Ficha t cnica Selenaspidus articulatus v 1 REVISION UTC) · una fuerte estrangulación. A nivel...
Transcript of Ficha t cnica Selenaspidus articulatus v 1 REVISION UTC) · una fuerte estrangulación. A nivel...
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
FICHA TÉCNICA
Selenaspidus articulatus Morgan 1889
(Hemiptera: Diaspididae)
Escama articulada
Nuñez, 2008; DOLD, 2019.
…
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
CONTENIDO
IDENTIDAD DE LA PLAGA ........................................................................................................................................................................ 1
Nombre científico ..................................................................................................................................................................................... 1
Sinonimia ........................................................................................................................................................................................................ 1
Clasificación taxonómica ...................................................................................................................................................................... 1
Nombre común .......................................................................................................................................................................................... 1
ESTATUS FITOSANITARIO EN MÉXICO ............................................................................................................................................. 1
IMPORTANCIA ECONÓMICA DE LA PLAGA ................................................................................................................................. 2
DISTRIBUCIÓN MUNDIAL ........................................................................................................................................................................ 2
HOSPEDANTES ............................................................................................................................................................................................... 3
Superficie de hospedantes ................................................................................................................................................................ 3
ASPECTOS ECOLÓGICOS Y MORFOLÓGICOS ........................................................................................................................... 3
Biología y hábitos ..................................................................................................................................................................................... 3
Ciclo biológico ............................................................................................................................................................................................6
Dinámica poblacional............................................................................................................................................................................ 7
Dispersión...................................................................................................................................................................................................... 7
Descripción morfológica .................................................................................................................................................................... 8
DAÑOS ................................................................................................................................................................................................................. 8
MONITOREO Y MUESTREO .....................................................................................................................................................................9
MEDIDAS DE MANEJO Y CONTROL ............................................................................................................................................... 10
Control cultural ........................................................................................................................................................................................ 10
Control químico ....................................................................................................................................................................................... 10
Control biológico ..................................................................................................................................................................................... 11
LITERATURA CITADA .................................................................................................................................................................................. 11
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
1
IDENTIDAD DE LA PLAGA
RAGSA, 2019.
Nombre científico
Selenaspidus articulatus Morgan 1889
Sinonimia
Aspidiotus articulatus
Pseudaonidia articulata
Pseudaonidia articulata variedad simplex
(Beingolea 1969)
(EPPO 2019)
Clasificación taxonómica
Phyllum: Arthropoda
Subphyllum: Hexapoda
Clase: Insecta
Orden: Hemiptera
Suborden: Sternorrhyncha
Familia: Diaspididae
Género: Selenaspidus
Especie: Selenaspidus articulatus
(EPPO, 2019).
Nombre común
Idioma Nombre común
Español Quesera redonda
Escama articulada
Inglés Armoured scale, West
Indian rufous scale
Aleman Westindische
Citrusschildlaus
ESTATUS FITOSANITARIO EN MÉXICO
De acuerdo con Global Biodiversity
Information Facility (GBIF, 2019), en México se
reportaron dos colectas de S. articulatus, una
en 1893, sin mayores reportes de hospederos ni
localidad, y otra en 1954 realizada por DeBach
en cítricos en Veracruz.
Ibarra-Núñez (1990), reporta que S. articulatus
se encuentra presente en el estado de Chiapas
relacionado con el cultivo del café solo
evidenciándose como plaga potencial de
dicho cultivo.
El INIFAP (2009) reportó a S. articulatus como
plaga del cultivo de cítricos afectando
exclusivamente a hojas, y está presente en los
estados de Tabasco y Veracruz.
Con base en lo dispuesto en la NIMF 8,
Determinación de la situación de una plaga en
un área (IPPC 2017), este insecto se encuentra
presente: solo en el estado de Chiapas.
El Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y
Calidad Agroalimentaria (SENASICA) a través
de la Dirección General de Sanidad Vegetal
instrumenta programas y campañas
fitosanitarias para prevenir la introducción o
dispersión de plagas que puedan afectar a los
Hembra Macho
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
2
vegetales, sus productos y subproductos; así
como, para mejorar o conservar los estatus
fitosanitarios en la producción agrícola.
Además, tiene el objetivo de determinar la
presencia o ausencia de plagas en un área
específica. Por lo anterior, mediante la
colaboración con productores de plátano, se
han establecido programas de monitoreo para
la detección de S. articulatus, con la finalidad
de responder rápidamente ante una
detección positiva, mediante la aplicación de
medidas fitosanitarias para su control.
