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    MANUAL PARA LA CRIA DE

    CAMARONES PENEIDOSINDICE

    PROGRAMA COOPERATIVO GUBERNAMENTAL

    FAO - ITALIA

    por

    JORGE L. FENUCCI

    DOCUMENTO PREPARADO POR EL PROYECTO GCP/RLA/075/ITAAPOYO A LAS ACTIVIDADES REGIONALES DE ACUICULTURA

    PARA AMERICA LATINA Y EL CARIBE

    Las denominaciones empleadas en esta publicacin y la forma en que aparecenpresentados los datos que contiene no implican, de parte de la Organizacin de lasNaciones Unidas para la Agricultura y la Alimentacin, juicio alguno sobre la condicin

    jurdica de pases, territorios, ciudades o zonas, o de sus autoridades, ni respecto dela delimitacin de sus fronteras o lmites.

    Este libro es propiedad de la Organizacin de las Naciones Unidas para la Agriculturay la Alimentacin, y no podr ser reproducido, ni en su totalidad ni en parte, porcualquier mtodo o procedimiento, sin una autorizacin por escrito del titular de losderechos del autor. Las peticiones para tal autorizacin especificando la extensin delo que se desea reproducir y el propsito que con ello se persigue, debern enviarseal Proyecto GCP/RLA/075/ITA, c/o FAOR, C.P. 07-1058, Braslia 70330, D.F., Brasil.

    http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S00.htm#TOChttp://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S00.htm#TOChttp://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S00.htm#TOC
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    ORGANIZACION DE LAS NACIONES UNIDAS PARA LA AGRICULTURA Y LAALIMENTACION

    Braslia, BrasilAgosto 1988

    Los hiperenlances que remiten a sitios Internet distintos de los de la FAO no implican,de parte de la Organizacin, ratificacin oficial o responsabilidad respecto a opiniones,

    ideas, datos o productos presentados en dichos sitios, o una garanta de validezacerca de las informaciones que contienen. El nico propsito de los enlaces a sitios

    distintos de los de la FAO es proporcionar otras informaciones disponibles sobreasuntos conexos.

    La presente versin electrnica de este documento ha sido preparada utilizandoprogramas de reconocimiento ptico de texto (OCR). La FAO declina cualquier

    responsabilidad por las eventuales diferencias que puedan existir entre esta versin y

    la versin original impresa.

    INDICE

    INTRODUCCION

    1. MORFOLOGIA EXTERNA DE CAMARONES PENEIDOS

    2. BIOLOGIA DE CAMARONES PENEIDOS

    2.1. CICLO VITAL

    2.2. REQUERIMIENTOS AMBIENTALES EN DISTINTAS ETAPAS DEL CICLO

    VITAL

    2.2.1. Temperatura y salinidad

    2.2.2. Sustrato

    2.2.3. Oxgeno

    2.3. MUDA

    2.4. MADURACION

    2.4.1. Maduracin en hembras

    2.4.2. Maduracin en machos

    http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S00.htm#introhttp://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S00.htm#introhttp://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S01.htm#ch1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S01.htm#ch1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S01.htm#ch1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S00.htm#intro
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    2.4.3. Factores que regulan la maduracin

    2.4.3.1. Factores ambientales

    2.4.3.2. Control hormonal de la maduracin

    2.4.4. Alimentacin para producir maduracin

    2.5. MADURACION EN CAUTIVIDAD

    3. CULTIVO DE CAMARONES

    3.1. METODOS DE CULTIVO

    3.1.1. Engorde de postlarvas y/o juveniles obtenidos en la naturaleza

    3.1.2. Cra de postlarvas a partir de huevos y su posterior engorde

    3.1.3. Ciclo completo en cautividad

    3.2. CONDICIONES QUE DEBE REUNIR EL AREA DONDE SE ESTABLEZCA UNAGRANJA

    3.3. CALIDAD DEL SUELO:

    3.3.1. Permeabilidad

    3.3.1.1. Mtodos de impermeabilizacin

    3.3.2. pH del suelo

    3.3.2.1. Mejoramiento de suelos cidos

    3.4. LOS ESTANQUES

    3.4.1. Llenado de los estanques

    4. OPERACIONES EN UNA GRANJA CAMARONERA

    4.1. PREPARACION Y LLENADO DE ESTANQUES

    4.2. OBTENCION DE LA SEMILLA

    4.2.1. Obtencin de semillas en ambientes naturales

    4.3. TRANSPORTE DE LA SEMILLA

    http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.5http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.5http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.1.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.1.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.4.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.4.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.4.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.2.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.1.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S03.htm#ch3http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.5http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3.2http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3.1http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S02.htm#ch2.4.3
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    4.4. ESTABULAMIENTO DE LOS ESTANQUES

    RESUMEN

    En este manual se describen los aspectos ms importantes de la biologa de

    camarones peneidos, principalmente de especies americanas, resendose lasprincipales tcnicas de maduracin y las actividades que se llevan a cabo en unagranja de engorde.

    Tambin se presenta detalladamente la metodologa del sistema americano de cra delarvas y sus modificaciones, completndose el manual con la descripcin de tcnicasde cultivo de algas unicelulares y una clave para la identificacin de los estadios ysubestadios larvales de camarones peneidos.

    SUMMARY

    In this paper are described the most important aspects of penaeid shrimp biologyspecially in relation to american species. The techniques of maturation, breeding andgrow out in a farm are discussed.

    A detailed methodology of the american system of hatchery and its modifications arepresented. This manual includes also the description of microalgal culture techniquesand a key for the identification of penaeid larval stages and substages.

    INTRODUCCION

    Este manual pretende ser una gua prctica para iniciar a tcnicos e inversores en la

    cra de camarones peneidos a nivel industrial y resume la experiencia del autor y otrosinvestigadores en el tema.

    En este trabajo se presenta una sntesis de las actividades necesarias para estableceruna empresa camaronera en Amrica del Sur y central; es por ello que en los casosen que se ha podido, se hace especial referencia a especies americanas dejando delado por ejemplo a Penaeus japonicus, especie por dems estudiada y sobre la cualexiste gran cantidad de informacin en cuanto a su biologa y tcnica de cra.

    Luego de un breve captulo sobre morfologa de camarones marinos donde sepuntualizan las diferencias externas entre machos y hembras, se tratan en el captulo

    siguiente, las caractersticas biolgicas de las especies ms importantes en cultivocon nfasis sobre los requerimientos para su maduracin en cautividad.

    En el tercer captulo se consideran, en forma general, las diferentes tcnicas decultivo y en el cuarto se detallan pormenorizadamente las actividades a realizar enuna granja de engorde. Finalmente el quinto captulo est dedicado a la cra de larvasutilizando el mtodo americano y sus modificaciones.

    http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.4http://www.fao.org/docrep/field/003/ab466s/AB466S04.htm#ch4.4
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    Como complemento se presentan apndices referidos a : Instrumentos necesariospara determinar los parmetros fsico-qumicos del agua de mar, fertilizacin deestanques, identificacin de estadios larvales de camarones peneidos y cultivo dealgas unicelulares.

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    1. MORFOLOGIA EXTERNA DE CAMARONES PENEIDOS

    Para la descripcin de la morfologa generalizada de camarones peneidos se hantomado como referencia los trabajos de los siguientes autores: Angelescu y Boschi(1959), Boschi y Angelescu (1962), Boschi (1963), Prez Farfante (1969, 1975),

    Wickins (1976).

    Como se puede observar en la Figura la, un camarn peneido tiene el cuerpoalargado, comprimido lateralmente; el que puede dividirse en cefalotrax(cefalopereion), pleon (abdomen) y telson.

    En el cefalopereion se observan un par de pednculos oculares, un rostro de longitudvariable con espinas que permiten diferenciar distintas especies; adems, en laspartes laterales del caparazn, se encuentran surcos y carenas. Cefalotrax yabdomen llevan distintos tipos de apndices articulados, formados por dos ramas:exopodito y endopodito:

    De acuerdo con su funcin los apndices pueden ser divididos en:

    Funcin Apndices

    Sensorial 1 par de antnulas

    1 par de antenas

    1 par de mandbulas

    Nutricional 2 pares de maxilas

    3 pares de maxilpedos

    Locomotriz 5 pares de pereipodos

    Natatoria 5 pares de plepodos

    1 par de urpodos

    Los machos y las hembras pueden diferenciarse por una serie de estructurassexuales secundarias externas.

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    a) Caracteres de las hembras

    Thelycum (Tlico): Es una modificacin de la parte ventral del cefalotrax a la alturadel'3, 4 y 5 par de pereipodos, encontrndose las coxas de estos dos ltimospares de apndices mucho ms separadas que el resto; en esta estructura es dondeel macho deposita su espermatforo.

    Se pueden distinguir hembras con dos tipos de thelycum: abierto y cerrado. En lashembras con el ltimo tipo, se pueden observar en la parte ventral del cefalotraxreceptculos seminales, cubiertos con mayor o menor grado por placas laterales(Figura 1.B). En las especies de tlico abierto, el cefalotrax tiene una serie dedepresiones, sedas, espinas, etc. que permiten la adhesin del espermatforo,carecen de receptculos seminales (Figura 1.c).

    Entre las especies con hembras de tlico abierto se pueden citar: Penaeusoccidentalis, P. vannamei, P. stylirostris, P. schmitti, P. setiferus,Metapenaeusensis, Pleoticus muelleri, mientras que algunas de las especies con tlico cerrado en

    distinto grado son: P. californiensis, P. aztecus, P. duorarum, P. brasiliensis, P.paulensis, P. merguiensis, P. monodon, P. semisulcatus, P. kerathurus, P. indicus, P.orientalis,Artemesia longinaris.

    b) Caracteres de los machos

    Estos presentan una serie de modificaciones; as, las coxas del quinto par depereipodos son de mayor tamao que el resto, debido a que en ellas se forman losespermatforos, uno en cada coxa, que son una masa de espermatozoides envueltospor una cubierta dura.

    Petasma: Relacionado con la transferencia de espermatforos. Es una modificacinde los endopoditos del primer par de plepodos, ambos se unen por un borde internomembranoso que tiene una serie de estructuras quitinosas, dando la impresin de uncierre relmpago (Figura 1.D). En animales pequeos si bien existe esta estructura losendopoditos pueden no estar unidos.

    Appendix masculina: Es un anexo del segundo par de plepodos insertada a la alturadel basidopodito, formado por dos ramas: una mayor espatulada y otra pequea,delgada y con sedas en el borde interno (Figura 1.E).

