboratorio privado o adherido, y ante hallazgos positivos deberá
contactarse en forma inmediata con el veterinario de la oficina local correspondiente a
su zona.
VETERINARIO DE LA OFICINA LOCAL DEL SENASA
Los profesionales con asiento en las Oficinas Locales del SENASA, recibirán
del veterinario responsable del establecimiento, del propietario de la granja avícola o
del Responsable del Laboratorio, las copias de los protocolos de resultados del Plan
(Anexo Resolución SENASA N° 86/2016).
Dicha información debe ser cargada en el Sistema Integrado de Gestión de
Sanidad Animal (SIGSA), como ANTECEDENTE SANITARIO, los cuales figuran
como:
MUESTREO DE SALMONELLA SPP. EN AVES-PRODUCCION DE CARNE
MUESTREO DE SALMONELLA SPP. EN AVES-PRODUCCION DE HUEVO
Será el encargado de actuar ante la comunicación de los hallazgos positivos de
Salmonella Enteritidis, S. Typhimurium y/o S.Heildelberg.
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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LABORATORIOS / RESPONSABLES TÉCNICOS
Los Laboratorios Privados y los adheridos al PNSA serán los encargados de
procesar las muestras, para luego informar el resultado al responsable sanitario de la
granja y/o a la Oficia Local del Senasa.
Asimismo, debe informar mensualmente al Programa de Aves en forma
electrónica: [email protected].
La DILAB brindará servicios a aquellas empresas que lo requieran para las
pruebas de tipificación de las Salmonella aisladas, y también procesará las muestras
provenientes de auditorías de este Programa.
PROGRAMA DE SANIDAD AVÍCOLA
El Programa es el responsable del control de gestión, seguimiento del
desarrollo del Programa y, particularmente, de la planificación de las inspecciones
destinadas a constatar los resultados obtenidos y evaluación.
ACTIVIDADES EN GRANJAS DE POLLO DE ENGORDE
1. FRECUENCIA DE TOMA DE MUESTRA:
En las granjas de pollos parrilleros se debe realizar la toma de muestra con una
frecuencia de UNA (1) vez por año.
2. INDICACIONES:
Con el objetivo de obtener los resultados antes del ingreso del próximo lote, las
mismas deberán muestrearse TRES (3) semanas antes de la faena.
3. MÉTODO DE MUESTREO:
3.1 CANTIDAD DE MUESTRA:
Cuando la granja disponga de más de CINCO (5) galpones, deben extraerse
muestras de DOS (2) galpones y en las granjas de menos de CINCO (5) galpones, la
muestra debe tomarse de UN (1) galpón.
3.2 MATERIALES A UTILIZAR
Guantes desechables,
Calcetines estériles,
Sachet de 250 mililitros (ml) de solución fisiológica estéril al 0,9% ,
Bolsa contenedora estéril por 1500 ml (bolsa tipo “stomacher”),
Conservadora,
Material para refrigeración.
Otros: tijera, cinta adhesiva ancha (cinta de embalar), protocolos, etc.
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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3.3 PROCEDIMIENTO DE MUESTREO
Del galpón seleccionado al azar, se tomaran DOS (2) pares de calcetines. La
muestra estará constituida por DOS (2) pares de calcetines obtenidos en un mismo
galpón de una misma granja. Los pasos a seguir son:
1º. Colocarse guantes desechables de un solo uso previa manipulación del material.
2º. Colocarse un par de calcetines al bajar del vehículo e ingresar a la granja. Este par
se utiliza como cubre calzado.
3º. 1er. par de calcetines: una vez en la entrada del galpón, y antes de colocárselos,
humedecerlos utilizando aproximadamente 100 ml de solución de cloruro de sodio
estéril, vertiendo la solución diluyente dentro de la bolsa individual que contiene cada
par de calcetines. Una vez humedecidos, colocárselos sobre el cubre calzado. Este
último par de calcetines será el que contendrá la muestra.