IMPORTANCIA ECONÓMICA DE LA PLAGA
Las escamas pueden producir una secreción
rica en azucares donde se desarrolla la
fumagina que al cubrir las hojas interfiere en el
proceso de fotosíntesis; atrae hormigas que se
alimentan de la secreción y protegen las
colonias de escamas de sus enemigos
naturales. Se asocia a las escamas armadas
con la muerte de huéspedes por la inyección
de toxinas mientras comen y facilitan la
entrada de otros patógenos (Smith et al., 2016)
No se han documentado porcentajes de daños
por S. articulatus en el cultivo de plátano: Sin
embargo, es una plaga importante para
Cítricos spp. y Coffee (especialmente en café
robusta). En los cultivos de Citrus spp., S.
articulatus seca rápidamente los tejidos y
algunas veces mata el árbol (Swaine, 1971). Es
la plaga más importante de olivo y cítricos en
Perú (Canales-Canales y Valdivieso, 1999).
Maddison, 1976, clasificó esta especie como
una plaga importante para cítricos en Fiji, y
Hinckley, en 1965, la registró matando a
Bauhinia, Lantana y Musa spp. En Brasil (Sao
Paulo) Watanabe et al. (2000) reportan que el
nivel de umbral económico para S. articulatus
en naranja es de 10 escamas / hoja, y que los
niveles de población en la mayoría de los
huertos se encontraban por encima de este
nivel. En Brasil (Sao Paulo) S. articulatus es un
problema en cítricos y actualmente es objeto
de un programa de control biológico (Claps et
al., 2001). La especie es una plaga de los
bananos en América Central y Jamaica (Chua
y Wood, 1990). Ibarra-Núñez, 1990, considera
que S. articulatus abunda en cultivo de café en
México y es considerada como una plaga
potencial del café.
DISTRIBUCIÓN MUNDIAL
Selenaspidus articulatus tiene una
distribución cosmopolita y ha sido reportado
en plantas de 48 familias diferentes, tanto en
África, Asia, Europa, Norteamerica y
Sudamérica (Figura 1) (Martins et al., 2015).
Figura 1. Distribución mundial de
Selenaspidus articulatus (Plantwise, 2019).
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
3
HOSPEDANTES
Con relación de hospedantes de S. articulatus,
y como en la mayoría de las escamas armadas,
existe muy poca información relativa a su
especificidad, y asimismo se puede alimentar
en varias partes u órganos de la planta
hospedera sin problemas aparentes
(Beardsley y Gonzalez 1975).
Se le ha reportado en hospedantes tales como
Anona cherimolla, A. muricata, Areca spp.,
Citrus aurantiifolia, C. sinensis, Citrus limón, C.
reticulata, Citrus paradisi, Coccus nucifera,
Coffea spp., Chrysophyllum cainito, Codiaeum
variegatum, Cycas circinales, Ficus spp.,
Gardenia jasminoides Hevea sp., Lucuma
abovata, Mamea americana, Manguifera
indica, Musa paradisiaca, Olea europea,
Passiflora edulis, Persea americana, Piper
nigrum, Swietania macrophyla, Tamarindo
indica, Vitis vinífera (GBIF 2019, Núñez 2008,
Ibarra-Núñez 1990, Bartra 1974; Plantwise,
2019).
Superficie de hospedantes
El banano (Musa spp.) está señalado por la
Administración General de Aduanas (GACC) de
China como hospedero de S. articulatus, al
señalarla en la lista de plagas de interés
cuarentenario para la exportación de banano
mexicano a su país (SADER, 2019).
En México, en 2017, se reporta una superficie
de producción de banano de 80 mil hectáreas,
con una producción de 2,229,519 toneladas y
un valor de la producción de 6,966 millones de
pesos, en donde sobresalen los estados de
Chiapas, Tabasco, Veracruz, Colima y Jalisco
(SIAP-SADER 2019).
ASPECTOS ECOLÓGICOS Y MORFOLÓGICOS
Biología y hábitos
Núñez (2008), reporta que el desarrollo total de
la hembra de S. articulatus, desde migrante
hasta hembra sexualmente madura es de 32
días en verano y 47 días en invierno. El periodo
de preoviposición o incubación del huevo, de
la hembra ovovivípara dura en promedio 16
días en verano y 20 en invierno, desde la cópula
hasta la eclosión del huevo.
El número de descendientes por hembra varía
de acuerdo al hospedero, sobre Citrullus se
producen 124 migrantes, en tubérculos de
papa 26 y en cítricos 109 (Núñez 2008).
