Laboratoire de Physiologie Animale€¦ · Universit é Mohammed V -Agdal Facult é des Sciences de...
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UniversitUniversitéé Mohammed VMohammed V-- AgdalAgdalFacultFacultéé des Sciences de Rabatdes Sciences de Rabat
Laboratoire de Physiologie AnimaleLaboratoire de Physiologie Animale
ConceptionConception :NOUZHA BOUAMOUDNOUZHA BOUAMOUD
Participation :Participation :NOUZHA RAMINOUZHA RAMI
FOUZIA BOUZOUBAAFOUZIA BOUZOUBAAIKBAL NACIRI IKBAL NACIRI
TRAVAUX PRATIQUES TRAVAUX PRATIQUES dede
PHYSIOLOGIE ANIMALEPHYSIOLOGIE ANIMALE
1) PRINCIPES DE BASE EN TP DE
PHYSIOLOGIE ANIMALE
1)1) PRINCIPES DE BASE EN TP PRINCIPES DE BASE EN TP DEDE
PHYSIOLOGIE ANIMALEPHYSIOLOGIE ANIMALE
1) Ne JAMAIS maltraiter les animaux : si l’animal réagit au cours du travail malgrél’anesthésie, compléter la dose d’anesthésique (rat) ou refaire la démédulation ou ladécérebration (grenouille).
2) Sacrifier le rat à la fin de chaque TP en sectionnant les carotides pour provoquer une hémorragie. Jeter à la poubelle spéciale l’animal après avoir vérifié qu’il est bien mort.
3) Laisser le plan de travail propre avant de quitter la salle : essuyer les traces de sang, rincer la verrerie, jeter tous les déchets
4) Se nettoyer longuement les mains et les ongles au savon avant de quitter la salle. Porter une blouse blanche pour protéger ses vêtements.
5) Bien entretenir son matériel de dissection : les petits ciseaux doivent servir exclusivement aux canulations et tout le matériel doit être soigneusement nettoyé et séché après chaque séance de TP.
2) ANESTHESIE DU RAT2) ANESTHESIE DU RAT2) ANESTHESIE DU RAT
Ethyl uréthaneEthyl uréthane
Anesthésique non réversible
Solution mère à 10 g /100 ml
Dose à injecter: 1g par Kg de rat
Type d’injection : intrapéritonéale
Produit utilisé :
La contention du rat se fait par la peau du dos qui doit être bien tendue afin de l’empêcher de tourner la tête et éviter ainsi les éventuelles morsures.
La contention du rat se fait par la peau du dos qui doit être bien tendue afin de l’empêcher de tourner la tête et éviter ainsi les éventuelles morsures.
1
2
L’aiguille doit être de bonne qualité afin de ne pas maltraiter l’animalAttention
Le plus terrorisé, c’est moi !!!Ne me fais pas mal !!!
Aiguille perpendiculaire à l’abdomenEnfoncer les deux tiers de l’aiguille
Aiguille non perpendiculaire : risque d’injection sous-cutanée
Éviter la zone des organes génitaux
Éviter de piquer au niveau du foie et de l’estomac(risques d’hémorragies internes fatales)
3) MATERIEL 3) MATERIEL 3) MATERIEL
Coton
Cathéters divers
Seringue de 1ml remplie de NaCl 9 o/oo
Fil
Gros ciseaux (peau)
Ciseaux fins (hémisections)
Pinces fines
Ne pas trop serrer les nœuds coulants autour des pattesAttention
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
4) LES CANULATIONS 4) LES CANULATIONS 4) LES CANULATIONS
A) Canulation de laVeine Jugulaire
A) Canulation de laA) Canulation de laVeine JugulaireVeine Jugulaire
Emplacement : le cou
Rôle : 2 veines jugulaires droite et gauche ramènent le sang de la tête au cœur.