4º. Dividir la superficie del galpón en 2
secciones. Caminar dentro de cada
sector para dar como mínimo 100
pasos por cada par de calzas (100
pasos ~ 50 metros lineales).
Asegurarse de que todas las partes del
sector son muestreadas. Cada par
debe abarcar aproximadamente el 50 %
del área del galpón.
…………………
………………
5º. Una vez finalizado el primer sector del galpón, quitarse los calcetines externos.
Retirar cuidadosamente para que no se desprenda el material adherido (se podrá dar
la vuelta a los calcetines para retener el material en su interior) e introducirlas dentro
de la bolsa estéril (identificando correctamente la misma).
6º.Proceder con el segundo par de calcetines repetir los puntos 3º y 4º.
7º. Los dos pares de calzas serán colocados en la misma bolsa (enviadas mezcladas
como una sola muestra), la cual deberá cerrarse con una cinta ancha (preferiblemente
cinta de embalar).
8º. Los calcetines colocados en la bolsa, cerrada y etiquetada convenientemente
deberán conservarse en todo momento a temperatura de refrigeración y enviarse
refrigeradas al laboratorio dentro de las 24 horas de tomada la muestra, utilizando el
protocolo de remisión de muestras adjunto (pág. 12).
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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ACTIVIDADES EN GRANJAS DE GALLINAS DE POSTURA
1. FRECUENCIA DE TOMA DE MUESTRA:
En las granjas de gallinas de postura se debe realizar la toma de muestra
con una frecuencia de DOS (2) veces por año.
2. INDICACIONES:
Se recomienda muestrear aves que se encuentran dentro de las siguientes
etapas:
Aves de 18-27 semanas (comienzo de la postura).
Aves de 70-86 semanas (con un máximo de 9 semanas previas al envío a
faena).
Aves replumadas en postura, preferentemente a partir de la 5ta. semana de
producción.
3. MÉTODO DE MUESTREO:
3.1 CANTIDAD DE MUESTRA
Cuando la granja disponga de más de CINCO (5) galpones, deben
extraerse muestras de DOS (2) galpones y en las granjas de menos de CINCO (5)
galpones, la muestra debe tomarse de UN (1) galpón.
3.2 MATERIALES A UTILIZAR
Guantes desechables,
Frascos de plástico con tapa a rosca de un mínimo de 200 cc,
Conservadora,
Material para refrigeración.
Otros: tijera, cinta adhesiva ancha (cinta de embalar), protocolos, etc.
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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3.3 PROCEDIMIENTO DE MUESTREO
1- En galpones tradicionales será preciso recoger una mezcla de heces
de la fosa. La muestra debe estar constituida por 2 submuestras de aprox. 150
gramos de materia fecal fresca cada una (utilizar dos frascos de aprox. 200 cc). La
materia fecal se deberá recolectar en forma aleatoria de 60 lugares diferentes de
las fosas. Es decir, de cada sitio seleccionado recolectar aproximadamente 2,5 gr.
de materia fecal fresca (1/2 cucharadita) y colocarlos en los 2 contenedores. La
distribución de las submuestras debe ser representativa de todo el galpón.
Tener en cuenta que algunos granjeros podrían llegar a colocar cal viva
sobre la materia fecal, en este caso, seleccionar los galpones que no fueran
sometidos a ese tratamiento o bien solicitar no realizar el tratamiento por al menos
15 a 20 días y regresar posteriormente para la toma muestra en otro período.
2- En los galpones automáticos hay cintas que recogen la materia fecal
bajo cada nivel de jaulas. Las mismas se ponen en funcionamiento a intervalos
regulares y descargan en un sistema transportador. En este caso, solicitar al
granjero que ponga en funcionamiento las cintas de evacuación del guano o los
raspadores temprano el día del muestreo, y que no limpie el polvo de las cintas
porta huevos ni de debajo de las jaulas antes de que haya tenido lugar el
muestreo.
