Eliminacion Biologica de Nutrientes
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UNIVERSIDAD DEL NORTE
GRUPO DE INVESTIGACIÓN EN TECNOLOGÍAS DEL AGUA
DESARROLLO DE UN MODELO GENERAL PARA LA ELIMINACIÓN BIOLÓGICA DE NUTRIENTES EN
LOS SISTEMAS DE FANGOS ACTIVADOS.
Barranquilla, 2005.
EUTROFIZACIÓN
• Problemas de eutrofización → Interés por la eliminación de nutrientes (nitrógeno y fósforo) en las Estaciones Depuradoras de Aguas Residuales (EDAR)
• En el futuro, nuevas EDAR deberán ser diseñadas para la eliminación de nutrientes.
PROCESO DE ELIMINACIÓN BIOLÓGICA DE NITRÓGENO
Nitrógeno amoniacal
Nitrógeno orgánico(Proteínas, urea)
Descomposición bacteriana
e hidrólisisNitrógenoorgánico(células)
Nitrógeno orgánico(Crecimiento neto)
Nitrito (NO2-)
Nitrato (NO3-) Nitrógeno gaseoso (N2)
Asimilación
Lisis y autooxidación
Desnitrificación
Carbono orgánico
Nitr
ifica
ción
O2
O2
Transformaciones del nitrógeno en los procesos de tratamiento biológico (Metcalf & Eddy, 1995)
PROCESO DE ELIMINACIÓN BIOLÓGICA DE FÓSFORO
PAO
PAO
Energía
Energía Fósforo
Fósforo
CO2
Oxígeno
Materia org. fácilmente degradable
Anaerobia
Aerobia
Anaerobias Aerobias
Concentración de fósforoen el agua residual
Eliminación defósforo
Descarga biológicade fósforo
Absorción biológicade fósforo
Concentración de fósforo durante el proceso de eliminación biológica (Ferrer, 1997)
Esquema de eliminación biológica de fósforo por las bacterias PAO
PROCESO DE ELIMINACIÓN BIOLÓGICA CONJUNTA DE NITRÓGENO Y DE FÓSFORO
(ANAEROBIA-ANOXICA-AEROBIA)
Tiempo de retención celular
Características del Agua
Temperatura
012345678
8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30Temperatura, ºC
TRC
aer
obio
mín
imo,
día
s
Nitrif icantes
PAO
• Calidad
• Cantidad
DQO/NKT ↑ (N)
DQO/P ↓ (P)012345678
8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30Temperatura, ºC
TRC
aer
obio
mín
imo,
día
s
Nitrif icantes
PAO MODELACIÓN MATEMÁTICA DEL PROCESO DE FANGOS ACTIVADOS CON ELIMINACIÓN
BIOLÓGICA DE NUTRIENTES
Herramienta necesaria para DISEÑO-CONTROL-OPTIMIZACION
+ PROCESOS BIOLOGICOS
Componentes solubles
SF (mgDQO/L): Sustrato orgánico solubleSA (mgDQO/L): Acidos volátilesSO2 (mgDQO/L): Oxígeno en disoluciónSI (mgDQO/L): Materia orgánica inerte solubleSNH4 (mgN/L): Nitrógeno amoniacalSNO3 (mgN/L): Nitrógeno oxidado (nitrato + nitrito)SN2 (mgN/L): Nitrógeno gaseosoSPO4 (mgP/L): Fósforo inorgánico soluble (ortofosfato)SALK (mgHCO3/L): alcalinidad del agua residual
Componentes particulados
XS (mgDQO/L): Sustrato orgánico particulado XI (mgDQO/L): Materia orgánica inerte particuladaXPHA (mgDQO/L): Sustrato orgánico almacenado intracelularmente por las bacterias acumuladoras de polifosfatosXPP (mgP/L): Polifosfatos almacenados intracelularmente XH (mgDQO/L): Biomasa heterótrofaXAUT (mgDQO/L): Biomasa autótrofaXPAO (mgDQO/L): Biomasa acumuladora de polifosfatos
MODELO DE FANGOS ACTIVADOS No. 2
(ASM2)
(Incluye los procesos de eliminación de materia orgánica, nitrógeno y fósforo)
PROCESOS BIOLÓGICOS
Componente i SF SNH4 SPO4 SI SALK XS
j. ↓ Proceso
1 Hidrólisis aerobia 1-fSI 41 NH,V 41 PO,V fSI ALK,V1 -1
2 Hidrólisis anóxica 1-fSI 42 NH,V 42 PO,V fSI ALK,V2 -1
3 Hidrólisis anaerobia 1-fSI 43 NH,V 43PO,V fSI ALK,V3 -1
• Procesos de las bacterias heterótrofas no acumuladoras (XH)
Componente i SO2 SF SA SNO3 SN2 XI XS XH
j. ↓ Proceso
4 Crecimiento aerobio sobre
SF HY)HY( −
−1
HY1
−+1
5 Crecimiento aerobio sobre
SA HY)HY( −
−1
HY1
−+1
6 Crecimiento anóxico
sobre SF HY1
−HY.