Bartra (1974), en el transcurso de dos
generaciones de S. articulatus, logró
establecer las características biológicas de
desarrollo:
a) Huevecillo: De coloración amarillo
pajizo, de forma oval y aplanada, de
unas 200 mieras de longitud, con una
cubierta tenuemente blanquecina,
pues el color del migrante próximo a
eclosionar se deja ver por la
transparencia.
b) Migrante o caminante: De coloración
amarillenta al eclosionar y anaranjado
posteriormente, de forma semejante al
huevecillo, con 220 mieras de longitud
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
4
promedio y 150 mieras de ancho en la
zona más amplia del tórax. En la zona
dorsal lleva unas esculturas
transversalmente dispuestas, así como
surcos pronunciados en los segmentos
abdominales. A nivel de la cabeza lleva
un par de antenas (con una fuerte base
terminada en una larga espina), los ojos
son simples rodeados de dos pequeñas
setas. Ventralmente se observa el
rostrum con un estilete, en el borde
inferior del mismo se ubica el pigidio en
formación el que lleva rudimentos de
lóbulos, espinas y ductos, terminando
en dos fuertes y largas setas. Por ser la
única fase móvil (de dispersión)
presenta los tres pares de patas, las que
llevan coxa y fémur fuertemente
ensanchadas, terminando en dos uñas
acompañadas por largos tentorios.
c) Gorrita blanca. Es la segunda fase de
crecimiento caracterizado por
presentar dorsalmente una secreción
cerosa a manera de mota de algodón.
En esta fase la escama pierde
movilidad, pues al insertar su estilete
en el sustrato, las patas dejan de
cumplir su función motora. S
articulatus va tomando mayor
ensanchamiento en la zona torácica a
la vez que se va comprimiendo a
manera de un disco.
d) Tetilla o pezón: Se le denomina así,
debido a la agudeza superior del
cuerpo. Presenta una longitud de 220
mieras en su mayor longitud por 170 de
ancho. La coloración es amarillenta
presentándose además una escama
desarrollada que sobrepasa el margen
del cuerpo, a manera de falda.
e) Primer estadio sésil. Constituye la fase
evolutiva, preámbulo del primer
cambio o muda. Presenta una longitud
de 290 mieras de largo por 220 mieras
de ancho y una escama que va hasta las
350 mieras de diámetro.
f) Primer muda: El insecto adopta la
forma ovoidal casi circular, con un
diámetro de 370 mieras y una escama
de 450 mieras de diámetro. En esta fase
se puede apreciar el poro genital y la
vulva en formación. La coloración del
cuerpo se torna de un anaranjado más
firme, semejante a un sombreado
periférico, mientras que la escama
tiene un tono grisáceo.
g) Segundo estado sésil: Prosigue a la
primera mida, con un crecimiento de
cuerpo que llega de 1 a las 650 mieras
de longitud por 500 de ancho y una
escama de 870 mieras de diámetro.
Ventralmente se aprecia el acomodo
de las patas y antenas en la zona
pigidial en tanto que se aclaran los
ductos, placas, setas y peines, así como
la formación de cuatro lóbulos anales
semejantes a los que posee la hembra
adulta. La coloración es generalmente
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
5
amarillenta clara y algo anaranjada en
el pigidio.
h) Segunda muda: El cuerpo tiene una
longitud de 780 mieras por 830 de
diámetro en la escama, en donde se
puede apreciar un relieve a manera de
huella circular que corresponde a la
primera muda, a nivel del pigidio se
observa el desarrollo de las
prolongaciones internas de los ductos.
i) Tercer estadio sésil: Presenta una
escama de 1.2 mm. de diámetro y el
cuerpo se caracteriza por haber
superado el borde marginal de la
segunda muda, el que en su momento
se recogió para diferenciar las zonas del
cefalotórax y abdomen, por medio de
una fuerte estrangulación. A nivel
pigidial el poro anal y la vulva se
encuentran ya formados.
j) Hembra adulta: Presenta una longitud
promedio de 1.3 mm. y un ancho de 1.9
mm., en tanto que la escama alcanza
1.9 mm de diámetro. La escama
contiene las huellas concéntricas de las
dos mudas que pasó para llegar al
estado adulto. Al destapar la escama
destaca el cuerpo de S. articulata de un
color amarillo limón, diferenciando las
zonas del cefalotórax y el abdomen
limitados por la estrangulación
anteriormente señalada.
k) Prepupa del macho: Presenta 550
mieras de largo por 250 mieras de
ancho, caracterizado por la delineación
de las patas, alas, antenas y edeago
recubiertas por una envoltura. Al igual
que el cuerpo, la escama sufre un
alargamiento.
l) Pupa del macho: Muestra un cuerpo de
750 mieras de longitud por 280 mieras
de ancho, caracterizado por la
formación definida de las antenas,
patas, alas y edeago. Además, en esta
fase expulsa un envoltorio seroso a
nivel pigidial, perteneciente a la
prepupa.
m) Macho adulto. De forma alada,
coloración rojiza, casi carmín de 0.80
mm de longitud por 0.20 mm de
ancho. La cabeza tiene 0.02 mm de
diámetro lleva un par de ojos dorsales y
un par de ventrales, así como dos
antenas largas que llegan a tener ocho
segmentos sumamente pilosos.
