Genetyka i biologia eksperymentalna do przedmiotów... · Prof. dr hab. Beata Zagórska-Marek, dr...
-
Upload
vuongxuyen -
Category
Documents
-
view
216 -
download
0
Transcript of Genetyka i biologia eksperymentalna do przedmiotów... · Prof. dr hab. Beata Zagórska-Marek, dr...
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
Załącznik nr 5
SYLABUSY DO PRZEDMIOTÓW OBOWIĄZKOWYCH
1. Filozofia nauk przyrodniczych
2. Philosophy of natural sciences
3. Wydział Nauk Społecznych, Instytut Filozofii
4. Zgodny z USOS
5. obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów II
9. Semestr IV
10. wykład 20 godz., konwersatorium 10 godz.
11. dr Zbigniew Pietrzak
12. Wymagania wstępne: podstawowa zdolność do interdyscyplinarnego postrzegania
omawianych problemów
13.
Cele przedmiotu: poznanie i zrozumienie zależności między różnymi dyscyplinami
przyrodniczymi oraz zależności między dyscyplinami przyrodniczymi a filozofią na
poziomie umożliwiającym interdyscyplinarną pracę ze specjalistami innych dziedzin
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna i w sposób kompleksowy wyjaśnia główne stanowiska w
zakresie współczesnej filozofii nauk przyrodniczych; potrafi
definiować podstawowe pojęcia z zakresu współczesnej filozofii nauk
przyrodniczych i wskazać ich ewentualne źródło w naukach
przyrodniczych.
Student na podstawie dotychczasowej wiedzy przyrodniczej oraz
nabytej wiedzy filozoficznej potrafi wskazać na filozoficzne
(pozaprzyrodnicze) implikacje treści nauk przyrodniczych i ich roli
we współczesnej wiedzy naukowej; potrafi identyfikować i
przedyskutować podstawowe problemy współczesnej filozofii nauk
przyrodniczych.
Student potrafi wypowiadać się w kwestiach istotnych dla
rozumienia współczesnych problemów wynikających z rozwoju nauk
przyrodniczych – w ich filozoficznych, społecznych i kulturowych
aspektach; rozumie odrębność i przydatność filozoficznej
interpretacji nauk przyrodniczych i potrafi argumentować na rzecz
własnego stanowiska;
K_W01
K_U07
K_K01
15.
Treści programowe:
Wprowadzenie do przedmiotu – charakterystyka podstawowych dziedzin filozofii i ich
wzajemnych powiązań; Teoretyczne i filozoficzne ujęcie współczesnych nauk
przyrodniczych. Filozoficzne rozumienie funkcji, struktury, treści nauk przyrodniczych;
Specyfika nauk biologicznych – jej przedmiotowe, metodologiczne i filozoficzne źródła;
Geneza oraz podstawowe problemy współczesnych nauk przyrodniczych – kryteria
demarkacji, status praw/twierdzeń naukowych; Funkcja, cechy i status eksperymentów
we współczesnych naukach przyrodniczych; Znaczenie kategorii prawdy w naukach
przyrodniczych. Wielość koncepcji, definicji i teorii prawdy; Struktura, cechy,
filozoficzne implikacje pojęcia „teorii” w naukach przyrodniczych na podstawie teorii
ewolucji
16.
Zalecana literatura:
– konwersatoria – wybrane rozdziały z następujących pozycji: T. Kuhn, Struktura
rewolucji naukowych; E. Mayr, To jest biologia; I. Hacking, [w:] „Nowy
eksperymentalizm”; K.R. Popper, Nieustanne poszukiwania; J. Woleński,
Epistemologia.
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
– wykłady – zostanie podana na pierwszym wykładzie.
17.
Forma zaliczenia:
- wykład: zaliczenie na podstawie odpowiedzi ustnej (trzy pytania, na ocenę
dostateczną wymagana poprawna odpowiedź na jedno pytanie); (K_W01; K_U07;
K_K01)
- konwersatorium: zaliczenie na podstawie obecności i aktywności na zajęciach
(K_W01; K_U07; K_K01)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- konwersatoria:
20
10
Praca własna studenta:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do zaliczenia:
20
10
Suma godzin 60
Liczba punktów ECTS 2
1. Genetyczno-molekularne podstawy rozwoju roślin
2. Molecular genetics of plant development
3. WNB, IBE, Zakład Biologii Rozwoju Roślin
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów: II
8. Rok studiów: I
9. Semestr: II
10. Wykład 15 godz., laboratorium 30 godz.
11. Prof. dr hab. Beata Zagórska-Marek, dr Alicja Dołzbłasz, dr Katarzyna Sokołowska, dr
Alicja Banasiak.
12. Wymagania wstępne: Podstawowe wiadomości z biologii rozwoju roślin
13. Cele przedmiotu: zapoznanie studenta z najnowszymi osiągnięciami genetyki
molekularnej odnoszącymi się do morfogenezy roślin
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student rozumie znaczenie roślin modelowych w badaniach
naukowych i zna podstawowe zasady fenotypowania.
Charakteryzuje cechy makro- i mikromorfologiczne u roślin typu
dzikiego oraz u mutantów; interpretuje znaczenie badanych
genów dla powstania fenotypu. Student zna podstawy
genetycznej i molekularnej regulacji funkcjonowania
merystemów wierzchołkowych pędu i mechanizmy specyfikujące
tożsamość komórek. Student zna zasady tworzenia planu
budowy rośliny w oparciu o regulowaną w czasie i przestrzeni
ekspresję genów, a także znaczenie interakcji między
K_W02
K_W03
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
poszczególnymi genami w procesach formowania różnych
struktur roślinnych.
Student potrafi wykorzystywać mikroskop świetlny i
fluorescencyjny; wykonywać zadania badawcze; dbając o
porządek oraz sprzęt; potrafi interpretować uzyskane wyniki i
wyciągać wnioski.
Student jest otwarty na współpracę w grupie, kreatywny, zdolny
do wyciągania wniosków i logicznego myślenia.
K_U01
K_U06
K_K03
15.
Treści programowe:
Zasada powstawania planu budowy ciała rośliny, w oparciu o pierwotną segmentację
apikalno-bazalną, radialną i grzbieto-brzuszną. Tożsamość segmentów i określanie
kierunku ich różnicowania poprzez ekspresję specyficznych genów. Organografia,
wzory tkankowe i komórkowe. Mechanizmy dyfuzji-reakcji. Mutacje homeotyczne w
zarodkach, organach wegetatywnych i generatywnych. Podstawa genetyczna tworzenia
struktur chiralnych. Genetyczna regulacja płci u paprotników i roślin nasiennych.
Nieśmiertelność komórek macierzystych jako strategia przeciwstawna programowanej
śmierci komórkowej. Rola wybranych genów w powstawaniu i rozwoju aparatów
szparkowych. Powiązanie podstaw fenomiki i wizualizacji ekspresji genów do badania
ich funkcji w rozwoju roślin.
16.
Zalecana literatura:
wybrane zagadnienia z następujących pozycji literaturowych: Coen E. (1999) The
Art of Genes.How Organisms Make Themselves. Oxford University Press. Oxford,
New York. Howell S.H. (2000). Molecular Genetics of Plant Development. Cambridge
University Press. Cambridge, New York. Hejnowicz Z. (2002). Anatomia i
histogeneza roślin naczyniowych. Organy wegetatywne. Wydawnictwo Naukowe
PWN. Warszawa. Leyser O., Day S. (2003). Mechanisms in Plant Development.
Blackwell Publishing Ltd. Turnbull C.G.N. (Red.). (2005). Plant Architecture and its
Manipulations. Annual Plant Reviews. V. 17. Blackwell Publishing Ltd. CRC Press.
Wojtaszek P., Woźny A., Ratajczak L. (Red.) (2006-7). Biologia komórki roślinnej.
T.1 Struktura i T.2 Funkcja. Państwowe Wydawnictwo Naukowe. Warszawa.
Literatura oryginalna.
17.
Forma zaliczenia:
Wykład: egzamin pisemny (K_W02, K_W03);
laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W02, K_W03, K_U01, K_U06) i
aktywności na zajęciach (K_U01, K_U06, K_K03).