Con guantes de plástico nuevos, se debe tomar 2 muestras constituidas por 150 g de materia fecal fresca de 60 lugares diferentes de las cintas transportadoras, de manera que todos los bloques estén representados en la
muestra.
Se debe complementar con una muestra de 150 g de polvo seco tomadas de al menos 20 lugares de las diferentes instalaciones del galpón. Determine
con el encargado o propietario de la granja los mejores lugares del galpón para
recoger el polvo. Normalmente son las rejillas de los ventiladores de extracción,
los salientes adyacentes, vigas, divisorias o tuberías ó cintas transportadoras de
huevos. Si es posible es preferible tomar polvo de las partes bajas. Solamente
recolecte polvo seco.
b- Los frascos deben ser colocados en una bolsa, cerrada y etiquetada,
luego colocarse en una conservadora, estando en todo momento a temperatura de
refrigeración y deberá remitirse al laboratorio dentro de las 24 horas de tomada la
muestra, utilizando el protocolo de remisión de muestras adjunto (pág. 12).
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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ACTIVIDADES ANALÍTICAS A REALIZAR POR LOS LABORATORIOS
Las muestras deben ser remitidas a los laboratorios que trabajan en
adhesión con el Plan Nacional de Sanidad Avícola, a la Dirección del Laboratorio
Animal de la Dirección General de Laboratorios y Control Técnico del SERVICIO
NACIONAL DE SANIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA(DILAB) o a los
laboratorios de la Red Oficial habilitados para analizar muestras de aves.
Los laboratorios de diagnóstico, ya sean privados o pertenecientes a
instituciones públicas, deben:
a) Utilizar el método descripto en el Anexo D de la Norma ISO 6579 (2002), para
“Detección de Salmonella spp. en heces de animales y en muestras a nivel de
producción primaria”. Como medio selectivo se utiliza el medio semisólido
Rappaport-Vassiladis modificado (MSRV)
b) Serotipificación: se debe proceder al serotipado de una cepa de cada muestra
positiva como mínimo, siguiendo el esquema de Kaufmann-White. Como métodos
alternativos se pueden utilizar las pruebas moleculares para identificación de
genotipos.
c) En el caso de utilizar pruebas moleculares, los aislamientos obtenidos serán
confirmados mediante biotipificación para la identificación de Salmonella spp., la
confirmación de la serovariedad se realizará mediante serotipificación para ST y
SG y para SE por PCR. La diferenciación de SG y SE será realizada por pruebas
culturales y bioquímicas. Se realizará PCR para detectar Salmonella spp. Los
aislamientos obtenidos serán conservados en ceparios existentes en los
laboratorios participantes. Estos aislamientos luego de identificados serán
caracterizados a nivel molecular mediante la técnica de Pulse Field Gel
Electroforesis (PFGE) y sus perfiles moleculares serán ingresados en la base de
Datos de la Red PulseNet y comparados con los perfiles genéticos de los
aislamientos ya incluidos en la misma.
d) Cuando los laboratorios que participen del Programa no estén en condiciones
de realizar la tipificación serológica o por técnicas moleculares, deben remitir las
cepas aisladas de Salmonella spp. a la Dirección del Laboratorio Animal
(Talcahuano 1660- Martínez-Buenos Aires) para su serotipificación.
e) Una vez concluidas las pruebas diagnósticas, los resultados serán remitidos por
el Veterinario del establecimiento, propietario o Responsable del laboratorio a la
Oficina Local, utilizando el Protocolo de Remisión de resultados (pág. 13), que
forma parte como anexo de la Resolución Senasa 86/2016.
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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MEDIDAS A ADOPTAR ANTE UNA GRANJA POSITIVA
Se considera granja positiva cuando en cualquier momento se detecte en la
misma la presencia de Salmonella Enteritidis, S. Typhimurium y/o S. Heildelberg
(distintas de las cepas vacunales).