)HY(⋅
−−
8621
HY.)HY(
⋅−862
1 +1
7 Crecimiento anóxico
sobre SA HY1
−HY.
)HY(⋅
−−
8621
HY.)HY(
⋅−862
1 +1
8 Fermentación -1 +1
9 Lisis fXI 1-fXI -1
j. ↓ Proceso Velocidad de reacción
1 Hidrólisis aerobiaH
HSX
HS
OO
Oh X
XXKXX
SKS
K ⋅+
⋅+
⋅22
2
2 Hidrólisis anóxicaH
HSX
HS
NONO
NO
OO
ONOh X
XXKXX
SKS
SKK
K ⋅+
⋅+
⋅+
⋅η⋅33
3
22
23
3 Hidrólisis anaerobiaH
HSX
HS
NONO
NO
OO
Ofeh X
XXKXX
SKK
SKK
K ⋅+
⋅+
⋅+
⋅η⋅33
3
22
2
4 Crecimiento aerobio
sobre SFH
POP
PO
ALKALK
ALK
NHNH
NH
FA
F
FF
F
OO
OH X
SKS
SKS
SKS
SSS
SKS
SKS
⋅+
⋅+
⋅++
⋅+
⋅+
⋅µ4
4
44
4
22
2
5 Crecimiento aerobio
sobre SAH
POP
PO
ALKALK
ALK
NHNH
NH
FA
A
AA
A
OO
OH X
SKS
SKS
SKS
SSS
SKS
SKS
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅µ4
4
44
4
22
2
6 Crecimiento anóxico
sobre SFH
POP
PO
ALKALK
ALK
NONO
NO
NHNH
NH
FA
F
FF
F
OO
ONOH X
SKS
SKS
SKS
SKS
SSS
SKS
SKK
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅η⋅µ4
4
33
3
44
4
22
23
7 Crecimiento anóxico
sobre SAH
POP
PO
ALKALK
ALK
NONO
NO
NHNH
NH
FA
A
AA
A
OO
ONOH X
SKS
SKS
SKS
SKS
SSS
SKS
SKK
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅η⋅µ4
4
33
3
44
4
22
23
8 FermentaciónH
ALKALK
ALK
NONO
NO
Ffe
F
OO
Ofe X
SKS
SKK
SKS
SKK
q ⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅33
3
22
2
9 Lisis de XH HH Xb ⋅
Componente i SO2 SA SPO4 XI XS XPAO XPP XPHA
j. ↓ Proceso
10 Almacenamiento de XPHA -1 4POY 4POY− 1
11 Almacenamiento de XPP PHAY− -1 1 PHAY−
12 Crecimiento aerobio
PAOY)PAOY( −
−1 PBMi− 1
PAOY1
−
13 Lisis de XPAO fXI 1-fXI -1
14 Ruptura de XPP 1 -1
15 Ruptura de XPHA 1 -1
• Procesos de las bacterias acumuladoras de polifosfatos (XPAO)
j. ↓ Proceso Velocidad de reacción
10 Almacenamiento de
XPHAPAO
PAOPPPP
PAOPP
ALKALK
ALK
AA
APHA X
XXKXX
SKS