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    Figura 1. A: Morfologa general de un camarn peneido; B: tlico cerrado (Penaeusbrasiliensis); C: tlico abierto (P. schmitti); D: petasma (P. schmitti); E:appendix masculina (P. schmitti). (Modificado de Boschi, 1963).

    A1: antnula; A2: antena; Ab: abdomen; Cf: cefalotrax; Ma: maxilipedio; Pe:pereipodos; Pl: plepodos; T: telson; Ur: urpodos.

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    2. BIOLOGIA DE CAMARONES PENEIDOS

    2.1 CICLO VITAL

    El ciclo vital de un peneido tpico como las especies que se hallan en Ecuador

    (Penaeus stylirostris, P. vannamei, P. occidentalis); Brasil (P. schmitti, P. subtilis, P.brasiliensis, P. notialis); costa atlntica de Estados Unidos y Mxico (Penaeussetiferus, P. duorarum, P. aztecus); costa pacfica de Mxico (P. stylirostris, P.vamamei, P. californiensis); y Asia (P. monodon, P. indicus, etc) se muestra en laFigura 3. La maduracin y reproduccin de estas especies se realiza en aguasprofundas, entre 15 y 60m; las hembras fecundadas ponen huevos en cantidadesvariables de acuerdo con la especie (entre 10.000 y 1.000.000). Al cabo de un tiempo,stos eclosionan en una serie de estadios denominados larvas, cada uno de loscuales tiene caractersticas morfolgicas determinadas y diferentes requerimientosnutricionales. El siguiente cuadro muestra los distintos estadios larvales, forma dealimentacin y comportamiento.

    ESTADIO ALIMENTACION PRINCIPAL COMPORTAMIENTO

    Huevo - Flota, tendencia a depositarse en el fondo

    Nauplius Sus propias reservas Locomocin por antenas, planctnicas

    Protozoea Filoplancton Planctnicas, natacin por apndices ceflicos

    Mysis Zooplancton Planctnicas, natacin por apndices del trax

    Postlarvas Zooplancton y posteriormentealimentacin omnvora

    Los primeros estadios son planctnicos, luego dehbitos bentnicos, natacin por plepodos

    Como se puede observar en la Figura 3, postlarvas y/o juveniles migran hacia lacosta, a aguas menos profundas y de baja salininidad: por ejemplo, zonas de manglar,esteros, lagunas, ricas en materia orgnica, donde crecen hasta alcanzar estadios deadulto o preadulto migrando luego a mar abierto para madurar y reproducirse.

    Existen tambin algunas otras especies como Pleoticus muelleri, que habita las aguastempladas en las costas argentinas que tiene un ciclo algo diferente, no penetrando

    casi nunca en aguas salobres. Las migraciones de esta especie se pueden observaren la Figura 4. De acuerdo con Boschi(1986), el rea de reproduccin de P.muelleri se encuentra aguas afuera de la provincia del Chubut, entre la PennsulaValds y el norte del Golfo de San Jorge. De esta zona las larvas son llevadas por lascorrientes hacia el sur, siendo la principal rea de cra el sur del golfo (bajoMazaredo); los juveniles permanecen en esta zona y cuando alcanzan una talla dealgo ms de 10 cm, migran hacia el norte para su maduracin y reproduccin.

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    Figura 3. Ciclo vital de un camarn peneido tpico: l: maduracin y reproduccin; 2:nauplii; 3: protozoeas; 4: mysis; 5: postlarvas; 6: juveniles; 7: adultos.(Modificado de Boschi, 1977).

    En cuanto a poblaciones de esta especie que se encuentran en la zona sur de laprovincia de Buenos Aires (Baha Blanca), se sabe que los juveniles entran con lasmareas en reas costeras y la reproduccin se realiza aguas afuera (Wyngaard yBertuche, 1982).

    Existe tambin otra especie de camarn peneido Artemesia longinaris, cuyas reas demayor captura se encuentran en Baha Blanca y Mar del Plata, que tampoco entra enaguas salobres, ni en lagunas, pero los juveniles y subadultos permanecen en reascosteras durante casi todo el ao, hasta que en diciembre migran aguas afuera parasu reproduccin.

    2.2 REQUERIMIENTOS AMBIENTALES EN DISTINTAS ETAPAS

    DEL CICLO VITAL

    2.2.1 Temperatura y salinidad

    Los camarones peneidos se pueden dividir en dos grandes grupos:

    a) Camarones de aguas tropicales: Tienen requerimientos de temperaturassuperiores a 20C, con crecimiento ptimo entre 26 y 32C, entre los representantesde este grupo podemos mencionar: Penaeus monodon en

    Asia; P.notialis, P.brasiliensis, P.schmitti, P.aztecus subtilis,P.paulensis, P.

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    setiferus, P. duorarum en la costa atlntica deAmrica; P.stylirostris, P.vannamei, P.occidentalis en las costas del Pacfico.

    Por lo general cada etapa del desarrollo tiene un rango ptimo de temperatura ysalinidad para su normal desarrollo; as, las larvas se desarrollan a temperaturas entre

    2530C y salinidades entre 28 y 35, mientras que las postlarvas tienen unatolerancia ms amplia a los cambios de estas variables, asi por ejemplo postlarvas decamarones del golfo de Mxico pueden tolerar amplias fluctuaciones de salinidad ytemperatura. Segn Zein-Eldin y Griffith (1969) P.aztecus tolera mucho mejorque P.setiferus bajas temperaturas, mientras que esta ltima especie es ms tolerantea altas temperaturas (3035C). Por el contrario los mismos autores indican

    que P.aztecus es ms tolerante queP.setiferus a altas salinidades (hasta 40),

    En cuanto a juveniles y subadultos que viven en estuarios lagunas y manglares sonlos que mejor soportan mayores variaciones en las condiciones ambientales.

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    Figura 4. Migracin del langostinoPleoticus muelleri en las costas argentinas. (Boschi,1986).

    Ewald (1965) en Venezuela, observa desoves de P. schmitti a profundidades de

    aproximadamente 20 m a una salinidad entre 1525, mientras que para la mismaespecie, Prez Farfante (1970) los cita a la misma profundidad pero a salinidades

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    superiores a 3536. Con respecto a P.brasiliensis y P.notialis(Scelzo, 1982 observa

    juveniles a temperaturas entre 2630C y salinidades superiores a 40.

    Una especie que podramos considerar intermedia es P.semisulcatus, de la cual sehan determinado desoves a temperaturas entre 1819.5C, frente a las costas de

    Kuwait (Al Attar e Ikenoue, 1979).

    b) Camarones de aguas templadas: En este grupo las especies sobre las que msse ha trabajado en Amrica son Artemesia longinaris yPleoticus muelleri. La primerade estas habita desde el sur de Brasil hasta aproximadamente los 43de latitud sur,entre 3 y 10 brazas de profundidad. Pleoticus muelleri se distribuye desde Ro deJaneiro, Brasil, hasta Puerto Deseado, Argentina (43LS). Investigaciones realizadashan demostrado que se pueden obtener desoves viables a temperaturas entre 16 y22C para el camarn (Boschi y Scelzo, 1977) y entre 19 y 23C para el langostino(Scelzo y Boschi, 1975). Otros trabajos con Artemesia longinaris han revelado que seobtiene una mayor tasa de crecimiento en juveniles, a temperaturas menores de 20C

    que en rangos entre 24 y 26C (Lpez y Fenucci, 1987); por otra parte el langostinoargentino tiene un buen crecimiento a temperaturas entre 10 y 19C, llegando a tallacomercial en 140 das a partir de juveniles de 2 g (Fenucci et al., 1987), siendo la

    salinidad letal media para esta especie de aproximadamente 16(Fenucci, Casal yBoschi, Com.Personal).

    2.2.2 Sustrato

    En general los peneidos viven en fondos blandos de fango, constitudos por distintasproporciones de arena, limo y arcilla. Especies comoPenaeusduorarum, P.japonicus, P.aztecus, P.setiferus, P.vannamei y Pleoticus muelleri se

    entierran y otras como P.stylirostris, P.monodon,P.merguiensis y Artemesialonginaris quedan por los general quietas en el fondo. Este hbito aparece durante losprimeros estadios postlarvales y permite a los camarones protegerse de predadores,principalmente durante el perodo de muda; este comportamiento parece estarregulado por factores como la luz, temperatura, concentracin de oxgeno, etc.

    A este respecto son interesantes los trabajos realizados en P.duorarum por Fuss yOgren(1966) quienes han determinado que esta especie permanece enterrada atemperaturas inferiores a 10C, mientras que ejemplares mantenidos a 16Cpresentan actividad en un 50%; por otra parte el cese de actividad se produce entre elamanecer y el anochecer. Otra especie que tiene hbitos de enterramiento muymarcados esPleoticus muelleri lo que prcticamente desaparece durante el da,alimentndose durante la noche.

    En cuanto al camarn argentino, de aguas templadas, si bien durante el dapermanece en el fondo rara vez se entierra, habindose determinado que su actividades mayor entre 2426C que entre 1519C (Lpez y Fenucci, 1987).

    En base a lo expuesto, se debe destacar la importancia que tiene la realizacin deestudios de comportamiento de las especies en cultivo ya que por ejemplo, en el caso

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    de una especie que no est activa durante el da, es conveniente alimentarla alatardecer o antes del amanecer para lograr un mayor aprovechamiento de la dieta.

    2.2.3. Oxgeno

    La concentracin de oxgeno disuelto en el agua es de fundamental importancia; seha comprobado que concentraciones de este elemento menores de 2 ppm producenuna alta mortalidad en cultivos. Mas an, una disminucin en la concentracin deoxgeno produce cambios en los hbitos de enterramiento; Egusa (1961) hadeterminado que con cantidades de oxgeno de menos de 1 ppm Penaeus

    japonicus no se entierra, cualquiera sea la intensidad de la luz.

    Enucuanto al consumo de oxgeno, a una temperatura aproximada de 23C, paraejemplares de P. japonicus con tallas medias de 3,1 a 16,1 g vara entre 135 y 77cc/kg/hora, 'siendo mayor el consumo por unidad de peso para los animales de menortamao (Egusa, 1961).

    Eneel camarn Artemesia longinaris se han registrado valores de consumo entre 0,1 y0,02 mg/minuto/g, para animales entre 0,5 y 5 g de peso; al igual que en el casoanterior, el mayor consumo por unidad de peso se observ en los camarones demenor tamao (Fenucci y Atena MS).