En el caso de detectarse contaminación ambiental por Salmonella
Enteritidis, S. Typhimurium y/o S. Heidelberg, ya sea el veterinario responsable del
establecimiento, el responsable del laboratorio o profesionales del programa de
Sanidad Aviar (en caso de realizar la tipificación la DILAB), comunicarán
inmediatamente al Veterinario Oficial de Oficina Local con jurisdicción en el
establecimiento en cuestión.
En las granjas de Pollo de engorde el veterinario de Senasa debe:
1- Dar de baja la autogestión del establecimiento y bloquear el ingreso del
próximo lote.
2- Inspeccionar la granja, a fin de identificar las medidas que considere
insuficientes y/o deficientes e instruirá sobre las medidas de bioseguridad,
control de plagas y buenas prácticas que deban adoptarse.
3- Corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas y dar de alta la
autogestión e ingreso de los pollitos BB.
En las granjas de granjas de gallinas de huevos para consumo el
veterinario de Senasa debe:
1- Inspeccionar la granja, a fin de identificar las medidas que considere
insuficientes y/o deficientes e instruirá sobre las medidas de bioseguridad,
control de plagas y buenas prácticas que deban adoptarse.
2- Corroborar el cumplimiento de las medidas dispuestas.
3- Programa de vigilancia y control y las medidas de bioseguridad pueden ser
respaldadas con el uso de vacunas vivas y/o inactivadas contra S.
Gallinarum y/o S. Enteritidis u otra serovariedad oportunamente aprobadas
por el SENASA, a fin de alcanzar una reducción efectiva en la diseminación
de Salmonellas y/o inhibición de su crecimiento en huevos.
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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1) UNIVERSIDAD NACIONAL DE LA PLATA Facultad de Ciencias Veterinarias
Cátedra de Patología de Aves y Pilíferos
Dr. Miguel Piscopo. Calle 60 y 118 - La Plata-
Tel.: 0221-4236663 int. 412 / 0221-
4834237
E-mail: [email protected]
2) Laboratorio GRANJA TRES ARROYOS Dr. Carlos Mario Plano Fernando Rojo S/Nº Capilla del Señor
Bs. As.
Tel.: 02323-491060 / 70 / 80 / 90
E-mail: [email protected] -
3) Laboratorio de la empresa PROTEINSA S.A Av. Jorge Newbery Esq. Fair
Monte Grande – Buenos Aires
Tel.: 011-4239 9270
E-mail:
4) Laboratorio de Análisis Dr. Luis Micheluzzi Thames 530. CP1607. Villa Adelina.
Buenos Aires.
Tel.: 011-4765 4568 / 4735 6175
E-mail: [email protected] -
5) MV Dra. Rosana Mattiello, UBA Especialista en fauna, aves silvestres y
ornamentales.
Las Heras 1546- San Fernando Bs.As-
TE 011 4744-1998
E-mail: [email protected]
6) Laboratorio PLATALAB Dr. José Luis Garbi Calle 195 y 85. Lisandro Olmos. La Plata
Tel-Fax.: 0221-4963909
E-mail: [email protected]
Dra. María Luisa Sandro Morales:
7) Laboratorio Avícola SERVET y A MV. Silvia Viora Lic. Laura Pascual Almirante Brown 249. Gral. Rodríguez,
Buenos Aires Tel.: 0237-4850219
E mail: [email protected] 8) INTA CONCEPCIÓN DEL URUGUAY (perteneció a la red oficial) Laboratorio de Patología Aviar
Dr. Dante Bueno Dr. Federico Vera Tel-Fax: 03442 – 425561 / 5578
E-mail: [email protected]
9) Laboratorio de Diagnóstico Dr. RUBEN FERNADEZ LAGO Dr. Rubén Fernández Lago Artusi 855 CP (3260) Concepción del
Uruguay. Entre Ríos.
Tel.: 03442 – 424816
E-mail: [email protected]
10) Laboratorio de Análisis LAS CAMELIAS Lic. Graciela Marsó Ruta 26, km. 5. San José. Entre Ríos.