SKS
q ⋅⋅+
⋅+
⋅+
11 Almacenamiento de
XPP( ) PAO
PAOPPMAXIPP
PAOPPMAX
PAOPHAPHA
PAOPHA
ALKALK
ALK
POPS
PO
OO
OPP X
XXKKXXK
XXKXX
SKS
SKS
SKS
q ⋅−+
−⋅
+⋅
+⋅
+⋅
+⋅
4
4
22
2
12 Crecimiento aerobio
de XPAOPAO
PAOPHAPHA
PAOPHA
POP
PO
ALKALK
ALK
NHNH
NH
OO
OPAO X
XXKXX
SKS
SKS
SKS
SKS
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅µ4
4
44
4
22
2
13 Lisis de XPAOPAO
ALKALK
ALKPAO X
SKS
b ⋅+
⋅
14 Ruptura de XPPPP
ALKALK
ALKPP X
SKS
b ⋅+
⋅
15 Ruptura de XPHAPHA
ALKALK
ALKPHA X
SKS
b ⋅+
⋅
Componente i SO2 SNH4 SNO3 SPO4 XI XS XAUT
j. ↓ Proceso
16 Crecimiento aerobioAY
)AY.( −−
574
AYiNBM
1−−
AY1 PBMi− +1
17 Lisis fXI 1-fXI -1
• Procesos de las bacterias autótrofas (XA)
j. ↓ Proceso Velocidad de reacción
16 Crecimiento aerobio
de XAUTAUT
POP
PO
ALKALK
ALK
NHNH
NH
OO
OAUT X
SKS
SKS
SKS
SKS
⋅+
⋅+
⋅+
⋅+
⋅µ4
4
44
4
22
2
17 Lisis de XAUT AUTAUT Xb ⋅
Suposiciones del modelo ASM2
• El único sustrato que pueden capturar las PAO es el SA.
• Las PAO pueden crecer aerobiamente a partir del PHA, no directamente a partir del SA.
• Las PAO no pueden llevar a cabo el proceso de desnitrificación.
• No se tiene en cuenta el papel del glicógeno en el metabolismo de las PAO.
• No se incluye en el modelo una fracción de biomasa heterótrofa capaz de almacenar PHA bajo condiciones anaerobias sin liberación de fósforo y posteriormente crecer a expensas del PHA almacenado.
Planta pilotoDiseño experimental – Estudios de los procesos de eliminación biológica de nutrientes
• Operación y seguimiento de la planta hasta estado estacionario→ Una vez alcanzado el estado estacionario
Seguimiento analítico exhaustivo (influente, efluente y reactores)
• Calibración del modelo a partir de ensayos de laboratorio.