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- laboratorium:
15
30
Praca własna studenta, np.:
- przygotowanie do ćwiczeń:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do egzaminu:
10
15
20
Suma godzin 90
Liczba punktów ECTS 3
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
1. Hodowle komórek zwierzęcych
2. Animal cell cultures
3. WNB, Katedra Fizjologii i Neurobiologii Molekularnej
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr – I
10. Wykład 15 godz.
11. dr hab. Agnieszka Gizak
12. Wymagania wstępne: podstawowa wiedza z genetyki, biochemii i biologii komórki
13.
Cele przedmiotu:
Poznanie metod zakładania i prowadzenia hodowli komórek zwierzęcych; poznanie
czynników i sygnałów biologicznych umożliwiających przeżycie i rozmnażanie się
tych komórek in vitro. Zapoznanie się ze współczesnymi sposobami hodowli
komórkowych i tkankowych oraz z ich zastosowaniami w biotechnologii,
bioinżynierii i medycynie.
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna wymagania sprzętowe pracowni hodowli
komórkowych, potrafi opisać zastosowanie znajdującej się tam
aparatury laboratoryjnej; umie określić czynniki niezbędne do
zapewnienia komórkom w hodowli warunków zbliżonych do tych in
vivo i rozumie znaczenia takiego postępowania; rozumie
biologiczne mechanizmy i sygnały regulujące przeżycie i
rozmnażanie się komórek zwierzęcych in vitro; potrafi opisać
wzajemne zależności między róznymi typami komórek w hodowli;
zna techniki zakładania i prowadzenia hodowli komórek
zwierzęcych; zna współczesne narzędzia badawcze pozwalające
wykorzystać potencjał hodowli komórkowych; ma wiedzę na temat
zastosowań hodowli komórkowych i tkankowych w biotechnologii,
bioinżynierii i medycynie oraz na temat uwarunkowań etycznych i
ekonomicznych wpływających na możliwości upowszechnienia
najnowszych odkryć w tej dziedzinie. Potrafi korzystać ze
specjalistycznej literatury naukowej; dysponuje pogłębioną wiedzą
z zakresu zwierzęcych kultur in vitro.
K_W02
K_W03
K_W09
K_W10
K_U02
K_K05
15.
Treści programowe:
Techniki pracy aseptycznej; Czynniki i sygnały biologiczne umożliwiające przeżycie i
rozmnażanie się komórek ssaczych in vitro; Hodowle komórkowe ciągłe –
wyprowadzanie hodowli, metody transformacji komórek komórek ssaczych;
Hodowle komórkowe pierwotne z eksplantów tkankowych; Hodowle komórkowe 3D;
Współczesne sposoby hodowli komórek; Komórki macierzyste i hybrydowe;
Hodowle tkankowe; Zastosowanie hodowli komórek i tkanek zwierzęcych we
współczesnej biotechnologii, bioinżynierii i medycynie oraz związane z tym
problemy etyczne i ekonomiczne.
16.
Zalecana literatura:
„Hodowla komórek i tkanek” S. Stokłosa, PWN, 2006; publikacje naukowe
przekazane przez prowadzącego
17. Forma zaliczenia
wykład: zaliczenie na podstawie testu (K_W02, K_W03, K_W09, K_W10; K_U02;
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
K_K05); obowiązkowa obecność na wykładzie
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
15
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zaliczenia:
15
Suma godzin 30
Liczba punktów ECTS 1
1. Immunologia ogólna
2. General immunology
3. WNB, IGiM, Zakład Biologii Patogenów i Immunologii
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr I
10. Wykład 30 godz., laboratorium 30 godz.
11. Dr Daria Augustyniak
12. Wymagania wstępne: Student posiada wiedzę podstawową z zakresu biochemii,
mikrobiologii i genetyki niezbędną do zrozumienia immunologii
13. Cele przedmiotu: Celem przedmiotu jest zapoznanie studenta z budową i
funkcjonowaniem układu odpornościowego człowieka
14. Zakładane efekty kształcenia:
Student definiuje podstawowe pojęcia z dziedziny immunologii
takie jak np. odporność wrodzona i nabyta, restrykcja MHC itp,
rozumie podstawy funkcjonowania układu odpornościowego oraz
negatywne skutki jego wadliwego działania; zna działanie
nieswoistych i swoistych mechanizmów obronnych naszego
organizmu oraz ich wzajemną kooperację,
Umie się posługiwać podstawowymi technikami
immunologicznymi, umie zaprojektować proste eksperymenty
immunologiczne i dokonać analizy uzyskanych wyników i na tej
podstawie przygotować pracę pisemną.
Współpracuje z zespołem i postępuje zgodnie z zasadami
bezpieczeństwa i higieny pracy
K_W01
K_W02
K_W06
K_U04
K_U06
K_U09
K_K02
K_K06
15. Treści programowe:
Budowa układu immunologicznego; Rozpoznawanie patogenów w odpowiedzi
nieswoistej; Budowa i funkcje receptorów rozpoznających antygeny w odpowiedzi
swoistej; Generowanie różnorodności przeciwciał i receptorów TCR; Dojrzewanie
limfocytów T i B; Mechanizmy odporności nieswoistej i swoistej oraz ich wzajemna
kooperacja; Przełamywanie mechanizmów obrony przez mikroorganizmy
Regulacja odpowiedzi immunologicznej; Zastosowanie metod immunologicznych w
diagnostyce mikrobiologicznej; Teoretyczne i praktyczne poznanie metod
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
stosowanych do oceny funkcjonowania układu odpornościowego: (1) ocena
właściwości fagocytarnych wybranych komórek żernych, (2) ocena aktywności
układu dopełniacza, (3) ocena stężenia antygenów w materiale biologicznym
immunoenzymatyczną metodą ELISA.
16. Zalecana literatura:
Gołąb J, Jakóbisiak M, Lasek W, Stokłosa T. Immunologia. PWN, 2011, (wybrane
rozdziały); Abbas A, Lichtman A., Pillai S. Cellular and Molecular Immunology, 6th
edition, Saunders Elsevier, 2006 (wybrane rozdziały); Immunochemia w biologii
medycznej. Metody laboratoryjne. Podręcznik pod red. I. Kątnik-Prastowskiej, PWN
2009. (wybrane rozdziały)
17. Forma zaliczenia:
Wykład: egzamin w formie testu (K_W01, K_W02, K_W06)
Laboratorium: zaliczenie na podstawie pracy pisemnej (K_W01, K_W02, K_W06,
K_U09) i aktywności na zajęciach (K_U04, K_U06, K_K02; K_K06)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć z nauczycielem:
- wykład:
- laboratorium:
30
30
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć
- opracowanie raportu z zajęć
- przygotowanie do egzaminu:
5
10
35
Suma godzin 110
Liczba punktów ECTS 4
1. Język obcy nowożytny (angielski): B2+
2. Foreign language course (English): B2+
3. Studium Praktycznej Nauki Języków Obcych, UWr
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr II
10. Konwersatorium 60 godz.
11. Zespół lektorów języka angielskiego
12. Wymagania wstępne: biegłość językowa na poziomie B2 zgodnie ze skalą
Europejskiego Systemu Opisu Kształcenia Językowego
13. Cele przedmiotu: biegłość językowa na poziomie B2+
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna słownictwo z szerokiego zakresu tematów z
uwzględnieniem słownictwa specjalistycznego związanego z
kierunkiem studiów;
Wykorzystuje poznane słownictwo specjalistyczne w dyskusjach
tematycznych i sytuacjach zawodowych; potrafi rozwijać i
przekonująco uzasadniać własne poglądy, rozumie specjalistyczne
K_U08
K_U09
K_U10
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
artykuły z zakresu studiowanej dziedziny; rozumie sens wykładów
lub konferencji;
Student jest aktywny na zajęciach z języka angielskiego, jest
świadomy znaczenia poznania języka specjalistycznego ze swojej
dziedziny, kreatywny i otwarty na współpracę w grupie
K_K01
15.