    Es un hecho generalizado que a medida que aumenta la temperatura, se incrementael consumo de oxgeno (Figura 5), a la vez que disminuye la solubilidad del mismo enagua. Esto debe ser tenido en cuenta para evitar una marcada deplecin de oxgenoen tanques de cultivo durante das muy calurosos.

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    Figura 5. Consumo de oxgeno por unidad de peso en Artemesia longinaris a distintastemperaturas.

    2.3 MUDA

    Un esquema del exoesqueleto de un camarn tpico puede observarse en la Figura 6.El hecho importante que relaciona la muda con el crecimiento es que cuando elanimal pierde su viejo esqueleto, inmediatamente comienza a absorber aguaaumentando su volumen con lo cual la nueva cutcula se expande; luego el volumenocupado por el agua es reemplazado por tejidos y en esa forma el camarn crece.

    El perodo de muda es crtico, el camarn se encuentra desprotegido, es fcil presade predadores, siendo sta la etapa en la cual se observa una mayor mortalidad.Existen problemas de regulacin inica, debido a la toma de agua y a los cambios enla permeabilidad de las membranas (Lockwood, 1967).

    Drach en 1939, determin los estadios de muda de Crustceos DecpodosBraquiuros, sobre la base de cambios tegumentarios, extendiendo este trabajo atodos los decpodos en 1944, dividiendo el ciclo en 4 estadios:

    Post-muda: Perodo de turgencia debido a la absorcin de agua; los animales nose alimentan.

    Intermuda: Perodo de actividad secretora de la epidermis, crecimiento de lostejidos, el animal se alimenta

    Premuda: Se inicia la reabsorcin del antiguo exoesqueleto y comienza aformarse una nueva cutcula, el a- nimal no se alimenta.

    Exuviacin oecdisis

    : Prdida del viejo esqueleto.

    Este ciclo ha sido estudiado en detalle para distintas especies de peneidos y puedencitarse los trabajos de: Schafer (1968) en P. duorarum; Huner y Colvin (1979)para P.californiensis y P.stylirostris; Petriella(1984) en Artemesia longinaris.

    En general los animales ms pequeos tienen un ciclo de muda ms breve porcortamiento del perodo de intermuda. Por ejemplo paraArtemesia longinaris Petriella,

    (1984) ha observado la existencia de una menor tasa de muda para los animales demayor tamao, es decir un alargamiento del perodo de intermuda con la edad. Estefenmeno ha sido mencionado tambin para otras especies de camarones peneidos yrelacionado no slo con factores internos, sino tambie con factores ambientalescomo la temperatura y el fotoperodo (Lindner y Anderson, 1956 para P.setiferus;Eldred, et al., 1961 para P.duo rarum; San Feli et al., 1973 para P.kerathurus;Petriella, 1986 para A.longinaris).

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    2.4 MADURACION

    Es el proceso por medio del cual machos y hembras de una especie desarrollan susrganos genitales hasta alcanzar vulos y

    Figura 6. Estructura del tegumento. A: corte transversal en premuda mostrando lareabsorcin del antigo exoesqueleto y formacin del nuevo; B: cortetransversal en intermuda. (Petriella, 1984). cm: capa membranosa; e:epidermis; en: endocutcula; ep: epicutcula; ex: exocutcula; g: glndula

    tegumental; nep: nueva epicutcula; nex: nueva exocutcula; zr: zona dereabsorcin.

    Estadio I

    Gnadas invisibles a travs del exoesqueleto. Aspecto filiforme, muy pequeascomparadas con los dems rganos y confinadas al abdomen, muy flccidas y decolor blanco translcido (Figura 7).

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    Estadio II

    Gnadas invisibles a travs del exoesqueleto. Con aspecto filiforme pero con unesbozo de desarrollo del lbulo anterior, transparentes y con muy poco cromatforos.

    Estadio III

    Gnadas invisibles a travs del exoesqueleto. Hay un alargamiento importante,reconocindose un lbulo anterior con lobulaciones digitiformes que cubren elhepatopncreas y la regin abdominal ms engrosada y bien diferenciada delintestino. Son transparentes y con muchos cromatforos.

    Estadio IV

    Ovarios visibles a travs del exoesqueleto. Se diferencian tres regiones: una anteriorcon dos lbulos, media con varias lobulaciones y posterior que se contina hasta eltelson. El color es verde plido.

    Estadio V

    Ovarios visibles a travs del tegumento. Color verde oliva con cromatforos. La reginanterior compuesta por dos lbulos doblados en forma de gancho que llegan alextremo de la regin ceflica, la regin media con 6 lobulaciones laterales digitiformesy una regin posterior abdominal que se extiende hasta el telson.

    Estadio VI

    Las mismas caractersticas externas del estado V, pero la consistencia es muy

    flccida y cremosa, deshacindose al tratar de removerlo. Color verde rojizo. Son losovarios desovados.

    En el estado V se observ en los ovocitos la presencia de Jelly like substance ocuerpos perifricos (Figura 8).

    En general, los mismos estadios de king (1948) han sido utilizados para determinarestadios de maduracin en P.merguiensis, P.japonicus,Metapenaeus ensis y Penaeussemisulcatus (AQUACOP, 1975) y por Chamberlain y Lawrence (1981-a)en P.stylirostris y P. vannamei. Es de hacer notar que on las esnecies de tlicocerrado como P.merguiensis, P.japonicus, Artemesia longinaris es mas difcil percibirla fecundacin ya que slo se observan partes blandas del espermatforo transferidopor el macho solo por un breve perodo, las cuales desaparecen rpidamente y alcabo de 24 hs, solo se obseryan masas blancas bajo las placas del tlico.

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    Figura 7. Distintos estadios de maduracin ovrica en Artemesia longinaris (Petriellay Daz, 1987). a: estadio I; b: estadio II; c: estadio III; d: estadio IV; e: estadioV.

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    Figura 8. Corte histolgico de ovario de Artemesia longinaris en maduracin total.(Petriella y Daz, 1987).

    c: clulas foliculares; o: ovocito maduro;r: cuerpos perifricos.

    2.4.2 Maduracin en machos

    Se visualiza externamente porque las coxas del 5 par de pereipodos presentan unafuerte coloracin verde, debido a la presencia de los espermatforos maduros.Tambin pueden observarse en aquellos ejemplares ya desprovistos de susespermatforos, el petasma deteriorado (Daz, comunicacin personal).

    2.4.3 Factores que regulan la maduracin

    La maduracin se encuentra regulada por dos tipos de factores ambientales yhormonales.

    2.4.3.1 Facto res ambient ales

    a) Temperatura: este parece ser el factor ambiental ms importante, a este respectose ha establecido una correlacin entre la cantidad de hembras ovgeras de Penaeus

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    duorarum obtenidas en reas cercanas a la Isla Tortuga y la temperatura del agua demar cuando esta es superior a los 70F (Cummings, 1961).

    Para el camarn argentino (Artemesia longinaris) la temperatura de maduracin seencontrara entre los 18 y 23C; en cuanto a los camaronescomo P.stylirostris y P.vannamei se ha obtenido maduracin a temperaturas del aguaentre 23 y 28C (Chamberlain et al., 1981), mientras que en similares resultados seconsiguieron a temperaturas que oscilan entre 25 y 29C (AQUACOP 1975, 1983).

    b) Luz y fotoperiodo: poco es lo que se ha trabajado con respecto a la influencia deestos dos factores en la maduracin.

    Para P.merguiensis (AQUACOP, 1975) se ha determinado que la intensidad de la luzparece ser un factor importante en este proceso, obtenindose mayor cantidad dehembras maduras con animales sometidos a solo 10% de luz natural incidente que enaquellos sometidos al 40% de luz. Porootra parte Lawrence et al. (1980) obtienemaduracin de P.setiferus con luz natural en un 1040% de incidencia, mientras que

    en P.monodon (Primavera, 1980) halla resultados similares con una reduccin de laluz natural entre 40 y 60%. Chamberlain y Gervais (1984) obtienen maduracinen P.stylirostris solo incrementando el fotoperiodo y temperatura de 13.5 hs. y 18C a14.5 hs. de luz y 28C, sin ablacin. Con P.orientalis se ha obtenido maduracin conluz. tenue y un fotoperiodo de 8 horas luz (Arnstein y Beard,1975); P.stylirostrisparece madurar mejor con luz tenue y/o luz del da con unfotoperodo de 13 horas de luz con intensidades de luz brillante, moderada o en laoscuridad (Chamberlain y Lawrence, 1981 b). Los mismos autores determinan que lashembras de P. vannamei maduran mejor cuando son sometidas a la accin de luzbrillante, moderada o solar.

    En el centro de la Polinesia AQUACOP (1983) han obtenido maduracin de diversasespecies como P.monodon, P.merguiensis, P.indicus,P.stylirostris, P.vannamei engreen houses con luz natural y fotoperiodo que vara entre 10 horas luz en julio a 14horas en diciembre.

    Como se puede ver en algunos casos estas experiencias resultan contradictorias, porlo que se recomienda en caso de iniciar operaciones de maduracin en cautividadrealizar experimentacin propia con las especies que se planea trabajar.

    2.4.3.2 Control horm onal de la maduracin

    En los crustceos los pednculos oculares contienen una variedad de hormonas queactan sobre diversas funciones tales como crecimiento, metabolismo en general,muda, equilibrio osmtico, etc. (Lockood, 1967). Las hormonas son producidas porclulas nerviosas (neurosecretoras) que se encuentran en los pednculos oculares ycerebro. Las secreciones son transportadas a lo largo de los axones a la glndula delseno hasta que por un estmulo son descargadas en la hemolinfa.

    En el pednculo ocular se encuentra el complejo rgano X-glndula del seno queproduce una variedad de hormonas, una de las cuales inhibe el desarrollo de las

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    glndulas sexuales (Ovarios y Testculos) y otra (MIH) que es inhibidora de la muda.Existe adems otro par de glndulas que se encuentran en la proximidad de lasmandbulas (glndula Y) que segregan una sustancia responsable de la iniciacin delproceso de muda, si se sacan estas glndulas el animal es incapaz de mudar. Existeuna glndula andrognica cuya secrecin determina los caracteres primarios ysecundarios de los machos y el ovario, cuyas hormonas determinan los caracteressexuales de las hembras.