Planta pilotoEsquema
Recirculación nitratosRecirculación interna
Acético
Influente
Decantador 1º
Elutriación
Anóxica AerobiaAnaerobia
Purga fangos 1º
Muestra integrada efluente
Recirculación fangos
Sistema de refrigeración
Purga fangos 2º
Decantador 2º
Muestra integrada influente
Efluente
Planta piloto – Vista general
Planta piloto – Vista del reactor biológico
Planta pilotoSeguimiento analítico
Resultados experimentales medios obtenidos del seguimiento exhaustivo del estado estacionario, para las edades del fango estudiadas
Edad del fango 16 días 14 días 12 días
DQO total (mgO/L) 168 132 181
DQO soluble (mgO/L) 90 57 96
DBO5 total (mgO/L) 84 105 106
DBO5 soluble (mgO/L) 44 42 30
Fósforo soluble(mgP/L) 3.6 3.4 3.7
Fósforo total (mgP/L) 4.2 6.0 5.0
Nitrógeno total (mgN/L) 19.4 19.0 28.9
Amonio (mgN/L) 14.8 15.0 17.7
Nitrato (mgN/L) <0.2 <0.2 <0.2
Influente
Ac. Acético (mgO/L) 9.7 6.8 1.6
DQO soluble (mgO/L) 40 28 35
DBO5 soluble (mgO/L) 3 8 0
Fósforo soluble (mgP/L) 2.1 0.4 1.9
Amonio (mgN/L) <1.5 <1.5 <1.5
Efluente
Nitrato (mgN/L) 6.9 8.6 13.0
Edad del fango 16 días 14 días 12 días
SST (mg/L) 2286 2047 2054
SSV (mg/L) 1709 1410 1499
DQO total (mgO/L) 2743 2271 2526
Fósforo soluble (mgO/L) 28.3 24.9 30.1
Amonio (mgN/L) 9.8 15.5 11.5
Reactor
Anaerobio
Nitrato (mgN/L) <0.2 0.7 0.8
SST (mg/L) 3154 2732 2929
SSV (mg/L) 2308 1850 2112
DQO total (mgO/L) 3744 2710 3226
Fósforo soluble (mgP/L) 22.2 20.5 26.0
Amonio (mgN/L) 8.8 14.8 11.1
Reactor
Anóxico
Nitrato (mgN/L) <0.2 0.8 0.9
SST (mg/L) 3236 2766 2992
SSV (mg/L) 2298 1822 2081
DQO total (mgO/L) 3730 2733 3203
Fósforo soluble (mgP/L) 2.5 0.4 1.9
Amonio (mgN/L) <1.5 <1.5 <1.5
Reactor
Aerobio
Nitrato (mgN/L) 7.8 9.6 15.0
Planta pilotoSeguimiento analítico
Resultados experimentales medios obtenidos del seguimiento exhaustivo del estado estacionario, para las edades del fango estudiadas
Calibración del modeloParámetros obtenidos
Parámetro TRC
16 días
Unidades
Bacterias heterótrofas no acumuladoras
YH 0.60 mgDQO/mgDQO
µH 3.54 día-1
bH 0.39 día-1
Ks 20.4 mg DQO/L
Bacterias autótrofas
µA 1.39 día-1
bA 0.15 día-1
KNH 0.25 mg N/L
Bacterias acumuladoras de polifosfatos
YPAO 0.80 mgDQO/mgDQO
µPAO 2.73 día-1
bPAO, bPHA, bPP 0.15 día-1
KPHA 0.06 mgDQO/mgDQO
qPP 3.67 día-1
KIPP 0.02 mgP/mgDQO
YPO4 0.26 mgP/mgDQO
qPHA 4.70 día-1
KA 10.2 mgDQO/L
KMAX 0.136 mgP/mgDQO
Calibración del modelo Limitaciones encontradas
• El valor de KMAX (cantidad máxima de fósforo acumulable por unidad de biomasa acumuladora) es muy inferior al habitual en cultivos puros
• El valor de YPO4 (cantidad de fósforo liberado por unidad de acético, como DQO, tomado en fase anaerobia) es muy inferior al habitual en cultivos puros
• El valor de YPAO (cantidad de biomasa producida por unidad de XPHA como DQO) es algo superior al habitual en cultivos puros
Calibración del modelo Limitaciones encontradas
• Hipótesis: existencia de un tipo de bacteria ("bacterias G o GAO")
En fase anaerobia almacenan ácidos volátiles en forma de PHA, obteniendo la energía del glicógeno almacenado
En la fase aerobia y anóxica metabolizan el PHA para su crecimiento y generación de nuevas reservas de glicógeno
La consideración de bacterias G permite justificar los valores de KMAX , YPO4 e YPAO.