Treści programowe:
Każdorazowo zalecane przez lektora tematy dotyczące wiedzy ogólnej i
specjalistycznej pozwalające na ocenę postępów w kształceniu językowym
16. Zalecana literatura:
Materiały wybrane przez lektora; internet; platform językowa
17.
Forma zaliczenia:
Konwersatorium: egzamin w formie sprawdzianu praktycznego (K_U08; K_U09;
K_U10); ocena aktywności na zajęciach (K_U08; K_U09; K_U10; K_K01)
18. Język wykładowy: angielski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć z nauczycielem:
- konwersatorium:
60
Praca własna studenta :
- przygotowanie do zajęć:
- przygotowanie do zaliczenia:
20
20
Suma godzin 100
Liczba punktów ECTS 4
1. Metabolizm
2. Metabolism
3. WNB, IBE, Zakład Fizjologii Molekularnej Roślin oraz Katedra Fizjologii i
Neurobiologii Molekularnej
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów: II
8. Rok studiów: I
9. Semestr: I
10. wykład 30 godz., seminarium 30 godz.
11. prof. dr hab. Grażyna Kłobus, dr hab. prof. Dariusz Rakus, dr Agnieszka Sok-
Grochowska, dr Ewa Młodzińska
12. Wymagania wstępne: podstawowy zakres wiedzy z biochemii, biofizyki i biologii
komórki
13. Cele przedmiotu: uzyskanie wiedzy o organizacji, regulacji oraz zaburzeniach
wybranych szlaków metabolicznych
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna podstawy termodynamiki i kinetyki enzymatycznej; ma
wiedzę dotyczącą reakcji i składu enzymatycznego wybranych
procesów metabolicznych. Ma wiedzę dotyczącą znaczenia
izoenzymów, ich subkomórkowej i tkankowej dystrybucji, tworzenia
wieloenzymatycznych kompleksów oraz zaburzeń metabolizmu; ma
wiedzę na temat wielofunkcyjności niektórych enzymów.
K_W02
K_W03
K_W06
K_U02
K_U03
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
Student wykorzystuje materiały źródłowe tradycyjne i elektroniczne
do opisu i dyskusji problemów związanych z funkcjonowaniem
szlaków metabolicznych (regulacja, zaburzenia); Student analizuje
dane pochodzące z różnych źródeł, poprawnie wnioskuje i interpretuje
zjawiska oraz procesy metaboliczne.
Student dostrzega potrzebę stałego pozyskiwania i uzupełniania
wiedzy przyrodniczej oraz jest świadomy potrzeby podnoszenia
kwalifikacji zawodowych
K_U07
K_K01
K_K05
15.
Treści programowe:
Podstawowe pojęcia termodynamiki, podstawy kinetyki enzymatycznej, sposoby
regulacji aktywności enzymów w komórce zwierzęcej, tworzenie
wieloenzymatycznych kompleksów, zjawisko tunelowania; metabolizm
węglowodanów, białek, tłuszczów i kwasów nukleinowych w komórkach
zwierzęcych; uzyskiwanie energii w warunkach tlenowych i beztlenowych;
wielofunkcyjność enzymów metabolizmu węglowodanów w komórkach zwierzęcych;
metabolizm węglowodanów roślinnych (synteza i degradacja skrobi, sacharozy,
fruktanów oraz polisacharydów ściany komórkowej; regulacja szlaków);
klasyfikacja i budowa związków lipidowych, synteza kwasów tłuszczowych i
tłuszczów prostych (woski, suberyna i kutyna, ciała oleiste), szlak prokariotyczny i
eukariotyczny syntezy błonowych tłuszczowców złożonych; metabolizm białek w
komórkach roślinnych - zaburzenia metaboliczne, sekwencje sygnaturowe, typy i
etapy ubikwitynacji białek – udział kompleksu enzymatycznego E1,E2 i E3,
proteasomy: budowa i mechanizm degradacji białek
16.
Zalecana literatura:
“Biochemistry and Molecular Biology of Plants” - Buchanan B.B. i in. 2000, pp. 412
-454 i 456 - 526; „Biochemia”, J.M. Berg, L. Stryer, J. L. Tymoczko, PWN 2005 (lub
nowsze wydanie)
17.
Forma zaliczenia
wykład: egzamin pisemny (K_W02, K_W03, K_W06)
seminarium: zaliczenie na podstawie projektu (K_U02, K_U03, K_U07; K_K01,
K_K05); pracy pisemnej (K_W02, K_W03, K_W06) i prezentacji (K_W03, K_W06;
K_U02; K_K01)
laboratorium: zaliczenie na podstawie pracy pisemnej (K_W03, K_W06, K_U03,
K_U07)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- seminarium:
30
30
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do egzaminu:
20
20
20
Suma godzin 120
Liczba punktów ECTS 4
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
1. Molekularna regulacja wzrostu roślin
2. Molecular regulation of plant growth
3. WNB, IBE, Zakład Fizjologii Molekularnej Roślin
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr I
10. wykład 15 godz., laboratorium 25 godz.
11. dr hab. Katarzyna Kabała, dr Ewa Młodzińska, dr Małgorzata Reda
12. Wymagania wstępne: wiedza z fizjologii roślin i biologii molekularnej roślin
13.
Cele przedmiotu: uzyskanie wiedzy o procesach fizjologicznych zachodzących w
czasie różnych etapów wzrostu i rozwoju rośliny oraz ich regulacji przez hormony
roślinne i czynniki zewnętrzne
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna hormonalną transdukcję sygnału w roślinach (synteza,
transport, receptory). Zna molekularne podłoże działania
morfogenetycznych receptorów światła (przyjęcie bodźca,
przeniesienie sygnału, zmiany właściwości błon i ekspresji genów).
Wskazuje udział fitohormonów i światła w różnych etapach
ontogenezy rośliny.
Student wykorzystuje różne biotesty do wykazania zróżnicowanego
działania fitohormonów. Wylicza parametry wzrostowe. Na
podstawie oznaczania wybranych aktywności ocenia możliwości
wzrostu i rozwoju roślin. Korzysta z materiałów źródłowych.
Student przeprowadza obiektywną autoocenę własnej pracy. Jest
dokładny i obowiązkowy. Potrafi pracować w grupie. Jest świadomy
potrzeby bezpiecznej pracy w laboratorium i dbałości o sprzęt
pomiarowy.
K_W03
K_W04
K_U02
K_U06
K_K02
K_K06
15.
Treści programowe:
Molekularny mechanizm działania hormonów roślinnych - synteza, regulacja
poziomu, receptory (auksyny, gibereliny, cytokininy, brasinosteroidy, etylen, ABA,
jasmoniany, salicylany). Molekularne działanie morfogenetycznych receptorów
światła (fitochrom, kryptochrom, fototropiny). Biotesty wykazujące zróżnicowane
działanie hormonów. Różne metody hodowli i pomiaru wzrostu roślin. Parametry
wzrostowe. Mutanty z zaburzoną syntezą lub percepcją hormonów.
16.
Zalecana literatura:
Taiz L, Zeiger E, Plant Physiology, 2010, Sinauer Associates, Inc., wydanie V,
rozdziały: 14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26; Kopcewicz J, Lewak S,
Fizjologia Roślin, 2012, PWN, str. 143-198 i 474-633
17.
Forma zaliczenia:
wykład: zaliczenie na podstawie testu (K_W03, K_U02)
laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W03, K_U02), aktywności na
zajęciach (K_U06, K_K02, K_K06) i pracy pisemnej (K_W04, K_U06)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
z nauczycielem:
- wykład:
- laboratorium:
15
25
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć:
- opracowanie wyników:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do testów:
5
10
10
20
Suma godzin 85
Liczba punktów ECTS 3
1. Molekularne mechanizmy komunikacji u roślin
2. Molecular mechanisms of communication in plants
3. WNB, IBE, Zakład Biologii Rozwoju Roślin
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów: II
8. Rok studiów: II
9. Semestr: III
10. Wykład 15 godz., laboratorium 15 godz., konwersatorium 15 godz.
11. dr Katarzyna Sokołowska, dr Alicja Banasiak, dr Alicja Dołzbłasz, dr Elżbieta
Myśkow
12. Wymagania wstępne: podstawowe wiadomości z biologii rozwoju i fizjologii roślin
13. Cele przedmiotu: Poznanie szlaków komunikacji krótko- i długodystansowej oraz
zrozumienie ich znaczenia dla zintegrowanego rozwoju i funkcjonowania rośliny
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna szlaki komunikacji krótko- i
długodystansowej u roślin oraz mechanizmy ich
regulacji na poziomie molekularnym; rozumie
ich znaczenie w prawidłowym rozwoju i
funkcjonowaniu organizmów roślinnych. Zna
narzędzia badawcze wykorzystywane do analizy
szlaków komunikacji międzykomórkowej u
roślin.