Carecen de aparato bucal. En el tórax se
ubica una placa dorsal
transversalmente dispuesta. Las alas
miden 0.70 mm de largo por 0.30 mm
de ancho, transparentes de un tono
grisáceo. En el abdomen se ubican
grupos de espinas situadas próximos a
los segmentos laterales del mismo. El
edeago empieza en una ampolla basal
y prosigue a manera de espínula de
0.20 mm de longitud. Las patas son de
coloración más clara que el cuerpo,
terminando en una sola uña. La
escama pupal mide 1.30 mm de
longitud por 1.05 mm de ancho, donde
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
6
se dibuja la urna o cámara dejada por el
mismo al emerger.
Ciclo biológico
El estado de huevecillo es muy breve,
eclosionando los primeros migrantes (primera
fase del ciclo biológico), estos dejan su
cubierta para salir fuera de la escama materna
y allí permanecen hasta la eclosión. La
evacuación de un huevecillo dura 18 minutos.
El migrante constituye la única fase móvil de S.
articulatus y dura solo tres horas en promedio,
ya que luego pasará toda su vida en forma
sedentaria, fijando su hábitat en hojas y frutos.
En este nivel, la mortandad llega a 17 a 22%. La
fase de recién posados transcurre en 1 día
promedio y a su vez coincide con el momento
en que el insecto se ha sujeto al sustrato por
medio del estilete. La tercera fase del
crecimiento o “gorrita blanca” dura un día
antecediendo al estado de “pezón” que
también dura un día. En resumen, desde
migrante a primera muda pasan 9 a 13 días, de
acuerdo a la época del año, con lo cual el
insecto pasa al segundo estado sésil que dura
8 a 15 días y es el segundo estado que acusa
mayor mortalidad, pues llega a 10 a 13%. El ciclo
total de la hembra dura de 32 a 47 días (Figura
2), es decir hasta llegar a la hembra
sexualmente madura. El periodo de
preoviposición o incubación del huevo,
conocidas las características ovovivíparas de S.
articulatus, dura en promedio de 16 a 20 días a
partir del momento de la cópula hasta la
eclosión del primer huevecillo (Bartra 1974).
.
Figura 2. Ciclo de vida de escamas (Quiroz Y Larraín, 2003).
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
7
Respecto al periodo de reproducción de S.
articulatus, este es de 60 a 85 días
dependiendo de la época del año. La
proporción de sexos es de 1:1.5 (machos a
hembras). El ciclo de vida del macho es muy
rápido, dura de 26 a 38 días, y el adulto solo
durar de 19 a 22 horas, destinadas a la
fecundación de la hembra. El macho es
importante en la consecución de la población
de S. articulatus debido a que las hembras no
son partenogenéticas, sino que es biparental.
El apareo dura en promedio dos minutos, en
donde se notan dos etapas durante el acto, la
primera referida a la búsqueda de un punto
flojo de la escama femenina para deslizar su
edeago y una segunda etapa destinada a la
inseminación propiamente dicha, la
capacidad de apareo del macho se ve
influenciada por las temperaturas de verano,
llegando a copular hasta 11 hembras, en tanto
que en verano solo lo hace con 9 hembras
como promedio (Bartra 1974).
Dinámica poblacional
La tasa de infestación más baja se observó en
el período de marzo a julio, coincidiendo con
una disminución de la temperatura y menor
precipitación. La población de plagas más alta
fue a fines del invierno, desde agosto, cuando
la temperatura comenzó a aumentar, y se
observaron las infestaciones más altas en
septiembre-enero, cuando las temperaturas y
las precipitaciones fueron más altas. La
infestación de hojas superó el 10%, incluso en
condiciones climáticas adversas, lo que
sugiere que los factores ambientales y los
enemigos naturales por sí solos, no son
suficientes para reducir esta plaga (Perruso y
Cassino, 1993). Por su parte Watanabe et al.
(2000) reportaron que, a temperaturas de
20°C, 25°C y 30ºC, las poblaciones de S.
articulatus alcanzaron niveles de daños de
19.5%; 19.46% y 37.5%.
Dispersión
La hembra tiene tres instares: el primero se le
llama gateador, tiene antenas y patas bien
desarrolladas y se dispersan en este estadio; el
segundo instar se desarrolla en el mismo sitio
que escoge el gateador para alimentarse y
permanece allí, ya que no tiene patas; la
escama de cera del segundo instar tiene dos
capas: la capa superior es la exuvia (muda del
insecto) del gateador, más la capa que forma o
produce este estadio (Kondo et al., 2014).