    Como es de imaginar si a un crustceo se le extirpa el pednculo ocular se produceun aumento en la frecuencia de la muda y un incremento en la vitelognesis, es decirmaduracin.

    En Artemesia longinaris, individuos ablacionados unilateralmente tienen una tasa demuda de 2.5 con respecto al valor l obtenido en camarones no ablacionados (Petriellay Daz, 1987). En cuanto a maduracin Caillouet (1973) obtiene maduracin dehembras de P.duorarumpor ablacin unilateral en dos semanas. El Grupo AQUACOP(1977) reporta maduracin de hembras de P.monodom luego de 7 das de haber sido

    ablacionadas, los mismos autores en 1975 han obtenido maduracin naturalpara. P.merguiensis, P.japonicus, Metapenaeus ensis y ejemplares ablacionadosde P.aztecus (al cabo de dos semanas). Ms an, con P.monodon y utilizando lamisma tcnica, se ha obtenido maduracin de juveniles (Halder, 1978); aunqueChamberlain y Lawrence (1981 a), no encuentran diferencias en tasa de muda entreejemplares ablacionados y no ablacionados de P.sytlirostris y P.vannamei obtienenuna mayor ocurrencia de estadios IV y V al igual que una mayor tasa de desove enejemplares ablacionados.

    Se debe destacar que si bien la ablacin promueve maduracin, para completarla esnecesaria la presencia de machos ya que en la mayora de las especies el estadio demaduracin total se alcanza luego que las hembras han sido fecundadas.

    Una especie de tlico cerrado como P.merguiensis solo comienza a madurar cuandola hembra es impregnada. En especies de tlico abiertocomo P.stylirostris, P.vannamei. Pleoticus muelleri tambin el ltimo estadio demaduracin se alcanza cuando el espermatforo se encuentra adherido a la parteventral del cefalotrax de la hembra.

    El desove se produce entre 35 das a 3 semanas luego de la ablacin. La ablacinse realiza mediante distintas tcnicas:

    a. apretando el pednculo ocular con dos dedos

    b. cortando el pednculo ocular con tijerasc. punzando el lbulo ocular con un alfiler o aguja

    En muchos casos se utilizan antibiticos y cauterizacin de la lastimadura producidapara evitar infecciones posteriores

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    2.4.4 Alimentacin parainducir la maduracin

    La alimentacin es de fundamental importancia en el pro ceso de maduracinprincipalmente cuando se trata de efectuar sta en pequeos estanques. Dentro delos compuestos fundamentales en la dieta se encuentran las grasas, principalmente

    cidos grasos de la serie linolnica (w3, de origen marino), colesterol y sus derivados.

    Es por ello que se utilizan alimentos naturales ricos en estos compuestos, los cualessumados a la ablacin unilateral y a condiciones ambientales favorables, permitenobtener maduracin gonadal con cierto xito.

    Entre las comidas ms usadas se encuentran combinaciones de anlidos marinos,ostras, mejillones, calamares, camarones, etc. En ciertos casos se utilizan algunos deestos alimentos naturales suplementados con dietas pelletizadas.

    Por lo general el alimento se suministra en cantidades que van de 317% de labiomasa del tanque, repartido en 2 a 4 raciones diarias.

    Con respecto a las dietas pelletizadas, se pueden utilizar solas o en combinacin condiversos alimentos naturales (AQUACOP, 1975; Lawrence et al., 1980).

    Alimento Shigeno AQUAPOC-17.000 Lawrence et al., 1980

    Harina de calamar 47 Carne de troca 33,3 Harina de camarn. 35

    Harina Misidaceo 15 Harina de carne 33,3 Harina de calamar 25

    Levadura de petrleo 20 y hueso Harina de pescado 15

    Active sludge 5 Carne de bonito 16,7 Cscara de arroz 12,5

    Gluten 3 Comida para po- 16,7 Vitaminas 2,0

    Almidn 2 llos Minerales 1,0

    Vitaminas 3 Soluble de pescado 2,0

    Minerales 5 Aceite de pescado 2,5

    Colesterol 0,5

    Lectinina 1,0

    Varios 3,5

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    2.5 MADURACION EN CAUTIVIDAD

    Como se dijo anteriormente la maduracin depende de una serie de factores talescomo: alimentacin, temperatura, luz (intensidad, fotoperodo) y factores hormonalesintrnsecos de cada especie.

    En reas geogrficas donde las fluctuaciones estacionales de temperatura son muymarcadas, la maduracin en cautividad se debe realizar en instalaciones cerradas concontrol de temperatura.

    En esa instalacin se deben colocar tanques que pueden ser redondos orectangulares de 3 a 5 m2de superficie y una altura de columna de agua entre 0,6 ylm. Sobre los mismos se debe colocar una batera de tubos fluorescentes de 40W oms, colocada a 0,6-lm de distancia de la superficie del agua (Figura 9).

    Es conveniente utilizar tanques de fibra de vidrio ya que es de fcil limpieza, en casode no ser posible utilizar este compuesto se deber recubrir las paredes de lostanques con varias capas de pinturas epoxy.

    Los tanques debern armarse de manera que permitan una circulacin continua deagua con una capacidad de recambio diario hasta 4 veces el volumen del mismo. Esimportante conocer el comportamiento de la especie con la cual se trabaja a fin deacondicionar los tanques con el fondo ms adecuado, ste podr ser de conchilla yarena, con sistema de filtro interno para especies que se entierran como P.vannamei, P. japonicus, Pleoticus muelleri; o con fondo de conchillas y sistema defiltro para especies que no lo hacen como Peaneus stylirostris, P.monodon, Artemesia longinaris.

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    Figura 9. Esquema de un tanque de maduracin de 3 m de dimetro con fondo deconchilla, arena y circulacin continua de agua.

    En todos los casos el agua debe ser filtrada por medio de un sistema de filtros, porejemplo, de arena o tierra de diatomeas. Una vez llenos los tanques, se colocan losanimales ablacionados, teniendo la precaucin de utilizar ejemplares de edad superior

    a los 8 meses, la relacin ptima entre machos y hembras es 1:1 1:3.

    La iluminacin depender de la especie con la cual se trabaje, debiendo ser elfotoperiodo superior a 13 horas luz. La temperatura del agua para especies tropicalespodr variar entre 25 y 30C para las de aguas templadas, de 18 a 23C, en todos loscasos es conveniente que la salinidad se encuentre entre 25 y 35C.

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    La alimentacin deber ser ad libitum y podr consistir en una dieta naturalcombinada con partes iguales de mejilln, poliquetos y calamar suministradadiariamente en tres veces; otros alimentos que se pueden utilizar son camarn,almejas, ostras, de acuerdo con la disponibilidad en la regin y dietas pelletizadas.

    Se deber efectuar un control diario de los estadios de maduracin gonadal con elobjeto de retirar de los tanques las hembras maduras e impregnadas, colocandolas enlos recipientes de desove.

    Para una mayor informacin, la Tabla 1 muestra las tcnicas de maduracin gonadalutilizadas en distintas especies.

    Tabla 1. Maduracin y desove en cautividad en especies de peneidos. Referencias: a.Brown et al. 1979; b.AQUACOP, 1979; c. Primavera y Gabasa, 1981; d.Primavera, 1978;

    e.Chamberlain y Lawrence, 1981 a; f. Marchiori y Boff, 1983.

    EspecieDensidad(ej./m2) Rel.sexos

    Peso (g)variables

    ambientales

    DietaDesove Node

    huevosViabilida

    d %Hembra

    sMachos

    T(C)

    S(%)

    pH

    P.setiferus (a)

    6,5 - -2229

    2230

    7,5

    7,9

    Poliquetos

    190.000 No

    Calamar

    Ostras

    Mejillones

    P.monodon (b)

    50130 3560Pellet-Troca

    50.000/600.000

    95

    P.stylirostris 3 3040 -2429

    35 8,2Pellet-calamar

    70.000/100.000

    50

    P.vannamei 1:1 3045 - Pellet-calamar

    60.000/200.000

    Variable

    P.monodon (c)

    4690(minimo)

    45(mnimo)

    2430

    2834

    7,5

    8,5

    Pellet-mejillon

    307.000 37

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    1:1, 5

    P.monodon (d)

    4 104 502426

    3034

    7,8-8,1

    Mejilln 277.400 98

    1:1

    P.stylirostris (e)

    6,9 3450 34502430

    28,66,8-8,8

    Almeja 176.000 50

    P.vannamei 1:1 2542 2542 Camarn no consigna Si

    Calamar

    Poliqueto

    P.paulensis (f) - 4470 2742 2427 3335 7,8-8,2 Almejas 1000/116.500 84

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    3. CULTIVO DE CAMARONES

    3.1 METODOS DE CULTIVO

    La cra de camarones y langostinos en ambientes naturales o seminaturales tiene tres

    fases principales:

    Maduracin y reproduccin Desove y cra desde huevo a postlarva Engorde desde postlarva a tamao comercial

    Esta actividad puede encararse de diversas maneras de acuerdo con el nivel deinversin que se quiera realizar y al conocimiento que se tenga de la especie a cultivaren cuanto a su biologa, ecologa, migraciones, hbitos, etc. Es posible completar elciclo en cautividad; traer hembras ovadas del mar, criar las larvas y realizar engordehasta talla comercial; capturar postlarvas y/o juveniles que se acercan a la costa y

    engordarlas.

    3.1.1 Engorde de postlarvas y/o juveniles obtenidos en la naturaleza,

    Consiste en capturar pequeos ejemplares que arriban a zonas costeras comolagunas o esteros, llevndolos a estanques o brazos de agua, de hasta 100 hectreasde superficie para su engorde.

    Una forma rudimentaria que todava se utiliza en Asia, consiste en dejar entrar con lasmareas las postlarvas o juveniles a estanques previamente fertilizados con abonosorgnicos o inorgnicos, para luego cerrar las compuertas. Esta forma de trabajar

    tiene la desventaja que junto con los camarones entran otras especies que sonpredadores o competidores del organismo en cultivo. Los pases donde se realiza estetipo de operacin son: India, Filipinas, Bangladesh, Tailandia, Indonesia, etc;cultivando especies como Penaeus monodon, P. indicus, P.semisulcatus, Metapenaeus monoceros, etc, con rendimientos que van de 70 a 1000Kg/Ha/ao (Tang, 1986; Blanco, 1972).