Potrafi scharakteryzować komunikację
symplastową i apoplastową, rozumie znaczenie
pasm floemowych i ksylemowych w sygnalizacji
dalekiego zasięgu, a także rolę auksyny w
integracji organizmu roślinnego. Potrafi
zaplanować i przeprowadzić eksperymenty
wyciągając z nich wnioski;
Odczuwa potrzebę studiowania materiałów
naukowych i poszerzania swojej wiedzy
K_W01
K_W03
K_W09
K_U01
K_U06
K_K05
15.
Treści programowe:
Ultrastruktura plazmodezm, regulacja transportu symplastowego, rola kalozy w
komunikacji krótko- i długodystansowej, floemowe cząsteczki sygnalizacyjne,
znaczenie ściany komórkowej dla sygnalizacji apoplastowej, regulacja dystrybucji
auksyny w procesach rozwojowych i jej znaczenie dla komunikacji
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
międzykomórkowej.
16.
Zalecana literatura:
Hejnowicz Z. Anatomia i histogeneza roślin naczyniowych. PWN. 2002. – wybrane
rozdziały; Sokołowska K, Sowiński P [red], Symplasmic Transport in Vascular
Plants. Springer Science+Business Media. 2013 – wybrane rozdziały.
17.
Forma zaliczenia:
wykład: egzamin w formie testu (K_W01, K_W03, K_W09)
laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W01, K_W03, K_W09),
konwersatorium: zaliczenie na podstawie prezentacji (K_W01, K_W03, K_U02)
iaktywności na zajęciach (K_W03, K_W09, K_U01, K_U06, K_K05)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- laboratorium:
- konwersatorium:
15
15
15
Praca własna studenta, np.:
- przygotowanie do zajęć
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do egzaminu:
10
10
15
Suma godzin 80
Liczba punktów ECTS 3
1. Molekularne mechanizmy różnicowania komórek i tkanek
2. Molecular differentiating mechanisms of cells and tissues
3. WNB, IBE, Zakład Biologii Rozwoju Zwierząt
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów: II
8. Rok studiów: II
9. Semestr III
10. Wykład 15 godz., konwersatorium 30 godz.
11.
dr hab. prof. Małgorzata Daczewska, dr hab. Bożena Simiczyjew, dr Izabela
Jędrzejowska, dr Marta Mazurkiewicz-Kania, dr Arnold Garbiec, dr Magda
Dubińska-Magiera, dr Marta Migocka-Patrzałek
12. Wymagania wstępne : Podstawowy zakres wiadomości z biochemii, genetyki,
biologii komórki i biologii rozwoju.
13. Cele przedmiotu: Student zapoznaje się z molekularnymi i cytologicznymi
mechanizmami wybranych procesów rozwojowych.
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna przebieg wybranych procesów
rozwojowych,
rozumie mechanizmy różnicowania wybranych komórek
i tkanek, zna przebieg i aspekt molekularny
różnicowania mięśni szkieletowych; znaczenie komórek
K_W01
K_W02
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
macierzystych; mechanizmy migracji komórek;
molekularne mechanizmy śmierci komórkowej.
Student potrafi wyjaśnić: molekularne mechanizmy
migracji komórek, rolę komórek macierzystych w
procesach odnowy komórkowej; potrafi wyjaśnić
przebieg i molekularny mechanizm różnicowania się
mięśni szkieletowych; molekularne mechanizmy śmierci
komórkowej.
Student ma potrzebę uzupełniania wiedzy na temat
molekularnych i cytologicznych mechanizmów
różnicowania komórek i tkanek
K_U02
K_K01
15.
Treści programowe:
Molekularne mechanizmy różnicowania wybranych komórek i tkanek;
przebieg i molekularny mechanizm różnicowania mięśni szkieletowych; komórki
macierzyste; mechanizmy migracji komórek; molekularne mechanizmy śmierci
komórkowej
16.
Zalecana literatura:
Podstawy embriologii zwierząt – Jura, Klag (red.) PWN W-wa 2005,
Developmental biology – Scott F. Gilbert Sinauer Associates 2000, Molecular
Prace przeglądowe udostępnione przez prowadzących
17.
Forma zaliczenia:
Wykład: egzamin w formie testu (K_W01; K_W02); warunkiem uzyskania
zaliczenia jest obecność na 5 wykładach.
konwersatorium: zaliczenie na podstawie prezentacji (K_U02, K_K01)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- konwersatorium
15
30
Praca własna studenta
- przygotowanie do zajęć:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do egzaminu:
15
15
15
Suma godzin 90
Liczba punktów ECTS 3
1. Neurobiologia komórkowa
2. Cellular neurobiology
3. WNB, Katedra Fizjologii i Neurobiologii Molekularnej
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr II
10. Wykład: 20 godz., seminarium: 10 godzin
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
11. Prof. dr hab. Jerzy Mozrzymas, dr Dominika Drulis-Fajdasz
12. Wymagania wstępne: podstawowa wiedza z biologii komórki, fizjologii i biochemii
13.
Cele przedmiotu: zrozumienie podstawowych mechanizmów funkcjonowania
ośrodkowego układu nerwowego na poziomie molekularnym, komórkowym, sieci
neuronalnych i kognitywnym
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna mechanizmy pobudliwości komórek pobudliwych i
potrafi określić rolę poszczególnych kanałów jonowych w tym
procesie. Zna podstawowe techniki elektrofizjologiczne, służące
do opisu pobudliwości i potrafi określić zakres stosowalności
poszczególnych metod. Potrafi zastosować podstawowe
zależności ilościowe do opisu zjawisk pobudliwości neuronalnej.
Student rozumie mechanizmy transmisji synaptycznej
pobudzającej i hamującej oraz potrafi wnioskować na tej
podstawie o funkcjach logicznych lokalnych sieci neuronalnych.
Zna podstawowe rodzaje pamięci i potrafi wskazać
doświadczenia behawioralne, w których mogą być one badane.
Potrafi opisać podstawowe mechanizmy molekularne i
komórkowe, odpowiedzialne za tworzenie śladów pamięciowych
w neuronach ze szczególnym uwzględnieniem zjawisk
plastyczności synaptycznej. Korzysta z materiałów źródłowych.
Ćwiczenia seminaryjne umożliwią studentowi praktyczne
wykorzystanie wiedzy uzyskiwanej na wykładach poprzez
rozwiązywanie konkretnych problemów w formie doświadczeń
neurofizjologicznych in silico (symulacje komputerowe),
rozwiązywanie zadań problemowo-obliczeniowych oraz
samodzielnie przygotowane prezentacje wybranych problemów
neurobiologii w postaci krótkich wystąpień seminaryjnych.
K_W01
K_W02
K_W05
K_U02
K_U05
K_U07
K_K01
K_K02
15.
Treści programowe:
Transmisja synaptyczna i jej modulacja homeostatyczna, rozwojowa i
farmakologiczna. Hamowanie fazowe i toniczne. Opis struktury i funkcji sieci
neuronalnych kory mózgowej i hipokampa w kontekście funkcji kognitywnych i
sensorycznych. Podstawowe rodzaje pamięci oraz doświadczeń behawioralnych
pozwalających na opis uczenia się i zapamiętywania w określonych
paradygmatach. Omówienie podstawowych mechanizmów tworzenia śladów
pamięciowych na poziomie molekularnym i komórkowym w nawiązaniu do
obserwacji w doświadczeniach behawioralnych. Zjawiska plastyczności
synaptycznej i neuroplastyczności – podstawowe mechanizmy molekularne i
komórkowe oraz implikacje kognitywne.