La hembra adulta se parece a la ninfa del
segundo instar, pero regularmente es más
grande, tiene más poros, una vulva, y su
cobertura cerosa o “escama” está compuesta
por tres capas de cera (la exuvia del primer
instar, la capa cerosa del segundo instar, y una
tercera capa que produce el adulto). Muchas
escamas viven en colonias y atacan troncos,
ramas, hojas y frutos. Los árboles afectados
pueden tolerar grandes poblaciones de estos
insectos, pero son más susceptibles en épocas
de sequía o en el estado de plántulas. Las
escamas pueden aparecer en cualquier parte
de las plantas, desde las hojas, hasta los frutos,
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
8
ramas, troncos y raíces. Las plántulas son
especialmente susceptibles y pueden llegar a
secarse cuando las poblaciones son muy altas
(Kondo et al., 2014).
Descripción morfológica
Los insectos escamas o escamas protegidas
pertenecientes a la familia Diaspididae, son
insectos planos, muy pequeños, generalmente
de 1 a 2 mm de diámetro, con una cubierta de
color variable. Las ninfas femeninas escogen
un sitio del árbol apropiado para su
alimentación; allí clavan su aparato bucal, se
alimentan, mudan y permanecen en el mismo
sitio hasta que mueren. Muchas escamas viven
en colonias y atacan troncos, ramas, hojas y
frutos (Kondo et al., 2014).
La escama protectora hembra de S.
articulatus es de forma circular de 1.5 mm de
diámetro, aplanada y transparente,
observándose la silueta del cuerpo muy
característico, por presentar un promosa
(parte anterior) casi semicircular, separado por
una profunda constricción del postsoma
(parte posterior) (Núñez 2008).
La escama macho es de 1.0 mm. de longitud,
es oval, blanquecino, con exuvia subcentral. El
adulto es alado, anaranjado, carece de aparato
bucal, tiene 4 ojos rudimentarios, antenas y
estructura copulatoria bien desarrollada
(Núñez 2008).
DAÑOS
Se tienen reportados daños de S. articulatus
en cítricos, en donde se alimenta de la savia
produciendo decoloración y marchitez en las
hojas y disminución de la superficie
fotosintética en las plantas (Figura 3).
Figura 3. Daños en hoja y fruto de cítrico
causado por Selenaspidus articulatus (Núñez,
2008).
S. articulatus también causa un daño
cosmético por la presencia de individuos en
frutos de exportación de cítricos (Núñez 2008).
Sin embargo, de manera general, provoca
daños directos en sus hospederos
principalmente por la picadura misma al
alimentarse, ya que al introducir su estilete
inyecta saliva que realizara la función digestiva
y es tóxica, ya que contiene enzimas como la
amilasa e invertasas, que van a causar las
características aureolas amarillas en hojas y
frutos de los hospederos. Asimismo, se causan
daños indirectos derivados de las intensas
picaduras y la densidad en que S. articulatus
se encuentra en la superficie del hospedero, lo
que provoca el marchitamiento de la planta y
produciendo la caída de hojas (Bartra 1974).
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
9
MONITOREO Y MUESTREO
Las infestaciones incipientes de escamas
pueden ser monitoreadas por medio de una
inspección visual de la planta. Dependiendo
del hospedero y del comportamiento de las
diversas especies de escamas, éstas se pueden
encontrar en hendiduras de la corteza, entre
ramas, en las venas de las hojas o en otras
partes de las plantas (Smith et al., 2016).
Para la detección de S. articulatus en
plantaciones de banano se recomienda utilizar
la siguiente metodología:
1. Dentro del área a muestrear se
realizará un recorrido en forma de
guarda griega, iniciando por la orilla del
predio (primera hilera de plantas), en la
hilera seleccionada se realizarán
puntos de muestreo a cada 30 m, hasta
llegar al final de cada hilera. El recorrido
se continuará en la cuarta hilera y así
sucesivamente hasta completar 10
puntos (Figura 4). Los puntos deben ser
diferentes en cada fecha de monitoreo.
Figura 4. Esquema en guardia griega en una
superficie de 1 ha, o más para la detección de
S. articulatus.
2. En cada punto de muestreo elegir al
azar una planta de banano y se deberá
realizar la búsqueda de S. articulata y
de daños en hojas, pseudotallo y frutos.
En total se revisarán 10 plantas por
hectárea.
3. En caso de encontrar escamas
sospechosas a S. articulatus se
recolectarán junto con la parte vegetal
donde fue encontrada (parte de la
cubierta del pseudotallo, hojas o
frutos), la cual se depositará en un
frasco con alcohol al 70 % para su envió
al laboratorio de diagnóstico.
4. Cada frasco deberá ser etiquetado con
datos de colecta: fecha de muestreo,
coordenadas geográficas, nombre
del(los) propietario(s), estado,
municipio, nombre del colector, cultivo,
variedad, etapa de desarrollo, entre
otras.