    En Ecuador, en cambio, se capturan las larvas de Penaeus stylirostris y P.vannamei a mano o con redes, para evitar los predadores, obtenindose hasta 427 Kgcola/Ha en el caso de P.vannamei (Cobo Cedeo, 1977).

    Otras desventajas de este tipo de cultivo son; El problema de la obtencin de semillas;baja produccin debido a que la cantidad de alimento natural en los estanques eslimitada; la baja concentracin de oxgeno disuelto en el agua. Es por todo esto, quela cantidad de animales por metro cuadrado nunca es mayor de 4, aunque sesuplemente la alimentacin con dietas preparadas.

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    3.1.2 Cra de postlarvas a partir de hueyos y su posterior engorde

    Para realizarla es necesario obtener hembras maduras e impregnadas de lanaturaleza, las cuales desovan entre 18 y 48 hs. despus de su captura. Los huevosas obtenidos se colocan en tanques de diversas formas. Las larvas se alimentan

    primero con fitoplancton, principalmente diatomeas) y posteriormente en zooplancton(preferentemente estadios naupliares de Artemia salina); los estadios de postlarvaavanzados pueden ser alimentados con algn alimento preparado y molido (Mock yNeal, 1977; Fenucci et al., 1984; Scelzo y Boschi, 1975).

    Una vez alcanzados los estadios de postlarva stos son trasladados a pequeosestanques denominados precriaderos, nurseries o versarios, colocndolos endensidades de hasta 150 animales/m2. Cuando pesan entre 1 y 3g los camarones sontransferidos a tanques de engorde, de mayores dimensiones (entre 3 y 16 Ha.), dondequedan hasta alcanzar la talla comercial (entre 18 y 25g).

    Tanto en los precriaderos como en los estanques se engorde se realiza fertilizacincon distintos tipos de abono, se alimenta con comidas preparadas, se realizancambios de agua mediante bombas, y se lleva control de todas las variablesambientales (temperatura, salinidad, oxgeno disuelto, etc).

    Este tipo de cultivo que podramos denominar semi-intensivo o intensivo de acuerdocon el grado de produccin y sofisticacin en la metodologa de trabajo, producerendimientos en Ecuador para P. stylirostris y/o P. vannamei entre 680 y 1.500 Kg/Ha;mientras que en Asia se obtienen cosechas de P. monodon, P. indicus, Metapenaeusmonoceros de 1.500 a 2.000 Kg/Ha/ao. En Taiwan, con P. monodon(camarn tigre) yen Japn con P. japonicus, se obtienen rendimientos de 8.000 y 10.000 Kg/Ha/aorespectivamente (Tang, 1986); un dato digno de destacar es el hecho que en Japn

    existen compaas que obtienen producciones de 17.000 Kg/Ha/ao (Shigeno, 1975).

    3.1.3 Ciclo completo en cautividad

    Por ese mtodo, adems de los pasos del item anterior, es necesario obtener lamaduracin de machos y hembras en cautividad, copulacin y desoves viables. Elciclo completo en cautividad se llev a cabo en distintas especies, por lo menos anivel experimental, utilizando por lo general ablacin unilateral y comidas especiales(ver mtodos descritos en el captulo anterior), algunos ejemplos son: P.californiensis, P. japonicus, P. merguiensis, P. kerathurus, P. monodon, P.stylirostris y P. vannamei (Liao y Chen, 1983; Lumare, 1981)

    Esta metodologa presenta la ventaja que permite al camaronicultor independizarse dela naturaleza en cuanto a la obtencin de hembras grvidas o postlarvas; pero seestima que en el estado actual de los conocimientos se debe utilizar el mtodo 2,descripto en el item 3.1.2., que es el que presenta menos problemas ya que losmtodos de cra de larvas se encuentran generalizados en todo el mundo, nopresentando grandes problemas al respecto y siempre y cuando se cuente conpersonal calificado.

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    Se debe tener en cuenta que el mtodo de cra de larvas puede resultar costoso parainversores pequeos o medianos, por lo que es conveniente iniciar una granjacamaronera comprando las postlarvas y juveniles a laboratorios ya instalados pararealizar engorde y luego una vez obtenido un cierto rdito, iniciar las operaciones decra de larvas.

    3.2 CONDICIONES QUE DEBE REUNIR EL AREA DONDE SE

    ESTABLEZCA UNA GRANJA

    Es necesario disponer de agua dulce y salada, no contaminadas, el lugar debe ser defcil acceso, estar cercano a reas donde se puedan obtener hembras grvidas y, enel caso de realizarse solo tareas de engorde, cerca de la zona donde se puedanobtener postlarvas o juveniles.

    La temperatura ambiente y del agua de mar debe ser adecuada para el crecimiento dela especie con la que se trabaje. En el caso de especies tropicales, la temperatura no

    debe descender de los 20C, mientras que para especies de aguas templadas, elrango de temparatura del agua podr variar entre los 7 y 24C.

    El suelo deber ser apto para la construccin de estanques y preferiblemente nocido.

    La cantidad de lluvia y evaporacin son datos a tener en cuenta, ya que las dosvariables, en casos extremos son importantes. Una excesiva evaporacin producir

    un aumento de salinidad que en valores superiores a 40es en general perjudicial yobviamente una gran cantidad de lluvia crea no solo problemas de baja salinidad, sinoque como ocurri en Ecuador en 1985/86, produce el desborde de los estanques, y

    ruptura de muros lo que hace que deban suspenderse las operaciones.

    3.3 CALIDAD DEL SUELO

    3.3.1 Permeabilidad

    La composicin ideal de un suelo para la construccin de estanques es de 70% dearena y 25% de arcilla, siendo el factor ms importante la permeabilidad de losmismos. El escurrimiento del agua debe ser menor del 5% diario, no superandovalores mayores del 15%.

    Un test rpido para determinar la permeabilidad consiste en realizar un pozo de 1,5 mde profundidad y 0,25 m2de boca, llenarlo con agua al anochecer y medir el volumenal amanecer. Otro mtodo consiste en construir dos pozos de iguales caractersticasdejando uno abierto y otro tapado por 24 horas, el tapado nos dar la idea de lapermeabilidad, mientras que la diferencia de volumen con el abierto nos indicar elgrado de evaporacin en la zona.

    Una primera idea de la permeabilidad de un suelo se puede tener tomando un puadode suelo hmedo y hacer una pequea pelota amasndola, si la pelota queda intacta

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    y no se cuartea el suelo es en principio lo suficientemente impermeable para laconstruccin de un estanque.

    3.3.1.1 Mtodo s de imperm eabili zacin

    En caso que la permeabilidad no sea adecuada existen diversas metodologas parasolucionar el problema.

    a. Compactacin: Se remueve el suelo de los estanques a una profundidad de20/30 cm y luego se compacta.

    b. Agregado de suelo ms impermeable: Se remueve el suelo y se agrega unacapa de 3040 cm de suelo rico en arcillas, compactndose luego.

    c. Selladores: De acuerdo con Bardach et al., (1972), si los mtodos anterioresno dan resultado se pueden usar distintos tipos de selladores:

    a.1 Bentonita: Es el sellador ms comn, se puede utilizar cuando losyacimientos de esta arcilla se encuentran cercanos ya que el costo de

    transporte es elevado. La bentonita tiene la propiedad de absorber grandescantidades de agua expandindose 8 a 20 veces su volumen, de esta manerase obturan los poros del suelo.

    Esta arcilla se aplica en fondo seco en cantidades que varan de acuerdo conla permeabilidad entre 0,5 a 1,5 Kg/m2, debindose determinar la cantidadexacta por anlisis del suelo. En estanques construdos en las cercanas deLaguna Madre, Texas, se utilizan con buenos resultados0,1Kg/m2(Chamberlain et al., 1981).

    a.2 Selladores qumicos: si el suelo est constitudo por partculas de grado

    muy fino se utilizan este tipo de sustancias. Son efectivos en suelos formadospor partculas (50%) menores de 0.74 mm de dimetro y que contienen menosde 0,5% de su peso seco en sales solubles (Bardach et al., 1972). Entre losselladores ms comunes se encuentran:

    Cloruro de sodio (Sal comn)Pirofosfato tetrasdico (TSPP)Tripolifosfato de sodio (STPP)

    La ventaja de estos selladores es que se aplican en cantidades menores que labentonita, as por e-ejemplo se pueden utilizar de acuerdo con el tipo de

    suelos:

    Cloruro;0,040,17 Kg/m2Polifosfatos; 0,010,02 Kg/m2

    Los selladores se mezclan con el suelo hmedo, el cual luego debecompactarse, formando la mezcla una capa de 20/30 cm.

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    3.3.2 PH del suelo

    Este dato debe ser tenido en cuenta antes de la construccin de los estanques. Lossuelos cidos suelen encontrarse en reas costeras, principalmente en zonas demanglares ricas en sulfatos y materia orgnica. Este tipo de suelo al secarse y

    oxidarse baja su pH a menos de 4; esta disminucin produce una alta concentracinde hierro y aluminio los cuales en general son txicos para peces en cantidades de0,5 y 0,2 ppm respectivamente. Estos dos elementos pueden combinarse con elfsforo disminuyendo su concentracin (Singh, 1980). Se ha determinado que unasituacin inversa se produce con la elevacin del pH quedando fosfatos libres quepueden ser utilizados por las algas.

    En consecuencia una disminucin del pH produce una serie de problemas:

    Muerte de camarones por stress Poca productividad en el estanque Necesidad de mayor fertilizacin

    Existe una prueba simple para determinar el grado de acidez del suelo:

    a. Tomar un muestra de suelo hmedo, colocarlo en una bolsa de plstico ydeterminar el pH.

    b. Dejar secar la muestra a temperatura ambiente.c. Luego de 2 o 3 semanas mezclar la muestra con agua, tomar el pH y si ste es

    inferior a 4 nos encontramos ante un suelo cido.

    3.3.2.1 Mejo ram ient o de su elos cid os

    Cuando se trabaja en suelos cidos se debe tener la precaucin de construir losestanques de poca profundidad, ya que las capas inferiores del suelo son las msaidas.

    Una manera de reducir la acidez en un estanque consiste en llenarlo y vaciarlo conagua repetidas veces, agregando antes del llenado final, de acuerdo con el grado deacidez del suelo, cal hidratada en cantidades que pueden variar entre 0,1 y 1 Tn/Ha;adems se deben adicionar altas cantidades de fosfato (Simpson y Pedini, 1985). Esbeneficioso tambin el uso de fertilizantes inorgnicos con el fin de reducir lapresencia de Garbono (C) que favorece el desarrollo de bacterias oxidantes.