Utilité de la canulation : injection intraveineuse d’une hormone ou d’un produit pour étudier ses effets
TêteTête
CœurCœur
1ère Ligature
2ème Ligature
Sens de circulationSens de circulationdu sangdu sang
Veine Jugulaire
Cathéter utilisé
1ère Ligatureserrée
2ème Ligature
3)Serrer(Double nœud)3)Serrer
(Double nœud)
1) Réaliser une hémisection1) Réaliser une hémisection
2) Introduire le cathéter dans l’ hémisection
2) Introduire le cathéter dans l’ hémisection
Attention
Ne pas enfoncer le cathéter jusqu’au cœur
1) Placer une Seringue de NaCl 9 °/001) Placer une Seringue de NaCl 9 °/00
2)Aspirer délicatement2)Aspirer délicatement
3) Renvoyer le sang dans la circulation3) Renvoyer le sang dans la circulation
4) Laisser la seringue en place4) Laisser la seringue en place
Vérification de la canulation de la jugulaireVérification de la canulation de la jugulaire
Laisser la seringue de NaCl en place pour éviter les coagulations dans le cathéterAttention
Emplacement des jugulaires
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Dilacération des graisses sous-cutanées et séparation des glandes salivaires
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Ne pas utiliser de ciseaux pour dilacérer (doigts et pinces)Attention
Jugulaire droite
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Pose d’une ligature serrée côté tête et d’une ligature en attente sous la jugulaire côté cœur
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Fil de la ligature passant sous la jugulaire
Ne pas isoler la veine des tissus sous-jacents pour la ligature côtécœurAttention
Réalisation d’une hémisection sur la jugulaire
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Introduction du cathéter dans la jugulaire
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Jugulairegauche
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Jugulaire droite canulée
B) Canulation de laTrachée Artère
B) Canulation de laB) Canulation de laTrachTrachéée Arte Artèèrere
Utilité de la canulation : soulager les problèmes respiratoires de l’animal généralement liés à l’anesthésie en lui permettant de respirer directement par trachéotomie
Emplacement : le cou
Rôle : met en relation les voies aériennes supérieures avec les poumons
Muscle sterno-hyoidien
Dilacération
La trachée artère doit être canulée uniquement dans le cas ou l’animal présente des problèmes respiratoiresau cours de la manipulation (effet de l’anesthésie).
Toutefois, cette canulation doit être préparée àl’avance : trachée artère dégagée et ligature prête à être serrée.
Attention
Muscle sterno-hyoidien entourant la trachée artère
Glandes salivaires(après dilacération)
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Dilacération àl’aide de pinces
Ouverture du muscle sterno-hyoïdien par dilacération
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Attention
Ne pas utiliser de ciseaux pour dilacérer le muscle sterno-hyoidien (risque de sectionner une carotide…)
Dégagement de la trachée artère après ouverture du muscle sterno-hyoidien
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Glande thyroïde
Pose d’une ligature en attente sous la trachée
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Fil
1
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
43
Tête
Poumons
2
hémisection
Ne pas introduire le cathéter plus de 1 cmAttention
Sens de la canulation de la trachéeSens de la canulation de la trachée
Canuler la trachée avec le bout rond du cathéter !
Poumons Tête
Canuler la trachée vers les poumons !
Ne pas enfoncer le cathéter dans les poumons !Attention
Cathéter
Serrer la ligature
C) Canulation du Canal Cholédoque
C) Canulation du Canal C) Canulation du Canal CholCholéédoquedoque
Duodénum(Anse duodénale)
Foie
Estomac
Canal cholédoque
La bile sécrétée par le foie et la sécrétion pancréatique sont déversées dans le duodénum en passant par le canal cholédoque Les nutriments issus de la digestion sont transportés de l’intestin vers le foie par la veine porte
EmplacementEmplacement
Veine porte
Pancréas
Utilité de la canulation :
Emplacement : relie le foie au duodénum en traversant le pancréas diffus.