5.
Los monitoreos deberán realizarse cada 15 días
a partir de floración y hasta la cosecha, con la
finalidad de detectar oportunamente al
insecto.
Otra forma de monitorear la emergencia de los
primeros estadios (caminantes o migrantes),
es utilizando alguna cinta adhesiva (por
ejemplo, cinta canela o negra aislante), ésta se
colocará alrededor de seudotallos y hojas,
dejando un poco de holgura, se pegarán los
especímenes al emerger. Se puede adherir un
par de capas de la cinta adhesiva, una pegada
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
10
a la planta y otra al revés con el pegamento
hacia afuera. Al terminar, la punta de la cinta
se puede doblar para formar un agarrador que
permite despegar la cinta y ver los insectos
atrapados (Smith et al., 2016).
Por otra parte, el golpear el follaje con la mano
hacia una superficie de color hará que los
insectos del primer instar caigan y sea fácil
detectarlos (Smith et al., 2016).
MEDIDAS DE MANEJO Y CONTROL
La información sobre la biología y desarrollo de
S. articulatus permitirá la implementación de
estrategias de manejo efectivas, programadas
para coincidir con la ocurrencia de etapas
susceptibles. La información sobre enemigos
naturales ayudará a desarrollar estrategias de
control en programas de Manejo Integrado de
Plagas (MIP) que no afecten a las poblaciones
de enemigos naturales.
Control cultural
La poda sanitaria es de suma importancia en
los cultivos hospederos de S. articulatus.
Teniendo cuidado con el parasitoide (Aphytis
roseni), el cual, es importante para la
conservación y su permanencia en campo
(Núñez, 2008).
Control químico
En Brasil, en 1985, se realizaron estudios para la
evaluación de 8 diferentes tratamientos de
insecticidas, solos o en mezcla con aceite
mineral contra S. articulatus, en donde el
tratamiento de Dimetoato a 0.025 kg i.a./100
litros de agua fue el único tratamiento que
tuvo un efecto significativo en la plaga, pero
también fue el más dañino para la fauna
benéfica; sin embargo, los tratamientos de
aceite mineral solo o en combinación con
aldicard y abamectina fueron los más
selectivos (Gravena et al., 1988)
El efecto de los plaguicidas es más notorio
sobre ninfas móviles, debido a que en estado
adulto las escamas presentan una cubierta
protectora que impide el contacto directo del
producto con el insecto, además, de que se
refugian debajo de la corteza del hospedante,
por tal razón el uso de insecticidas sistémicos
es lo más recomendable (Mani 2001).
En México, para el control de la escama es
necesario utilizar insecticidas autorizados por
la COFEPRIS, estos pueden aplicarse después
de la floración, pero antes de la cosecha (7
días); sin embargo, la etapa óptima de
aplicación es cuando se presenta el desarrollo
de caminantes, estos son las ninfas móviles del
primer instar que dejan la protección de la
madre la cual ha muerto (Mani 2001).
Por otra parte, las hormigas que se alimentan
de las secreciones azucaradas que producen
las escamas, deben ser controladas con el
objetivo de permitir que los enemigos
naturales del insecto plaga ayuden en su
control, así como evitar que estas hormigas se
conviertan en dispersores (Mani 2001).
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
11
Control biológico
Los depredadores conocidos para S.
articulatus son Pentilia egena (Mulsant) (De
Azeredo et al., 2004) y Coccidophilus citricola
Brethes, pertenecientes a la familia
Coccinellidae. Este último resultó ser la
especie más efectiva para depredar a la plaga
en su estado larvario a cualquier temperatura
(Da Silva, 2004). Adicional a estos se reporta a
Azya luteipes (Gravena et al., 1988).
El parasitoide conocido para S. articulatus es
Aphytis roseni De Bach & Gordh
(Hymenoptera: Aphelinidae), reportado como
especifico (Figura 5) y al hacer el parasitismo
externamente al desarrollarse entre el cuerpo
de S. articulatus y el sustrato (frutos u hojas)
alimentándose de los fluidos del hospedero
emergiendo finalmente y dejando tan solo
una película transparente como restos de la
escama (Bartra 1974).
Figura 5. A) Ninfa de Selenaspidus articulatus
con huevo del parasitoide Aphytis roseni B)
Parasitoide adulto (Núñez, 2008).
Con relación a hongos entomopatógenos, se
reporta en Brasil a Aschersonia aleyrodis como
el principal agente de control de S. articulatus
(Gravena et al., 1988)
Sin embargo, es necesaria su evaluación para
determinar su efectividad en campo dentro de
un manejo integrado.
LITERATURA CITADA
Bartra, C.E. 1974. Biología de Selenaspidus
articulatus Morgan y sus Principales
Controladores Biológicos. Revista Peruana de
Entomología 17(1): 60-68.