    Para obtener informacin detallada sobre el manejo de suelos cidos se recomiendaconsultar el trabajo realizado por Simpson y Pedini (1985).

    3.4 LOS ESTANQUES

    En la actualidad se utilizan 2 tipos de estanques para engorde y cra de camarones:

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    - Precriadero, versario, nursery: En general son tanques de 1 2 hectreas con unaprofundidad de 0,6 a 0,8 m; en ellos se colocan los camarones desde los estadios depostlarvas o juveniles hasta alcanzar de acuerdo con la especie un peso entre 0,5 y4g.

    - Estanque de engorde o criadero: En ellos se colocan los camarones desde quesalen de los precriaderos hasta alcanzar la talla comercial. Si bien en las primerascamaroneras estos estanques llegaban a tener dimensiones superiores a 100 Ha, enla actualidad se los construye con superficies que varan entre 5 y 20 hectreas lo quepermite un mayor control de los mismos.

    En este manual no se darn detalles sobre la construccin de los estanques, pero salgunas pautas que han de ser tenidas en cuenta:

    a) El sistema de estanques debe estar construdo en una zona donde la posibilidadde inundacin sea remota.

    b) El acceso a los estanques no debe ser impedido por las condiciones climticas.En este sentido se conocen casos de granjas en Ecuador en las cuales no se puedellegar a los mismos debido a las lluvias, lo que ocasiona problemas de mantenimiento.

    c) Los estanques deben ser de forma rectangular con una compuerta de entrada yotra de salida de agua, Si los estanques tienen forma irregular se reducir la eficienciade la operacin de cosecha y se producir un estancamiento del agua con laconsiguiente depleccin en la concentracin de oxgeno disuelto.

    d) El fondo de los estanques deber ser liso, libre de malezas, con una inclinacin de0,3 a 1% desde la boca de entrada hacia la de salida y de los bordes laterales al

    centro, para favorecer el vaciado. Las paredes deben estar construdas con unainclinacin entre 1:1,3 y 1:3 (Ramos, 1975), para evitar desmoronamientos por erosinde la base de los muros, la altura de los mismos ser por lo menos 50 cm mayor quela altura mxima de la columna de agua prevista.

    El fondo de los estanques podr tener pequeos canales que converjan hacia laexclusa de salida con el fin de facilitar la cosecha de camarones.

    e) Las compuertas o cajas podrn ser de madera o cemento, las de salida deben serms profundas que el fondo del estanque. En general las cajas llevan hasta mediadocena de ranuras de unos 5 cm de ancho con una separacin aproximada de 10 a20 cm; en estas ranuras pueden colocarse tablones, compuertas decchapa, acero o

    marcos con distinto tipo de malla para evitar la salida de los camarones y entrada deorganismos indeseables.

    Cun (1982) sugiere para el vaciado parcial de los estanques un sistema de tresmarcos: comenzando por la ranura ms cercana a la pileta o estanque se coloca unmarco con una malla que impida la salida de los camarones, en la segunda ranura secoloca un marco con red hasta una altura de 50 cm y luego de completa con exclusasy en la tercera ranura se coloca directamente una exclusa de madera, hierro, etc con

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    una altura que variar de acuerdo con el nivel de agua que se quiera dejar en elestanque ( Figura 10). Se sugiere tambin colocar en el interior del estanquerodeando la compuerta un cerco de malla para detener camarones y desechos.

    Las compuertas de entrada tambin tendrn distinto tipo de malla para evitar laentrada de especies predadoras o competidoras. El nmero de compuertas deentrada y salida de agua ser una funcin del volumen del estanque y de la velocidadde llenado y vaciado que se desee.

    3.4.1 Llenado de los estanques

    La provisin de agua a los estanques se puede realizar por diferencia de mareas o porbombeo. En cualquiera de los mtodos que se utilice, es de fundamental importanciala existencia de un reservorio. ste es un canal cuyo fondo est construdo a unmayor nivel que el fondo de los estanques, los muros tienen una altura entre 1,5 y 2,0m, variando el ancho de acuerdo con el flujo de agua que se quiera, entre 5 y 20 m.Las paredes del reservorio son parte integrante de los muros de los estanques, esdecir las compuertas de llenado se abren en las paredes del canal.

    El reservorio es llenado por lo general por bombas helicoidales de 20 a 40 pulgadasde dimetro; es conveniente tener una batera de bombas.

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    Figura 10. Esquema de una compuerta de desage con los distintos tipos de marcosutilizados.

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    La existencia de este canal tiene la ventaja que posibilita la eliminacin de predadoreso competidores que pasan a travs de la bomba; permite tener una reserya de aguapermanente y adems es de importancia en el sistema de cosecha por vaciado, yaque los camarones que quedan enterrados pueden ser sacados agregando agua porla compuerta de entrada y vaciando hacia el canal de drenaje.

    El tamao del reservorio es una funcin del volumen de agua necesario en lacamaronera, debindose tener en cuenta futuras ampliaciones, as como tambin lanecesidad de realizar recambios de agua que varan entre 5 y 20% diarios, pudiendoser esta cantidad mayor en casos de presentarse problemas en la calidad del agua.

    A fin de determinar el volumen del reservorio y la capacidad de las bombas, para unacamaronera de 30Ha de estanques, de los cuales 3 son precriaderos y 27 Ha deestanques de engorde y considerando el espejo de agua con una profundidadpromedio de 1/3 metro, se calcula que el volumen total necesario ser de 300.000 m.Si adems se realiza un recambio diario del 15% del volumen total, se necesitarn45.000 m3. Teniendo en cuenta que en una zona con un sistemas de mareas diarias

    se puede bombear durante 8 horas (480 minutos), deber emplearse un sistema deprovisin de agua que suministre 93,8 m 3/minuto.

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    4. OPERACIONES EN UNA GRANJA CAMARONERA

    4.1 PREPARACION Y LLENADO DE ESTANQUES

    En general, en la preparacin de precriaderos y estanques de engorde se sigue el

    siguiente esquema:

    a. Se seca el fondo al sol, una vez seco se ara con el fin de airear y distribuirhomogneamente la materia orgnica presente.

    b. En casos que el suelo sea cido efectuar los agregados correspondientes decal (CaO) disuelta en agua, en cantidades que pueden variar entre 100 y 2.000kg por Ha, de acuerdo con el grado de acidez.

    c. En caso de tener que adicionar selladores o bentoniba, deben agregarse enese momento en las cantidades indicadas en el captulo correspondiente.

    d. Los estanques deben ser fertilizados entre 7 y 10 das antes de la colocacinde los animales. Para realizar esta operacin se esparcen los fertilizantes

    orgnicos y/o inorgnicos en canfidades adecuadas (Apndice II) y acontinuacin se inicia el llenado de los estanques hasta que la columna deagua alcance 20 cm. En algunos casos se recomienda llevar el nivel de agua a10/15 cm y al cabo de 5 das elevar la columna de a gua a 30 cm (DireccinNacional de Acuicultura, Panam, 1984). Una vez colocados los camarones seaconseja repetir esta operacin utilizando la mitad de las cantidades defertilizante cada 23 semanas.

    e. El da anterior a colocar las postlarvas en los precriaderos, o los camaronesjuveniles en los estanques de engorde se debe elevar la columna de agua alnivel deseado (0.61.5 m).

    f. El agua que se coloca en los estanques debe filtrarse, colocando en lacompuerta de entrada marcos con redes filtrantes de un tamao de red de 0.54mm de malla aproximadamente. Se aconseja utilizar adems una malla msgrande que acte como prefiltro con el mismo fin; en ciertos casos, esconveniente la construccin de un cerco de malla antes de la compuerta deentrada.

    4.2 OBTENCION DE LA SEMILLA

    Como se ha expresado anteriormente las postlarvas y/o juveniles se pueden obtenerya sea, a partir de ambientes naturales o por desoves y desarrollo de los huevos enecloseras. Hasta estadios postlarvales este mtodo ser tratado en un captulo apartepor lo cual solo se har referencia aqu a los mtodos de captura de postlarvas y

    juveniles en la naturaleza.

    4.2.1 Obtencin de semillas en ambientes naturales

    En latinoamrica se capturan semillas de P.stylirostris y P.vannamei en esteros,bajfos, riachos y canales de aguas tranquilas, a salinidades relativamente bajas,donde llegan las postlarvas y juveniles para alimentarse.

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    Los elementos ms utilizados para capturar las semillas son: Atarraya, resallo,trasmallo, malla o bajo, chayo o copo, etc (Figura 11) siendo ms efectivo el ltimoarte nombrado.

    Cobo Cedeo (1977) ha determinado que 10 hombres en un da capturan entre10.000 y 40.000 ejemplares, stos son colocados en recipientes de plstico deaproximadamente 20 l con aireacin y cambio de agua.

    Actualmente en la poca de aparicin de la semilla se establecen campamentos depersonas dedicadas a la captura de camarones, los cuales son vendidos a mayoristasquienes los transportan en recipientes de 200 l o ms, los mantienen en tanques por24 hs para realizar una seleccin, para conducirlos inmediatamente a las distintascamaroneras que los compran.

    4.3 TRANSPORTE DE LA SEMILLA

    En los pases latinoamericanos la semilla se transporta en tanques de fibrocemento,fibra de vidrio o plstico de 200 o 300 l, con agua hasta sus 3/4 partes, oxigenados(Figura 12) en algunos casos una malla fina cubre las paredes internas y fondo de losestanques apra facilitar la colocacin de la semilla en los precriaderos (Yoong Basurtoy Reinoso Naranjo, 1982). Hay ocasiones que aparecen con las larvas otros animalescomo larvas de peces o cangrejos por lo que es indicado agregar Rotenone enconcentraciones 5/7 ppm para su eliminacin.

    Durante el transpporte, la densidad de la semilla debe estar entre 250 y 122 por litrodependiendo de la temperatura, al aumentar la temperatura la densidad debe sermenor. Durante el transporte se evitarn las altas temperaturas; los camarones deaguas tropicales toleran temperaturas entre 18 y 25C y de aguas templadas

    temperaturas inferiores a los 20C. La concentracin de oxgeno disuelto no deberbajar de 5ppm por lo que se recomienda aireacin continua durante el transporte.