Rôle : transport de la bile et des secrétions pancréatiques vers le duodénum
recueillir la bile sécrétée par le foie
recueillir la sécrétion pancréatique (dans ce cas l’arrivée de la bile issue du foie est interrompue par la pose d’une ligature serrée sur le cholédoque à sa sortie du foie)
Bile
Anse duodénale
Foie
Canal cholédoque
2) Charger le canal sur des pinces fines
3) Faire une hémisection sur le canal
4) Canuler en direction du foie
5) Serrer la ligature
1) Poser une ligature en attente sur le canal cholédoque
Ligature
Photo canal choledoque
Repérer l’apophyse xiphoïde qui servira de pointde départ à l’ouverture de l’abdomen sur 2 cm
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
XEmplacement de l’estomac
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Base du Foie
Estomac
DuodénumCanal cholédoque
Pancréas
Tête
QueueRéalisé avec un animal sous anesthésie générale
Ne pas manipuler le duodénum avec des pinces (risques hémorragiques)Attention
Réalisation d’une hémisection sur le canal cholédoque
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Canal cholédoque canulé
Bile progressantdans le cathéter
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
D) Canulation de la vessieD) Canulation de la vessieD) Canulation de la vessie
Utilité : mesurer la diurèse en recueillant directement les urines
Vessie
Urines
Ligature en attente
VESSIE
Cathéter
Ligature serrée autour du pénis
Ouverture de l’abdomen sur 2cm
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Ligament
Vessie
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Réalisation d’une hémisection à l’apex de la vessie
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Cathéter à embout rond
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Progression de l’urinedans le cathéter
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Ligature serrée sur le cathéter
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Vessie
Cathéter
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Vessie canulée
Vérifier que le bout du cathéter est bien libre à l’intérieur de la vessieAttention
Jugulaires
Utilité de la canulation : prélèvement de sang
Emplacement : le cou, à l’intérieur du muscle sterno-hyoïdien
Rôle : 2 artères carotides droite et gauche transportent le sang du cœur vers la tête
D)D) CanulationCanulation de la carotide de la carotide (et rep(et repéérage des nerfs vagues)rage des nerfs vagues)
Tronc vaguo-carotidien
Séparation du nerf vague et de la carotideSéparation du nerf vague et de la carotide
Tronc vaguo-carotidien
Séparation à l’aide de pinces fines
Isoler la carotide et le nerf sur un
fil et tirer délicatement pour les séparer sur au
moins 1 cmNe pas abîmer le nerf avec les pinces : fragile !!!
Attention
Dégagement de la trachée artère après ouverture du muscle sterno-hyoidien
Trachée artère
Tronc vago-carotidien
Muscle sterno-hyoidien écarté
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Carotide droite Nerf vague droit
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Séparation du nerf vague et de la carotide droits
Glisser les pinces fines fermées entre le nerf vague et la carotide
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Séparation du nerf vague et de la carotide droits
Tirer délicatement les deux fils pourséparer le nerf vague de la jugulaire
Ligature serrée
Carotide
Ligature serrée
Sens de circulationdu sang
Ligature en attente
Ne jamais oublier de poser la pince à artères avant de réaliser l’hémisection :
hémorragie immédiate et mortelle
Attention
Cathéter rempli de NaCl 9°% et bouché à son
extrémité extérieure
Pince hémostatique
Pour prélever du sang à partir d’une carotide :Pour prélever du sang à partir d’une carotide :
Sang
1) Sectionner l’extrémitédu cathéter
1) Sectionner l’extrémitédu cathéter
3) Prélever le sang dans un tube3) Prélever le sang dans un tube
2) Ouvrir la pince hémostatique2) Ouvrir la pince hémostatique
4) Refermer la pince hémostatique4) Refermer la pince hémostatique
Carotide
Tête
Ligature serrée
1
Pince hémostatique
3
Ligatureen attente
2
Carotide droite
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Réalisation d’une hémisection sur la carotide droite
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
Hémisection
Cathéter(rempli de NaCl 9 °%)
Canulation de la carotide droite
1) Serrer la ligature sur le cathéter
Réalisé avec un animal sous anesthésie générale
2) Ouvrir la pince hémostatique
3) Recueillir un échantillon de sang
Le sang restant dans le cathéter après prélèvement doit être renvoyé dans la circulation
générale à l’aide d’une seringue afin d’éviter toute coagulation au
sein du cathéter
Attention
Avancée du sang dans le cathéter
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