16.
Zalecana literatura:
„Podstawy biologii komórki”, Alberts i in., PWN 2005;„Neurobiologia” Longstaff A,
PWN 2005;„Principles of neural science”, Kandel E.R, Schwarz J.H, Jessel T.M,
McGraw-Hill 2000; „Wybrane zagadnienia z biofizyki”, Miękisz S, Hendrich A,
Volumed 1998;“Neuroscience”, Bear M.F., Connors B.W., Paradiso M.A.
(2007);“Ion channels – from structure to function” Kew J, Davies K, Oxford 2010.
– wybrane rozdziały
17.
Forma zaliczenia:
wykład: egzamin w formie testu (K_W01; K_W02)
seminarium: zaliczenie na podstawie prezentacji (K_U02; K_U05; K_U07; K_K01),
projektu (K_W05; K_U05; K_K01; K_K02) i testu (K_W01; K_W02)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- seminarium:
20
10
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do egzaminu:
10
10
10
Suma godzin 60
Liczba punktów ECTS 2
1. Podstawy przedsiębiorczości
2. Introduction to business management
3. Wydział Prawa, Administracji i Ekonomii
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów: II
8. Rok studiów: I
9. Semestr: I
10. Wykład 15 godz.
11. Prof. dr hab. Urszula Kalina-Prasznic
12. Wymagania wstępne: brak
13.
Cele przedmiotu: pozyskanie wiedzy związanej z formalnymi wymogami podjęcia
działalności na własny rachunek oraz jej uwarunkowaniami ekonomiczno-
prawnymi.
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student rozumie pojęcia i zasady z zakresu ochrony własności
przemysłowej i prawa autorskiego oraz konieczność zarządzania
zasobami własności intelektualnej, potrafi korzystać z zasobów
informacji patentowej. Zna ogólne zasady tworzenia i rozwoju form
indywidualnej przedsiębiorczości wykorzystującej wiedzę z zakresu
genetyki i biologii eksperymentalnej
Wykazuje umiejętność krytycznej oceny danych pochodzących z
różnych źródeł, formułuje i uzasadnia własne opinie na ich
podstawie; Samodzielnie planuje własną karierę zawodową i
naukową.
Wykazuje inicjatywę i samodzielność w działaniu wdrażając zasady
przedsiębiorczości w pracy.
K_W12
K_W13
K_U07
K_K07
15.
Treści programowe:
Poznanie form organizacyjno-prawnych prowadzenia działalności gospodarczej;
poznanie prawnej regulacji zasady swobody prowadzenia działalności
gospodarczej; zrozumienie roli umów w obrocie gospodarczym /umowy nazwane i
nienazwane/; poznanie przejawów przestępczości menedżerskiej; poznanie form
nieuczciwej konkurencji, ochrona własności przemysłowej, prawo autorskie
16.
Zalecana literatura:
P. Harosz, J. R. Antkowiak, Prawne podstawy przedsiębiorczości, Oficyna a Wolters
Kluwer busieness, Warszawa, 2007, T. Szymanej, Swoboda działalności
gospodarczej, Warszawa 2010, C. Kosikowski, Przedsiębiorca w prawie polskim na
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
tle prawa europejskiego, Warszawa 2003.
17. Forma zaliczenia:
Wykład: zaliczenie na podstawie testu (K_W12; K_W13; K_U07;; K_K07)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
15
Praca własna studenta, np.:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do zaliczenia:
10
20
Suma godzin 45
Liczba punktów ECTS 2
1. Postępy w genetyce i biologii eksperymentalnej
2. Progress in genetics and experimental biology
3. WNB, IBE
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów: II
8. Rok studiów: I, II
9. Semestr: I, II, III, IV
10. seminarium 120 godzin (30 godzin na semestr)
11. pracownicy Instytutu Biologii Eksperymentalnej
12. Wymagania wstępne: brak
13. Cele przedmiotu: wykorzystywanie literatury naukowej do badań własnych
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student wie jak korzystać ze światowej literatury naukowej,
zna zasady pisania i edycji pracy naukowej oraz
przygotowywania prezentacji. Zna zasady przeglądania baz
czasopism i baz danych. Zna zgodne z prawem sposoby
wykorzystania wyszukanych informacji. Rozumie znaczenie
dyskusji tematycznej.
Student wykorzystuje najnowszą literaturę naukową do
opracowania i przedstawienia tematów dotyczących bieżących
badań i osiągnięć naukowych. Wybiera najlepszy sposób jego
omówienia i prezentacji. Prowadzi dyskusję wokół
przedstawianego tematu.
Student jest świadomy znaczenia korzystania z najnowszej
literatury naukowej. Rozumie znaczenie poprawnego
przedstawienia wyników badań oraz pisania prac naukowych i
przygotowywania prezentacji zgodnie z obowiązującymi
zasadami.
K_W03
K_W06
K_W07
K_U02
K_U03
K_U07
K_U08
K_K01
K_K02
K_K04
K_K05
15.
Treści programowe:
Każdorazowo wskazywane przez prowadzącego tematy do opracowania i
zaprezentowania. Szczegółowe treści merytoryczne przynależą do tematyki
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
badawczej realizowanej przez poszczególne jednostki naukowe w ramach
proponowanych tematów.
16. Zalecana literatura:
Do każdego realizowanego tematu literatura polecana przez prowadzącego.
17.
Forma zaliczenia:
Seminarium: zaliczenie na podstawie prezentacji (K_W03; K_W06; K_W07;
K_U02; K_U03; K_U07; K_U08; K_K01; K_K02; K_K04; K_K05) i aktywności na
zajęciach (K_W03; K_W06; K_W07; K_U07; K_K01; K_K02; K_K04; K_K05)
18. Język wykładowy: polski lub angielski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć z nauczycielem:
- seminarium:
120 (30 na semestr)
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć:
- czytanie wskazanej literatury:
60 (15 na semestr)
60 (15 na semestr)
Suma godzin 240
Liczba punktów ECTS 16 (4 na semestr)
1. Przygotowanie pracy dyplomowej (magisterskiej)
2. Preparation of M.Sc. thesis
3. WNB, IBE
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów: II
8. Rok studiów: II
9. Semestr: III i IV
10. Praca dyplomowa bez limitu godzin
11. Wyznaczony promotor pracy dyplomowej
12. Wymagania wstępne: wiadomości i umiejętności z zakresu studiów I i II stopnia
13. Cele przedmiotu: przygotowanie pracy dyplomowej
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student ma poszerzoną wiedzę z zakresu tematyki związanej z
tematem pracy dyplomowej; zna zasady planowania i
finansowania badań naukowych, zna i stosuje narzędzia
informatyczne i statystyczne do prowadzenia badań; wie jak
korzystać z literatury naukowej dla prowadzenia własnych
badań z zastosowaniem metod właściwych przedmiotowi analiz
Student prowadzi samodzielne badania związane z tematem
własnej pracy dyplomowej; zbiera, opracowuje i prezentuje
dane; wyciąga wnioski dotyczące badań; dyskutuje uzyskane
wyniki z rezultatami prac o podobnej tematyce korzystając z
najnowszej literatury naukowej; przygotowuje pracę
dyplomową oraz przygotowuje się do egzaminu dyplomowego;
samodzielnie planuje własną karierę zawodową.
K_W03
K_W04
K_W05
K_W08
K_W09
K_W10
K_W11
K_W12
K_U01
K_U02
K_U03
K_U04
K_U05
K_U06
K_U07
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
Rozumie znaczenie poprawnego przedstawienia wyników badań
oraz pisania prac naukowych i przygotowywania prezentacji
zgodnie z obowiązującymi zasadami.
K_U09
K_K03
K_K04
K_K05
K_K06
15.
Treści programowe:
Szczegółowe treści merytoryczne przynależą do tematyki badawczej związanej z
przygotowywaną pracą dyplomową
16. Zalecana literatura:
Każdorazowo literatura polecana przez promotora
17.