Tel.: 03447-475100 Fax: 03447-475101
E-mail: [email protected] -
11) Laboratorio ESPERANZA DISTRIBUCIONES Dr. Enrique Trabattoni Brig. Lopez 25. Esperanza. Santa Fe
Tel.: 03496-422100/03496-15651192
E-mail: [email protected] [email protected]
12) Universidad Nacional de Luján Ruta nacional 5 y 7 CP 6700 Luján.
Bs. As
Dra. Hebe Barrios,
Ing.Agr. Florencia Prosdócimo
E-mail: [email protected]
LISTADO DE LABORATORIOS ADHERIDOS Al PROGRAMA DE SANIDAD AVIAR- SENASA
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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13) Laboratorio Maffrand (Red Oficial Nº L0148)
Pasaje Roosevelt 1055 CP 5800
Río Cuarto - Córdoba
Dr. Francisco Cassasnovas
Te: 0358-4630316/4626021
Celular: +543584308081
14) Laboratorio de Facultad de Ciencias Veterinarias de Casilda Dr. Eduardo Camba
Ruta 33 y Av. Lagos
Tel: 03464-4222050
E-mail: [email protected]
Nota: Solo para diagnóstico
bacteriológico de Salmonella spp aviar.
15) Laboratorio de análisis grupo Motta Dr. Raúl Buthay
Tel: 0343-4876044/ 0343- 154601985
Diamante - Entre Ríos
16) INTA Castelar Instituto de Pato biología
Dr. Pablo Chacana
Cel. 15-3064-6878
E Mail: [email protected]
17) INTA Balcarce Laboratorio de Bacteriología
Lic. Alejandra Velilla
Ruta 226 km. 73,5
Balcarce (CP 7620)
E Mail: [email protected]
Tel.: 02266-439121
18) Laboratorio Soychu Gualeguay Dra. Eliza Pozzobon Eva Perón 1273
Gualeguay, Entre Ríos
Tel. 03444 530 359
E Mail: [email protected],
Plan Nacional de Sanidad Avícola (Res. Senasa N° 86/2016) 2016
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*Protocolo de referencia con los datos mínimos requeridos por el Senasa.
ESTABLECIMIENTO DE ORIGEN
PROPIETARIO/TITULAR DE LAS AVES …………………..…………….……...…………………………………………………….………………………………………………….…….
NOMBRE DEL ESTABLECIMIENTO: …....…………………..………..………………………………………….………………………………………………….…………………………
TIPO DE PRODUCCIÓN
MUESTRAS REMITIDAS
CANTIDAD
Calzas/Calcetines …………………………………….
Materia fecal …………………………………….
Polvo seco …………………………………….
OBSERVACIONES
……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….
……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….
……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….
……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….
……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….
……………………………..……………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….
RENSPA ___ ___ - ___ ___ ___ -___-___ ___ ___ ___ ___/___ ___
PROTOCOLO DE REMISIÓN DE MUESTRAS DE AVES
Edad de las aves :……………………… días/semanas
POLLO PARRILLERO GALLINA DE POSTURA
"PROGRAMA DE VIGILANCIA Y CONTROL DE LA CONTAMINACIÓN POR SALMONELLA SPP.
EN GRANJAS AVÍCOLAS DE POLLOS DE ENGORDE Y GALLINAS DE POSTURA COMERCIAL"
Resolución SENASA N° 86/2016
IDENTIFICACIÓN
…………………………………….
…………………………………….
…………………………………….
TIPO
FECHA DE TOMA DE LA MUESTRA: …...……./…..….…./…….…...
Firma y aclaración
Veterinario Responsable del Establecimiento
……………………………………...……………………………………………………………
FECHA DE RECEPCIÓN DE LA MUESTRA: …...……./…..….…./…….……
PROVINCIA:……………………………………….……………………. PARTIDO/DEPARTAMENTO:…………………………………………………………………………………...
Protocolo Interno N°..………..…………..………
……………………………………...……………………………………………………………
Firma y aclaración
Responsable del Laboratorio
FOR
MU
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SPR
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RA
MA
DE
VIG
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