Beardsley, J.W; Gonzalez, R.H. 1975. The
Biology and Ecology of armored scales Annu.
Rev. Entomol. 20:47-73.
Beingolea, G.O. 1969. Notas sobre la biología
de Selenaspidus articulatus (Hom.:
Diaspididae), “Queresa redonda de los citricos”.
Revista Peruana de Entomología 12(1): 119-129.
Canales-Canales, A. & Valdivieso-Jara, L.
1999. Handbook for biological control in olives.
Jesus Maria, Servicio Nacional de Sanidad
Agraria, 37 p.
Chua T. H., Wood, B. J. 1990. Other Tropical
Fruit Trees and Shrubs. In: Rosen D, ed.
Armoured Scale Insects, their Biology, Natural
Enemies and Control. Vol. 4B. Wold crop pests.
Amsterdam, Netherlands: Elsevier, 543-552.
Claps, L. E., Wolff, V. R. S., González, R. H.
2001. Catálogo de las Diaspididae (Hemiptera:
Coccoidea) exóticas de la Argentina, Brasil y
Chile. Revista de la Sociedad Entomológica
Argentina 60: 9-34.
Da Silva, R. A., Michelotto, M. D., Busoli, A. C.,
Barbosa, J. C. 2004. Predation of Diaspididae
by Coccidophilus citricola larvae at different
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
12
temperatures. Ciencia Rural, Santa Maria,
34(5): 1321-1325.
De Azeredo, E. H., Costa W. R., Rodrigues, P.
C. 2004. Ocorrencia de Selenaspidus
articulatus (Morgan)(Hemiptera, Diaspididae)
e do predador Pentalila egena
(Mulsant)(Coleoptera, Coccinelidae) em
Myrtus communis L. (Myrtaceae), em Pinheiral,
RJ. Revista Brasileira de Entomologia 48(4):
569-576.
DOLD, 2019. System. Taxonomy Browser.
Selenaspidus articulatus. En línea:
http://v3.boldsystems.org/index.php/Taxbrows
er_Taxonpage?taxid=492697 fecha de
consulta junio de 2019.
EPPO (European and Mediterranean Plant
Protection Organization). 2019. PQR-EPPO
database on quarantine pest. En línea:
http://gd.eppo.int/taxon/SELSAR. Fecha de
consulta: 3 de junio de 2019.
GBIF, 2019. Discoverlife: Selenaspidus
articulatus. En línea:
https://www.discoverlife.org/mp/20q. Fecha
de consulta: 7 de junio de 20019
Gravena S, RR Leao-Neto, FC Moretti, G.
Tozatii 1988. Eficiencia de inseticidas sobre
Selenaspidus articulatus (Morgan)
(Homoptera, Diaspididae) e efeito sobre
inimigos naturais em pomar citrico. Científica
16: 209-217.
Ibarra-Núñez, G. 1990. Artropods associated
with coffe trees in a mixed plantation in
Soconusco, Chiapas, México. I. Variety and
abundance. Folia Entomologica Mexicana 79:
207-23.
INIFAP 2009. El cultivo de los citricos en el
estado de Nuevo León. Libro Científico No. 1.
CIRNE. Campo Experimenttal General Terán.
México. 474 p.
IPPC. 2017. International Standards for
Phytosanitary Measures (ISPM) 8.
Determination of pest status in an area.
International Plant Convention (IPPC). En
línea:https://www.ippc.int/static/media/files/
publication/es/2017/06/ISPM_08_1998_Es_201
7-04-22_PostCPM12_InkAm.pdf Fecha de
consulta: enero de 2019.
Kondo, T., Peronti, A. L., Kozár, F., Szita É.
2014. Los insectos escama asociados a los
cítricos, con énfasis en Praelongorthezia
praelonga (Douglas) (Hemiptera: Coccoidea:
Ortheziidae). En linea:
https://www.researchgate.net/profile/Takuma
sa_Kondo/publication/233986761_Chapter_7_T
he_scale_insects_associated_with_citrus_with
_emphasis_on_Praelongorthezia_praelonga_
Douglas_Hemiptera_Coccoidea_Ortheziidae/li
nks/00463515dcba266238000000/Chapter-7-
The-scale-insects-associated-with-citrus-with-
emphasis-on-Praelongorthezia-praelonga-
Douglas-Hemiptera-Coccoidea-
Ortheziidae.pdf fecha de consulta junio de
2019.
Maddison, P. A. 1976. Interim report to the
South Pacific Bureau of Economic Co-
operation, on pests of a limited range of crops.
In UNDP/FAO survey of agricultural pests and
diseases. Interim report March.