    Durante todo el viaje los recipientes estarn cubiertos por una red de malla fina yaireados en forma permanente; para ello se pueden utilizar aireadores a batera, obien tubos de oxgeno o aire comprimido de aproximadamente 10 kg. de carga convlvula reguladora conectados a un tubo de PVC que finaliza hundido en el agua delrecipiente en una piedra difusora o tubo rgido perforado para una mejor distribucindel aire (Figura 13).

    Otro mtodo alternativo sera construir una pileta de lona o plstico en la caja de una

    pick up o camioneta lo que nos dara un volumen aproximado de 2 m3

    , en este caso lapileta deber estar dividida en cuatro partes por una red de malla debindose tenerlas mismas precauciones de aireacin.

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    Figura 11. Trasmallo para captura de postlarvas y juveniles.

    Figura 12. Transporte de semilla.

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    Figura 13. Esquema de tanque para transporte de semilla.

    En caso de querer enviar postlarvas en avin se aconseja bajar lentamente latemperatura del agua a 17/18C para especies tropicales y colocarlas en bolsas denylon llenas con agua de mar aireada, con una densidad de 1500 larvas/litro(dependendo del estadio de desarrollo) y luego las bolsas se colocan en recipientestrmicos para evitar la elevacin de la temperatura.

    En todos los casos una vez que las postlarvas y/o juveniles arriban a destino, antes decolocarlos en los precriaderos, deben ser adaptados a las condiciones de salinidad ytemperatura de los mismos. A tal fin se debe agregar paulatinamente a los tanques detransporte, agua de los estanques; se debe tener especial cuidado en no variar en

    mas 2/3C la temperatura y 2/3la salinidad por hora ya que cambios bruscos en

    estas variables afectarn la supervivencia de los camarones.

    Una vez realizada esta operacin los animales estn listos para ser colocados en losprecriaderos. En Ecuador y Per el bilogo que recibe los camarones, debe ponerespecial cuidado que las postlarvas que reciba sean en su mayora P. vannamei yaque la otra especie P. stylirostris presenta problemas para su engorde y P.occidentalis tiene un pobre crecimiento en los estanques.

    4.4 ESTABULAMIENTO DE LOS ESTANQUES

    a) Precriaderos: La densidad a la cual se colocan los animales vara de acuerdo con

    el cuidado que se tenga de los estanques y de la capacidad tcnica de la granja, delsuministro o no de alimenta cin, cambios de agua, etc.

    Por ejemplo en cultivos extensivos de P. monodon se colocan 20/30semillas/m2(Primavera y Apud, 1980); en Ecuador en granjas de P. stylirostris y P.vannamei se estabulan entre 100 y 200 animales/m 2(Yoong Basurto y ReinosoNaranjo, 1982). La experiencia perso. nal indica para las dos especies mencionadasuna densidad de 120 camarc nes/m2, aunque en algunas granjas sta suele ser de

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    2025/m2. En algunos criaderos de per la densidad inicial de postlarvas de P.vannamei se encuentra en los 100/m2.

    Los animales permanecen en los precriaderos entre 30 y 60 das, hasta alcanzarpesos que varan entre 0.5 y 4g.

    b) Criaderos o estanques de engorde: En estos estanques los animales son llevadoshasta talla comercial, para la mayora de las especies sta se encuentra entre 18 y 25g, para P. monodon la talla de cosecha puede llegar hasta los 40 g.

    Los criaderos generalmente tienen una superficie entre 5 y 20 hectreas, pero los demenor tamao (59 ha) son ms prcticos, ya que en ellos, se puede ejercer unmayor control sobre los camarones en cra, lo que permite sembrar una mayordensidad de animales.

    En trminos generales en un estanque al que slo se fertiliza y se cambia el agua sepueden colocar hasta 2 camarones por m 2; si se agrega algn tipo de alimento, con un

    mayor recambio de agua la densidad de podr encontrar entre 3 y 10 animales pormetro cuadrado, pudindose llegar hasta 40 camarones/m 2utilizando aireacinsuplementaria (Liao y Chao, 1983). En el caso de Pleoticus muelleri se han obtenidomuy buenos resultados trabajando en estanques con aireacin, fertilizacin y alimentobalanceado con densidades de 20 animales/m2. Pero cuando la densidad aumenta a30 camarones/m2se obtiene una supervivencia de solo 50%. En la Tabla 2 se puedenobservar a las densidades que se estabulan distintas especies de peneidos enestanques o tanques de engorde y las dimensiones de los mismos.

    4.5 MANTENIMIENTO DE LOS ESTANQUES

    Una vez colocados los camarones en los estanques y con el fin de mantener el medioen condiciones ptimas se debe realizar recambio de agua. Estos cambios puedenvariar entre 2, 5 y 25,0% as como la frecuencia, que puede ser diaria o cada 3 o 4das, esto ser una funcin de la capacidad del sistema de mantener la calidad delagua. En los precriaderos es conveniente no cambiar el agua durante los primeros 15das, razn por la cual se aconseja el uso de airadores.

    La frecuencia del cambio de agua depender de los siguientes parmetros:

    1. Temperatura del agua2. Salinidad3. Cantidad de oxgeno disuelto

    4. pH5. Turbidez6. Coloracin

    4.5.1 Temperatura

    Se debe medir diariamente, para los camarones de aguas tropicalescomo P.stylirostris, P.vannamei; la temperatura del agua deber entre 20 y 32C,

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    siendo el ptimo entre 22 y 30C (Yoong Basurto y Reinoso Naranjo, 1982), aunquepara P. stylirostris los mejores crecimientos se han obtenido a temperaturas entre 27 y30C (Fenucci et al., 1982), pudindose extender esta temperatura a todas lasespecies tropicales. En cuanto al langostino argentino (Pleticus muelleri) laexperiencia indica que la temperatura puede fluctuar entre 6 y 27C aunque latemperatura ptima entre 9 y 23C.

    Tabla 2. Densidad y tratamientos para el engorde de diversas especies delgnero Penaeus. (F: fertilizacin, A: alimentacin).

    Especie PasDensidad

    Camarones/m2Superficie

    Estanques (Ha)Tratamiento Fuente

    P.stylirostris Ecuador 23 1015 F Yoong Basurto y

    P.vannamei 3 ms 1015 F,AReinoso Naranjo,1982

    P.stylirostris y Ecuador 1020 810 F,A Autor

    P.vannamei

    P.vannamei Panam 4 5 F,ADireccinNacional

    P.stylirostris Panam 2 5 F,AAcuicultura,Panam,

    ambas spp Panam 0,51 5 F 1984

    P.stylirostris y Ecuador 22,5 No consigna F

    P.vannamei 35 No consigna F,A Cun, 1982

    P.vannamei Paru 5 20 F Autor

    P.monodon Filipinas 0,52 No consigna FPrimavera y Apud,1980

    P.monodon Filipinas 16 0,25 ALiu y Mancebo,1983

    P.monodon India 2 1,14 FSundarhrajan etal., 1979

    P.japonicus Japn 1620 410 A Kurata y Shigeno,

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    1979

    P.brasiliensis Venezuela 10 0,028 AGomez y Scelzo,1982

    4.5.2 Salinidad

    Este parmetro deber ser tomada diariamente y podr oscilar entre los 15 y 40%encontrndose para la mayora de las especies entre 15 y 30%. En el caso dePeneidos, que habitan las costas argentinas, la salinidad no debe bajar de 26%.

    4.5.3 Cantidad de oxgeno disuelto

    Es uno de los parmetros ms importantes, se cuantifica dos veces al da, en lamaana y al atardecer. En los estanques este elemento proviene del agua derecambio, la fotosntesis y en menor grado del que se disuelve en la superficie delestanque proveniente de la atmsfera.

    Las menores concentraciones de oxgeno se observan durante la madrugada y lasmayores a ltima hora del da. Se consideran raugos normales de concentracin entre4 y 9 ppm, Se debe evitar no solo una baja concentracin, sino valores superiores a10 ppm, ya que esto indicara una excesiva concentracin de fitoplancton que puedeproducir una deplecin notable de oxgeno durante la noche.

    Se debe puntualizar que en los estanques el oxgeno tiende a estratificarse, es decir,hay generalmente una mayor concentracin en las capas superiores del agua, que enel fondo; dado que los camarones viven all, es necesario realizar una

    homogenizacin de la columna de agua para tener una correcta aireacin.

    Entre los elementos que pueden utilizarse se encuentran los agitadores a paletaPaddle wheel que pueden ser movidos por motores a nafta o con energa elica; enzonas donde hay corriente elctrica se pueden utilizar flotadores.

    4.5.4 pH

    Indica la concentracin de iones hidrgeno H+, es decir, si el agua es cida o bsica.El rango ptimo de pH se encuentra entre 7 y 9; pero valores de pH 5 han demostradono ser nocivos para los camarones. No obstante sto, una elevacin o disminucin

    pronunciada de los valores de pH puede producir efectos letales para el equilibrioecolgico del estanque. La medicin de esta parmetro deber ser diaria.

    4.5.5 Turbidez

    Da idea del material en suspensin que se encuentra en el agua del estanque, estematerial interfiere en el paso de la luz. En los estanques se debe evitar que hayapartculas de detrito o arcilla en suspensin. La turbidez se mide con el disco de

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    Secchi y es la medida de la profundidad a la cual este disco desaparece al sumergirloen el agua.

    Si la visibilidad es menor de 30 cm, hay problemas potenciales, si es mayor la luzpuede penetrar mejor y habr una mayor productividad y crecimiento de losorganismos de los cuales podrn alimentarse los camarones. Esta medicin: se puedeefectuar cada 3 das.

    4.5.6 Coloracin del agua

    Depende de varios factores, concentracin y tipo de algas, materia en suspensin,etc. Los colores que puede presentar el agua son:

    a. Verde plido: indica adecuada concentracin de algasb. Gris: denota pocas algas en el estanque, se recomienda mayor fertilizacin,

    complementada con recambio de aguac. Verde musgo: algas que comienzan a morir, se requiere un urgente recambio

    de agua.d. Verde brillante: indica grandes concentraciones de algas, debe efectuarse

    recambio de agua para disminuir el riesgo que baje la concentracin deloxgeno disuelto durante la noche.

    e. Marrn: indica gran cantidad de algas muertas, se debe efectuar recambio deagua y fertilizacin, problablemente haya una falta de nutrientes y exceso demetabolitos.