Forma zaliczenia:
Praca dyplomowa: zaliczenie na podstawie pracy pisemnej (K_W03; K_W04;
K_W05; K_W08; K_W09; K_W10; K_W11; K_W12; K_U01; K_U02; K_U03;
K_U04; K_U05; K_U06; K_U07; K_U09; K_K03; K_K04; K_K05; K_K06; K_K07).
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny zajęć z nauczycielem:
- praca dyplomowa:
bez limitu godzin
Praca własna studenta:
- zebranie danych:
- opracowanie wyników:
- czytanie wskazanej literatury:
- napisanie pracy dyplomowej:
bez limitu godzin
bez limitu godzin
bez limitu godzin
bez limitu godzin
Suma godzin bez limitu
Liczba punktów ECTS 30 (15 pkt. w sem. III, 15 pkt. w sem. IV)
1. Regulacja cyklu komórkowego
2. Regulation of cell cycle
3. WNB, IBE, Zakład Genetyki i Fizjologii Komórki
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów II
9. Semestr III
10. Wykład 15 godz., laboratorium 30 godz.
11. prof. dr hab. Robert Wysocki
12. Wymagania wstępne: zaawansowana wiedza z genetyki, biochemii i biologii
molekularnej
13. Cele przedmiotu: zrozumienie mechanizmów regulacji cyklu komórkowego i ich
roli w utrzymaniu stabilności genomu
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student charakteryzuje punkty kontrolne cyklu komórkowego;
rozumie mechanizmy kontroli wzrostu i proliferacji komórek; zna
regulatory cyklu komórkowego; objaśnia jak sygnały
zewnątrzkomórkowe wpływają na zmiany w przebiegu cyklu
komórkowego; rozumie rolę zaburzeń kontroli cyklu komórkowego
w rozwoju nowotworów; zna metody stosowane w badaniach nad
K_W02
K_W04
K_W09
K_W11
K_U01
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
cyklem komórkowym.
Student posługuje się zaawansowanymi technikami i narzędziami
badawczymi stosowanymi w badaniach na cyklem komórkowym;
wykorzystuje biegle literaturę naukową w zakresie biologii
molekularnej w języku ojczystym i angielskim; zbiera i interpretuje
dane empiryczne, na podstawie wyników formułuje właściwe i
kreatywne wnioski.
Student analizuje zdobytą wiedzę z zakresu nauk biologicznych
odczuwając potrzebę jej stałego pogłębiania; jest otwarty na
dyskusje i aktywnie uczestniczy w pracy zespołowej; wykazuje
odpowiedzialność za ocenę zagrożeń wynikających ze stosowanych
technik i aparatury badawczej; dba o przestrzeganie warunków
bezpiecznej pracy.
K_U04
K_U06
K_K02
K_K03
K_K04
K_K06
15.
Treści programowe:
Fazy cyklu komórkowego, pojęcie punktu kontrolnego cyklu komórkowego.
Kinaza zależna od cyklin jako główny regulator cyklu komórkowego. Regulacja
cyklu komórkowego na poziomie transkrypcji, degradacji białek i modyfikacji
post-translacyjnych białek. Duplikacja i segregacja chromosomów. Regulacja
cyklu komórkowego drożdży. Kontrola podziałów komórkowych i wzrostu
komórek u zwierząt. Kontrola cyklu komórkowego w odpowiedzi na uszkodzenia
DNA. Zaburzenia w kontroli cyklu komórkowego jako przyczyna powstawania
nowotworów. Metody badania dynamiki cyklu komórkowego.
16.
Zalecana literatura:
„The Cell Cycle. Principles of Control”; D.O. Morgan, New Science Press 2007;
„Molecular Biology of the Cell”, 5th Ed, Alberts i wsp., Garland Science, 2008.
17.
Forma zaliczenia:
wykład: egzamin w formie testu (K_W02; K_W04; K_W09; K_K04)
laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W04; K_W09; K_W11; K_U06) i
aktywności na zajęciach (K_W04; K_W09; K_W11; K_U01,K_U04; K_U06;
K_K02; K_K03; K_K04; K_K06)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- laboratorium:
15
30
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do egzaminu:
10
10
20
Suma godzin 85
Liczba punktów ECTS 3
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
1. Regulacja ekspresji genów
2. Regulation of gene expression
3. WNB, IBE, Zakład Genetyki i Fizjologii Komórki
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr II
10. Wykład 15 godz., laboratorium 30 godz.
11. dr Iwona Migdał
12. Wymagania wstępne: zaawansowana wiedza z genetyki i biologii molekularnej
13.
Cele przedmiotu: zrozumienie mechanizmów regulacji ekspresji genów u
prokariontów i eukariontów na poziomie transkrypcji, dojrzewania transkryptów,
translacji i modyfikacji post-translacyjnych białek.
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student charakteryzuje etapy ekspresji genów; rozumie
mechanizmy kontroli ekspresji genów; zna różnice w kontroli
ekspresji genów między prokariontami i eukariontami; objaśnia jak
sygnały zewnątrzkomórkowe wpływają na zmiany w ekspresji
genów; rozumie rolę zaburzeń kontroli ekspresji genów w rozwoju
nowotworów; zna metody stosowane w badaniach nad ekspresją
genów.
Student posługuje się zaawansowanymi technikami i narzędziami
badawczymi stosowanymi w badaniach ekspresji genów;
wykorzystuje biegle literaturę naukową w zakresie biologii
molekularnej w języku ojczystym i angielskim; zbiera i interpretuje
dane empiryczne, na podstawie wyników formułuje właściwe i
kreatywne wnioski.
Student analizuje zdobytą wiedzę z zakresu nauk biologicznych
odczuwając potrzebę jej stałego pogłębiania; jest otwarty na
dyskusje i aktywnie uczestniczy w pracy zespołowej; wykazuje
odpowiedzialność za ocenę zagrożeń wynikających ze stosowanych
technik i aparatury badawczej.
K_W03
K_W09
K_W11
K_U01
K_U02
K_U04
K_U06
K_K02
K_K03
K_K04
K_K06
15.
Treści programowe:
Synteza, dojrzewanie i transport kodującego i niekodującego RNA. Synteza
białek. Podstawy regulacji ekspresji genów – etapy regulacji; regulacja inicjacji
transkrypcji; białka regulatorowe przyłączające się do DNA. Regulacja ekspresji
genów prokariotycznych – przykłady operonów. Regulacja ekspresji genów
eukariotycznych – regulacja inicjacji transkrypcji w kontekście chromatyny,
alternatywne dojrzewanie RNA, degradacja RNA i kontrola jakości RNA,
regulacyjne RNA, kontrola post-transkrypcyjna (post-translacyjna obróbka białek,
degradacja białek). Metody stosowane w badaniach regulacji ekspresji genów.
16.
Zalecana literatura:
„Podstawy biologii komórki”, Alberts i in., PWN 2009„Molecular Biology of the
Cell”, 5th Ed, Alberts i wsp., Garland Science, 2008.
17.
Forma zaliczenia:
wykład: egzamin w formie testu (K_W03, K_W09, K_W11)
laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W03, K_W09, K_W11) i
aktywności na zajęciach (K_U01, K_U02, K_U04, K_U06, K_K02, K_K03, K_K04,
K_K06)
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- laboratorium:
15
30
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do egzaminu:
15
10
20
Suma godzin 90
Liczba punktów ECTS 3
1. Roślinne hodowle in-vitro
2. Plant tissue culture in vitro
3. WNB, Jednostka Ogród Botaniczny – Pracownia Kultur Tkankowych
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr I
10. Wykład 15 godz., laboratorium 15 godz.
11. Prof. dr hab. Krystyna Kromer
12. Wymagania wstępne: podstawowa wiedza z zakresu biologii, morfologii, fizjologii,
biochemii i genetyki roślin
13.
Cele przedmiotu:
Współczesne zastosowania roślinnych hodowli komórkowych i tkankowych w
biotechnologii roślin. Potencjał i możliwości jakie niesie technika roślinnych
hodowli in vitro w rozwiązywaniu problemów natury biologicznej, fizjologicznej,
genetycznej oraz jej znaczenie w rolnictwie, ochronie różnorodności biologicznej i
farmakologii. Rola kultury in vitro w statusie zdrowotnym roślin uprawnych i
interakcje z mikroorganizmami.