Mani M. 2001. Biological control of fruit crop
pests. In: Parvatha Reddy P, Verghese A,
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
13
Krishna Kumar NK (Eds). Pest management in
horticultural crops. Capital Publishing
Company, New Delhi, 93-107 pp.
Martins D. S., Fornazier, M. J., Culik, M. P.,
Ventura, J. A., Ferrerira, P. S.F., Zanuncio, J.
C. 2015. Scale Insect (Hemiptera: Coccoidea)
Pests of Papaya (Carica papaya) in Brazil. Ann.
Entomol. Soc. Am. 108(1): 35-42.
Nunez. E. 2008. Plagas de paltos y cítricos en
Perú. En Manejo de Plagas en Paltos y Cítricos,
Ripa y Larral Editores. 324-364.
Perruso, J. C., y Cassino, P. C. R. 1993.
Population fluctuations of Selenaspidus
articulatus Morg. (Hemiptera: Diaspididae) on
Citrus sinensis L. in Rio de Janeiro state. Anais
da Sociedade Entomológica do Brasil,.22: 401-
404.
Plantwise Knowledge Bank (CABI). 2019.
Selenaspidus articulatus. Plantwise Technical
Factsheet. En línea:
https://www.plantwise.org/knowledgebank/d
atasheet/49511#ImpactSection Consultado:
mayo de 2019.
RAGSA, 2019. Manual para la identificación de
plagas y enfermedades de los cítricos en
campo. Consejería de Agua, Agricultura y
Medio Ambiente Región de Murcia. Fuente:
Material elaborado a partir de la “Guía de
identificación de plagas y enfermedades en
campo.
Ramos-Portilla, A. A, Caballero, A. 2017.
Diaspididae en Citrus spp. (Rutaceae) de
Colombia: Nuevos registros y una clave
taxonómica para su identificación. Revista
Facultad Nacional de Agronomía Medellín.
70:8139-8154.
SIAP SADER. 2019. Servicio de Información
Agroalimentaria y Pesquera, cierre agrícola
2017. Servicio de Información Agroalimentaria
y Pesquera. En línea:
https://nube.siap.gob.mx/gobmx_publicacion
es_siap/pag/2018/Atlas-Agroalimentario-2018
Fecha de consulta 07 de junio de 2019.
Smith, H., Cowles, R., Hiskes, R. 2016. Insectos
escama que son plagas en árboles y
ornamentals en el estado de Connecticut. The
Connecticut Agricultural Experiment Station.
En línea:
http://www.ct.gov/caes/lib/caes/documents/p
ublications/fact_sheets/entomology/scale_spa
nish.pdf Fecha de consulta: 24 de noviembre
de 2016.
Smith, H., Cowles, R., y R. Hiskes. 2014.
Insectos escama que son plagas en árboles y
ornamentales en el estado de Connecticut.
The Connecticut AgriculturalExperiment
Station. Pag. 2. Consultado
http://www.ct.gov/caes/lib/caes/documents/p
ublications/fact_sheets/entomology/scale_spa
nish.pdf Fecha de consulta: junio de 2019.
Swaine, G. 1971. Agricultural zoology in Fiji.
Overseas Research Publication No. 18.
Overseas Development Administration,
London, UK. 424 pp.
Watanabe, M. A.; Tambasco, F. J., DE Nardo,
E. A. B., VIANA, R. I., & Pereira, G. D. 2000.
Competition between Selenaspidus
articulatus and Parlatoria ziziphi scales in
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
14
orchards in the citrus region of São Paulo
State. Laranja, 21: 81-97.
Quiroz, E. C., y Larraín, S. P. 2003. Plagas. In:
Manual del cultivo del olivo. Instituto de
Investigaciones Agropecuarias, La Serena,
Chile. En línea: http://www.inia.cl/wp-
content/uploads/Boletines/NR30539.pdf fecha
de consulta junio de 2019.
Forma recomendada de citar:
DGSV-CNRF. 2019. Escama articulada
(Selenaspidus articulatus Morgan, 1889)
(Hemiptera: Diaspididae). SADER-SENASICA.
Dirección General de Sanidad Vegetal- Centro
Nacional de Referencia Fitosanitaria. Ficha
técnica. Tecámac, Estado de México. 14 p.
Nota: Las imágenes contenidas son utilizadas
únicamente con fines ilustrativos e
informativos, las cuales han sido tomadas de
diferentes fuentes otorgando los créditos
correspondientes.
DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL DIRECCIÓN DEL CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
DIRECTORIO
Secretario de Agricultura y Desarrollo Rural
Dr. Victor Manuel Villalobos Arámbula
Director en Jefe del Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria
Dr. Francisco Javier Trujillo Arriaga
Director General de Sanidad Vegetal
Ing. Francisco Ramírez y Ramírez
Director del Centro Nacional de Referencia Fitosanitaria
Dr. José Abel López Buenfil