    4.6 MUESTREOS PERIODICOS PARA DETERMINAR BIOMASA EN LOSESTANQUES

    Los muestreos peridicos tienen por finalidad la determinacin de la evolucin delcrecimiento de la poblacin de estanque y son de fundamental importancia, ya quepermitirn el ajuste de las cantidades de alimento suministradas y algunascondiciones experimentales; debern realizarse cada 10/15 das.

    El mtodo de muestreo consiste en dividir el estanque en doce sectores iguales,imaginarios, y elegir cuatro de ellos al azar. En estos sectores se tirar una red tiposayo que en general tiene 6 m de dimetro, aunque puede usarse una de menortamao.

    En cada una de las cuatro muestras se cuenta el nmero de animales y se los pesa,calculando el peso medio. Se obtendr as una tabla como la que sigue:

    Muestra Nindiv. Peso medio (g)

    1 N1 W1

    2 N2 W2

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    3 N3 W3

    4 N4 W4

    PROMEDIO N W

    En base a estos datos se podr calcular la poblacin del estanque (P).

    Con la estimacin de la poblacin del estanque y el peso medio, se puede calcular labiomasa existente en el mismo, de acuerdo con la siguiente frmula:

    Biomasa= P W

    Como se puede apreciar tambin se puede estimar la supervivencia al momento derealizar el muestreo.

    4.7 ALIMENTACION EN LAS DISTINTAS ETAPAS DE CRIA

    En un sistema de cultivo semiintensivo o intensivo la alimentacin es uno de lospuntos ms crticos ya que en general, este aspecto representa entre el 45 y 60% delcosto total de produccin. En la alimentacin hay que tener en cuenta:

    a. Frecuencia

    b. Cantidad y calidad de alimento

    4.7.1 Frecuencia de alimentacin

    Es conveniente alimentar a los animales dos veces al da, en la maana y por la tarde,ya que si se suministra la racin en una oportunidad, sta no ser consumida deinmediato y por lo tanto comenzar a descomponerse, produciendo no solocontaminacin sino tambin una baja de la concentracin de oxggno disuelto,principalmente en el fondo del estanque.

    4.7.2 Calidad del alimento

    Cuando se iniciaron las actiyidades de cra de camarones en las primeras pocas eracomn suministrar alimentos naturales: as por ejemplo en los precriaderos de Japnse utilizaba carne de almeja molida (Shigeno, 1975) para alimentar P. japonicus;mientras que en los estanques de crecimiento el mismo autor obtena buenosresultados con mejilln azul y la almeja short-necked clam, tambin se utilizan y sehan usado algunas variedades de cangrejos, eufusidos, anchotas, caballa, etc. En elcaso del camarn argentino Artemesia longinaris se obtiene un buen crecimientoalimentando con trozos de calamar (Lpez y Fenucci, 1987).

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    Pero los alimentos naturales presentan el problema de la dificultad de su obtencin,debido a fluctuaciones, problemas de almacenamiento y variaciones en el precio; espor ello que desde hace ya varios aos la mayora de las investigaciones se handesarrollado para tratar de obtener una comida pelletizada, barata que permita unrpido crecimiento de los camarones en cra, y as se ancuentran a la venta distintosproductos pelletizados o con forma de lenteja.

    Para ser efectivas estas dietas (cuya calidad es muy variable) deben cumplir una seriede caractersticas:

    a. Ser estables, es decir no deben disolverse o desintegrarse para permitir unaprovechamiento ms efectivo por parte del camarn.

    b. Deben atraer a lo animales.c. Deben hundirse ya que el camarn se alimenta en el fondo.d. En lo posible se utilizarn en su fabricacin elementos de fcil obtancin en la

    regin, su costo debe ser bajo y tener un factor de conversin no mayor de 2:1.e. Fundamentalmente tendrn que producir un rpido crecimiento de los animales

    en cra con una supervivencia razonable.

    Existen infinidad de dietas experimentales y comerciales para cra de camarones,pero no se puede hablar de una dieta que sirva para todas las especies de camaronescultivables y ni siquiera para la misma especie en las distintas etapas de crecimiento.

    As por ejemplo: Penaeus stylirostris en tallas superiores a 10 g asimila mejor,proteina de origen animal (harina de calamar) que protena de soya o levadura decerveza, mientras que ejemplares de 1 a 4 g de peso asimilan igualmente proteinasde origen animal o vegetal (Fenucci et al, 1982). Para P. japonicus(Nose, 1964) se hadeterminade que asimilan con mayor eficiencia proteinas de origen animal que otrasde origen vegetal.

    Para otra importante especie como P. vannamei, Smith et al., (1985) postulan que elcrecimiento de ejemplares pequeos parece depender del nivel de protenina en ladieta, mientras que el crecimiento de los tamaos medianos y grandes parece estarms influenciado por la fuente de proteinas. En cuanto a P. setiferus, animales de msde 8 g parecen asimilar igualmente proteinas animales y vegetales (Fenucci et al.,1986); en cuanto a P.monodon Lee (1971) determino que la absorcin de proteinasanimales y vegetales se realiza con igual eficiencia.

    En trminos generales una dieta efectiva para una especie o talla no esnecesariamente buena en otras. En general todas las dietas que se encuentran en elmercado tienen proteinas tanto de origen animal como vegetal.

    Otros componentes importantes en las dietas son los cidos grasos y colesterol.Diversos experimentos realizados por ejemplo en P. stylirostris (Fenucci et al., 1981,1984), en P.japonicus (Aquacop, 1979; Guary et al., 1976; Kanazawa et al., 1977a,1978, 1979a) y en P. indicus (Read, 1981) y en el camarn argentino Artemesialonginaris (Petriella et al., 1984) demuestran la importancia de los cidos grasos de laserie linolnica (w3) en la dieta; estableciendo una relacin entre el crecimiento deestas especies y la cantidad de cidos altamente insaturados de la serie w3 en la

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    dieta (20:5 w3 y 22:6 w3). Se ha determinado tambin que en las especies decamarones marinos la sntesis de estos dos cidos a partir del cido linolnicoestaran poco desarrolladas o inhibidas (Kanazawa et al., 1977b, 1979b, Bottino et al.,1980).

    Segn las investigaoiones realizadas por Kanazawa et al., 1971; Deshimaru y Kuroki,1974 y Martinez et al., 1984 indican la necesidad mnima de este compuesto en ladieta con valores que se encuentran entre 0.5 y 2.5%.

    Si bion todas las dietas contienen complejos vitamnicos en proporciones variables,poco es lo que se conoce, aunque se ha demostrado que el complejo B es necesariopara la dieta de los crustceos; por otra parte diversos autores (Hunter et al., 1979;Lightner et al., 1979, Kitabayashi et al., 1971) han determinado la necesidad devitamina C en la alimentacin de diversas especies de camarones.

    En cuanto a los hidratos de carbono, estos son digeridos con menor eficiencia que lasproteinas (Fenucci et al., 1982; 1986) y parecen no tener la importancia de los otros

    componentes en la dieta

    En el mercado se pueden adquirir dietas pelletizadas para camarones marinos, comopor ejemplo, MR 10, MR 15, MR 20, MR 25, MR 30, MR 35, fabricadas con distintosporcentajes de protenas.

    En algunas granjas ecuatorianas se suministra a los juveniles de los precriaderos ladieta MR 35 para luego continuar alimentando en los estanques de engorde con MR25. En Estados Unidos, Texas, Chamberlain et al. (1981) utilizan durante todo elperodo de cra de P. stylirostris y P. vannamei una MR 20; mientras que en Panam(Direccin Nacional de Acuicultura, 1984) se utilizan las dietas MR 20 y MR 25.

    En Pleoticus muelleri (langostino argentino) se ha utilizado con gran xito un alimentocomercial con 40 % proteinas.

    La composicin de las dietas comerciales es de muy difcil obtencin ya queconstituye un secreto industrial, pero podemos decir que el porcentual de losprincipales componentes de una dieta vara de acuerdo con la especie entre:

    Compuesto %

    Proteinas 1565

    Carbohidratos 260

    Lpidos 28

    Celulosa 15

    Vitaminas 13

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    Humedad 312

    Para un estudio ms detallado de los problemas nutricionales de camarones peneidosse aconseja la lectura de los siguentes trabajos: New, 1976; Deshimaru, 1982;Fenucci, 1981; Kanazawa, 1982; Castell, 1982.

    4.7.3 Cantidad de alimento

    El porcentaje de alimentacin vara en el tiempo, as por ejemplo en los precriaderosde Panam se comienza alimentando a P. stylirostris y P. vannamei con el 25% de labiomasa existente, cantidad sta que se disminuye paulatinamente hasta un 3% en laetapa de cosecha (Direccin Nacional de Acuicultura Panam, 1984).

    En los casos en que se utilizan precriaderos la alimentacin debe comenzar unasemana despus de colocados los juveniles y se debe agregar alimento tratando delograr un crecimiento medio de 0.8 a 1.0 g por semana; es por ello que cada 10/15

    das se deben realizar muestreos para determinar el crecimiento (biomasa en elestanque), y de esa manera ajustar la alimentacin (Ver item 4.6)

    En cuanto a P.stylirostris y P.vannamei se comienza suministrando a animales de 1.5g de peso medio alrededor del 20% de su biomasa, 4% para camarones de 10 g y 3%para tallas superiores a los 14 g (Chamberlain et al., 1981).

    En otras reas por ejemplo Filipinas, Liu y Mancebo (1983) engordando P.monodon comienzan alimentando con el 10% de la biomasa durante los primeros 15das siguen con 8% hasta los 30 das, 6% entre los 30 y 45 das y luego de los 45 dasalimentan connel 4% de la biomasa, hasta la cosecha.

    En cuanto al langostino Pleoticus muelleri, en cultivos experimentales, se suministr aejemplares de 3 g 6% de su biomasa, ejemplares de 10 g el 3% de la misma,finalizando la cosecha de langostinos de 20 g con una alimentacin diaria de 1.4%.

    Con respecto a la alimentacin se debe tener en cuenta que el factor de conversinde las dietas deber ser inferior a 1:2 para una mayor rentabilidad en la produccin.

    4.8 COSECHA

    Para realizar esta operacin existen diversos mtodos: uno consiste en bajarpaulatinamente el nivel de agua de los estanques hasta tener una columna de aguade 2030 cm, para luego utilizar di versos tipos de redes para capturar los camarones(atarrayas, redes playeras).

    Otro mtodo consiste en vaciar parcialmente el estanque hasta el mismo nivelanterior, para luego vaciar