Poznanie podstawowych technik, osiągnięć i zagrożeń związanych z
biotechnologią. Znaczenie potencjalnych możliwości istniejących w organizmach
roślin w rozwijaniu technologii pro środowiskowych. Od rozwoju nowych odmian
roślin po biogospodarkę i zapewnienie roślinie uprawnej możliwości
odpowiedniego współdziałania z mikroorganizmami.
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student definiuje podstawowe zasady dotyczące procesów
rozmnażania i regeneracji roślin oraz wykazuje znajomość
techniki kultur in vitro. Student potrafi opisać mechanizmy i
sygnały warunkujące rozmnażanie komórek roślinnych in
vitro. Zna techniki zakładania i prowadzenia hodowli. Potrafi
zaplanować badania z wykorzystaniem tych hodowli oraz zna
ich współczesne zastosowania; student opisuje i interpretuje
wyniki prowadzonych doświadczeń i artykułuje zdobytą
wiedzę; student definiuje znaczenie biotechnologii w
K_W03
K_W06
K_W07
K_W09
K_U01
K_U04
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
zachowaniu gatunków ginących i krytycznie zagrożonych, w
podwyższaniu statusu zdrowego materiału roślinnego,
tworzeniu nowych odmian, produkcji metabolitów wtórnych
w bioreaktorach; student zna terminologię określające
zróżnicowanie biologiczne i ma świadomość rozwoju nowych
kierunków nauk eksperymentalnych; zna zagrożenia i
procedury postępowania związane z bezpieczeństwem i
higieną pracy; rozumie związki między osiągnięciami biologii
a możliwościami ich wykorzystania w życiu społeczno-
gospodarczym
Student stosuje w praktyce podstawowe techniki i narzędzia
badawcze używane w kulturach in vitro, umie prowadzić
proste zadanie badawcze pod okiem opiekuna; wykorzystuje
materiały źródłowe i elektroniczne do opisu i dyskusji
problemów biologicznych; wykonuje zadania badawcze w
laboratorium, i potrafi je interpretować sporządza proste
ekspertyzy
Student dostrzega potrzebę stałego pozyskiwania i
uzupełniania wiedzy przyrodniczej; student jest otwarty na
dyskusje i aktywnie uczestniczy w pracy zespołowej; student
jest świadom konieczności podnoszenia swoich kwalifikacji
K_U05
K_U08
K_K02
K_K05
K_K06
15.
Treści programowe:
Osiągnięcia w hodowli komórek, tkanek i organów roślinnych. Przebieg
różnicowania embrionów somatycznych, pąków, korzeni i kalusa. Metody
klonowania komórek. Otrzymywanie roślin haploidalnych i wykorzystania linii
podwojonych haploidów. Fuzja protoplastów i tworzenia mieszańców
somatycznych - hybrydów i cybrydów. Transformacja genetyczna komórek
roślinnych. Zmienność somaklonalna i inne aplikacyjne zastosowania tej techniki.
Biosynteza metabolitów wtórnych i kultury roślinne w bioreaktorach. Uprawy
molekularne w produkcji białek, przeciwciał i antygenów. Bakterie
wykorzystywane w produkcji roślinnej in vitro. Fitoremediacja. Kontrowersje
związane z niektórymi aspektami biotechnologii.
Technologia rozmnażania klonalnego: inicjacja kultury, eksplantaty pierwotne i
drobnoustroje endogenne (patogeny, saprofity, symbionty). Wykrywanie i
eliminowanie drobnoustrojów bezobjawowo zasiedlających eksplantaty. Terapia
antybiotykowa in vtro, naturalne substancje antybakteryjne i antygrzybowe.
Mikrorozmnażanie z wykorzystaniem różnych procesów rozwojowych, czynniki i
sygnały umożliwiające rozmnażanie komórek, tkanek i organów. Monitoring
mikrobiologiczny podczas namnażania. Ukorzenianie, elongacja pędów i
przygotowanie do ukorzeniania; Aklimatyzacja, stan fizjologiczny roślin,
aktywność fotosyntetyczna i bilans wodny. Biotyzacja (bakteryzacja i mikoryzacji)
kultury w stadium aklimatyzacji, indukowanie molekularnych mechanizmów
odporności jako sposobu zabezpieczenia przed stresem środowiskowym. Rola
szczepionek glebowych w precyzyjnej gospodarce agrarnej.
Znaczenie kultury in vitro w hodowli oraz w poszukiwaniu nowych genotypów
roślin uprawnych odpornych na choroby. Metody uwalniania roślin od wirusów.
16.
Zalecana literatura:
„Hodowla komórek i tkanek roślinnych” M. Zenkteler, PWN 1984; „Biotechnologia
roślin” Red. S. Malepszy, PWN, 2005 i 2010; „Podstawy fizjologii roślin” J.
Kopcewicz i S. Lewak, PWN, 2004
17.
Forma zaliczenia:
Wykład: egzamin w formie pracy pisemnej (K_W03; K_W06; K_W07; K_W09)
Laboratorium: zaliczenie na podstawie pracy pisemnej (K_W03; K_W06; K_W07;
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
K_W09); sprawdzianu praktycznego (K_U01; K_U04; K_U05; K_U08) i
aktywności na zajęciach (K_W06; K_W09; K_U04; K_K02; K_K05; K_K06).
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin
Godziny zajęć z nauczycielem:
- wykład:
- laboratorium
15
15
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć:
- opracowanie wyników:
- przygotowanie do egzaminu
10
5
15
Suma godzin 60
Liczba punktów ECTS 2
1. Techniki badawcze w biologii eksperymentalnej
2. Research techniques in experimental biology
3. WNB, IBE
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr I i II
10. Laboratorium 240 godz. (120 godz. na semestr)
11. wyznaczony promotor pracy dyplomowej lub nauczyciele akademiccy
każdorazowo wskazani przez koordynatorów dydaktycznych
12. Wymagania wstępne: wiadomości i umiejętności z zakresu studiów I stopnia
13. Cele przedmiotu: prowadzenie badań w ramach pracy dyplomowej; wstępne
przygotowanie do napisania pracy dyplomowej
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student korzysta z literatury naukowej dla prowadzenia
własnych badań z zastosowaniem metod właściwych
przedmiotowi analiz. Ma pogłębioną wiedze z zakresu tematyki
własnej pracy dyplomowej. Zna zasady pracy w laboratorium.
Prowadzi wstępne badania związane z tematem własnej pracy
dyplomowej. Przy pomocy opiekuna dokonuje wyboru
najlepszych metod oraz stosuje je w badaniach. Zbiera i
opracowuje dane oraz wyciąga wnioski z uzyskanych wyników
badań. Dyskutuje własne wyniki w odniesieniu do danych
literaturowych.
Student jest świadomy znaczenia korzystania z najnowszej
literatury naukowej. Rozumie konieczność korzystania z
dotychczasowych osiągnięć nauki w celu kontynuacji badań.
Rozumie znaczenie poprawnego przedstawienia wyników badań
oraz pisania prac naukowych i przygotowywania prezentacji
zgodnie z obowiązującymi zasadami.
K_W04
K_W05
K_W08
K_W09
K_W11
K_U01
K_U04
K_U05
K_U06
K_K03
K_K04
K_K05
K_K06
K_K07
15. Treści programowe:
Szczegółowe treści merytoryczne przynależą do tematyki badawczej związanej ze
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
wstępnymi przygotowaniami pracy dyplomowej
16. Zalecana literatura:
Każdorazowo literatura polecana przez promotora lub opiekuna pracowni
17.
Forma zaliczenia:
laboratorium: zaliczenie na podstawie prezentacji wyników badań (K_W04;
K_W05; K_W08; K_W09; K_U01; K_U04; K_U05; K_U06) i aktywności na
zajęciach (K_W11; K_U01; K_U04; K_U05; K_U06; K_K03; K_K04; K_K05;
K_K06; K_K07)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć z nauczycielem:
- laboratorium:
240 (120 w semestrze)
Praca własna studenta:
- przygotowanie do zajęć:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie prezentacji:
W zależności od formy pracy
min. 120 godz. w semestrze
Suma godzin 480
Liczba punktów ECTS 20 (10 w semestrze)
1. Wielofunkcyjność struktur komórki zwierzęcej
2. Multifunctionality of the animal cell structures
3. WNB, IBE, Zakład Biologii Rozwoju Zwierząt
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów: II
8. Rok studiów II
9. Semestr IV
10. Wykład 15 godz., laboratorium 15 godz.
11.
dr hab. prof. Małgorzata Daczewska, dr hab. Bożena Simiczyjew, dr Izabela
Jędrzejowska, dr Marta Mazurkiewicz-Kania, dr Arnold Garbiec, dr Magda
Dubińska-Magiera, dr Marta Migocka-Patrzałek
12. Wymagania wstępne: Podstawowa wiedza z biologii komórki, histologii i
biochemii
13.
Cele przedmiotu:
Uzyskanie wiedzy na temat budowy organelli i pozostałych struktur komórkowych
w powiązaniu z ich funkcją i znaczeniem dla komórki i całego organizmu.
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student: zna budowę komórek zwierzęcych, rozpoznaje
poszczególne jej składniki i potrafi opisać ich rolę w
funkcjonowaniu komórki; zna podstawy procesów komórkowych
związanych ze wzrostem, starzeniem, komunikacją
międzykomórkową, ruchem, magazynowaniem rezerw i ich
mobilizacją.
Student: rozumie i analizuje procesy zachodzące w komórkach;
wykorzystuje wiedzę teoretyczną do analizy preparatów
mikroskopowych; sprawnie posługuje się mikroskopem
K_W01
K_W02
K_W11
K_U01
K_U06
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
świetlnym i fluorescencyjnym oraz oprogramowaniem do analizy
obrazu; potrafi zinterpretować wyniki przeprowadzonych
eksperymentów; jest zdolny do rozpoznania struktur
komórkowych.
Student: analizuje zdobytą wiedzę dotyczącą procesów
komórkowych; wykazuje umiejętność pracy indywidualnej i w
zespole oraz zdolność do krytycznego korzystania ze źródeł; ma
świadomość zagrożeń wynikających z posługiwania się
wybranymi technikami badawczymi; zachowuje zasady
bezpieczeństwa i higieny pracy.
K_K02
K_K03
15.
Treści programowe:
Rola cytoszkieletu w procesach komórkowych. Starzenie i śmierć komórek.
Wzrost komórek i jego regulacja. Procesy endo- i egzocytarne. Komunikacja
międzykomórkowa, macierz zewnątrzkomórkowa. Lipidogeneza. Domeny
jądrowe. Zjawisko ruchu w komórkach. Gromadzenie rezerw oraz ich mobilizacja.
16.
Zalecana literatura:
„Cytobiochemia” L. Kłyszejko-Stefanowicz (PWN 2002) Rozdziały:; „Podstawy
Biologii Komórki” red. Alberts i wsp.(tłum.) (PWN 2005), Rozdziały:;, Seminaria z
Cytofizjologii” red. J. Kawiak i M. Zabel (Urban & Partner 2002), publikacje
wskazane przez Prowadzących
17.
Forma zaliczenia:
wykład: zaliczenie na podstawie testu (K_W01, K_W02); warunkiem uzyskania
zaliczenia jest obecność na 5 wykładach
laboratorium: zaliczenie na podstawie testu (K_W01, K_W02, K_W11, K_U01,
K_U06) i aktywności na zajęciach (K_K02, K_K03)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie
aktywności
Godziny zajęć (wg planu studiów) z
nauczycielem:
- wykład:
- laboratorium:
15
15
Praca własna studenta, np.:
- przygotowanie do zajęć:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do testów:
10
10
10
Suma godzin 60
Liczba punktów ECTS 2
1. Wprowadzenie do kognitywistyki
2. An introduction to cognitive science
3. Wydział Nauk Społecznych, Instytut Filozofii
4. Zgodny z USOS
5. Obowiązkowy
6. Genetyka i biologia eksperymentalna
7. Poziom studiów II
8. Rok studiów I
9. Semestr II
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
10. Wykład 20 godz., konwersatorium 10 godz.;
11. dr Zbigniew Pietrzak
12. Wymagania wstępne: znajomość podstawowych zagadnień z zakresu studiów
licencjackich dotyczących biologii i metodologii nauk przyrodniczych;
13.
Cele przedmiotu: poznanie i zrozumienie zależności między różnymi dyscyplinami
biologicznymi oraz kognitywistyką jako „interdyscyplinarnym programem
badawczym zmierzającym do ujednolicenia interpretacji fenomenów
poznawczych”, na poziomie umożliwiającym interdyscyplinarną pracę ze
specjalistami innych dziedzin
14.
Zakładane efekty kształcenia:
Student zna i rozumie czym jest kognitywistyka i jaką funkcję w jej
ramach pełni filozofia (teoria poznania i filozofia umysłu) oraz
biologia; charakteryzuje i wyjaśnia zmiany zachodzące we
współczesnych naukach biologicznych i filozofii posługując się
podstawowymi pojęciami z zakresu tych nauk;
Student na podstawie nabytej wiedzy filozoficznej potrafi wskazać
na filozoficzne (pozaprzyrodnicze) implikacje treści kognitywistyki
oraz jej roli we współczesnej wiedzy naukowej; potrafi
identyfikować i przedyskutować podstawowe problemy
współczesnej kognitywistyki – na przykład relacje mózg-umysł,
procesy poznawcze, modele umysłu i poznania.
Student potrafi wypowiadać się w kwestiach istotnych dla
rozumienia współczesnych problemów wynikających z rozwoju
kognitywistyki – w jej biologicznych, filozoficznych, społecznych i
kulturowych aspektach; rozumie odrębność i przydatność
filozoficznej interpretacji kognitywistyki oraz potrafi argumentować
na rzecz własnego stanowiska; potrafi organizować dyskusję na
tematy związane z biologicznymi, filozoficznymi, społecznymi i
kulturowymi problemami kognitywistyki.
K_W01
K_U07
K_K01
15.
Treści programowe:
Wprowadzenie do przedmiotu – czym jest kognitywistyka? Rola i miejsce nauk
biologicznych i humanistycznych (lingwistyki, psychologii i filozofii) w
kognitywistyce. Wzajemne relacje; Podstawowe zagadnienia – biologiczne,
filozoficzne i społeczne problemy poznania: percepcja, poznanie jako stosunek
podmiotu i przedmiotu poznania; Podstawowe modele i teorie umysłu w
perspektywie kognitywistyki: zagadnienie relacji mózg i umysł, własności umysłu;
Zagadnienia sztucznej inteligencji.
16.
Literatura – konwersatoria – wybrane rozdziały z następujących pozycji:
Przewodnik po filozofii umysłu, M. Miłkowski, R. Poczobut (red.); P. Jaśkowski,
Neuronauka poznawcza. Jak mózg tworzy umysł; Analityczna metafizyka umysłu,
M. Miłkowski, R. Poczobut (red.); J.R. Searle, Umysł język społeczeństwo; B.
Korzeniewski, Od neuronu do (samo) świadomości.
Literatura do wykładu – zostanie podana na pierwszym wykładzie.
17.
Forma zaliczenia:
- wykład: zaliczenie na podstawie odpowiedzi ustnej (trzy pytania, na ocenę
dostateczną wymagana poprawna odpowiedź na jedno pytanie); (K_W01; K_U07;
K_K01)
- konwersatorium: zaliczenie na podstawie obecności i aktywności na zajęciach
(K_W01; K_U07; K_K01)
18. Język wykładowy: polski
19. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności studenta Średnia liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Wniosek o utworzenie nowego kierunku studiów II stopnia
Genetyka i biologia eksperymentalna
Załącznik nr 5. Sylabusy do przedmiotów obowiązkowych
Godziny zajęć (wg planu studiów)
z nauczycielem:
- wykład:
- konwersatorium:
20
10
Praca własna studenta:
- czytanie wskazanej literatury:
- przygotowanie do zaliczenia:
20
10
Suma godzin 60
Liczba punktów ECTS 2