OBJETIVO GENERAL
Desarrollo de un modelo general para la eliminación biológica denutrientes en los sistemas de fangos activados, que incluya la competición entre las bacterias acumuladoras de polifosfatos (PAO) y las bacterias acumuladoras de glicógeno (GAO)
• El papel del glicógeno en el metabolismo de las PAO
• El proceso de desnitrificación por parte de las PAO
• El efecto de la presencia de las bacterias GAO
Base el ASM2+
OBJETIVOS ESPECÍFICOS
• Desarrollo de una metodología de calibración de los parámetros cinéticos y estequiométricos de las GAO
• Aportarán valores reales de los parámetros
• Permitirá establecer los procesos biológicos relevantes para las GAO
• Desarrollo de un simulador de fangos activados en el que se incluya el modelo propuesto
• Permitirá validar el modelo propuesto mediante la comparación de los resultados obtenidos experimentalmente con los de las simulaciones
• Servirá de base para la implementación de estrategias de control de la biomasa GAO
DESARROLLO DEL MODELO
♣ Grupos de microorganismos incluidos en el modeloOrganismos Procesos biológicos Condiciones
Heterótrofas (no
acumuladoras)
Crecimiento aerobio
Desnitrificación
Fermentación
Aerobia
Anóxica
Anaerobia
PAO Liberación de fósforo
Desnitrificación
Crecimiento aerobio
Anaerobia
Anóxica
Aerobia
GAO Captura de ácidos grasos de cadena corta
Desnitrificación (a validar)
Crecimiento aerobio
Anaerobia
Anóxica
Aerobia
Autótrofas Nitrificación Aerobia
• Componentes particulados (Adicionales al ASM2)
XGAO (mgDQO/L): Biomasa GAOXPHA,G (mgDQO/L): Polihidroxialcanoatos almacenados intracelularmente en las bacterias GAOXGLY (mgDQO/L): Glicógeno almacenado intracelularmente en las bacterias PAOXGLY,G (mgDQO/L): Glicógeno almacenado intracelularmente en las bacterias GAO
DESARROLLO DEL MODELO
• Componentes solubles (Igual que en el ASM2)
ANOXICO
XPHA
XGLY
XPP
SPO4
ENERGIA
PAO
SNO3SN2
Biomasa
AEROBIO
XPHA
XGLY
XPP
SPO4
ENERGIA
PAO
SO2
H2O
Biomasa
ANAEROBIO
SA
XPHA
XGLY
XPP
SPO4
ENERGIA
ENERGIA
PAO
Metabolismo de las bacterias PAO
Metabolismo de las bacterias GAO
ANAEROBIO
SA
XPHA,G
XGLY,G
ENERGIA
GAO
AEROBIO
XPHA,G
XGLY,G
ENERGIA
GAO
SO2
Biomasa
H2O
ANOXICO
XPHA,G
XGLY,G
ENERGIA
GAO
SNO3SN2
Biomasa
PROCESOS BIOLÓGICOS
• Procesos de las bacterias acumuladoras de polifosfatos (XPAO)
No.↓ Procesos \ Componentes SO2 SA SNO3 SPO4 XI XS XPAO XPP XPHA XGLY
1 Almacenamiento de XPHA SAY− 4POY 4POY− 1 )1( SAY−−
2 Almacenamiento aerobio
de XPP
PHAY− -1 1 PHAY−
3 Almacenamiento anóxico
de XPP862
,.
NOPHAY− -1 1 NOPHAY ,−
4 Crecimiento aerobioPAOY
PAOY )1( −− PBMi− 1
PAOY1
−
5 Crecimiento anóxicoNOPAOY
NOPAOY
,86.2),1(
⋅
−− PBMi− 1
NOPAOY ,
1−
6 Almacenamiento aerobio
de XGLYGLYY
GLYY )1( −−
GLYY1
− 1
7 Almacenamiento anóxico
de XGLYNOGLYY
NOGLYY
,86.2),1(
⋅
−−
NOGLYY ,
1− 1
8 Lisis de XPAO 4,8 POSV fXI 1-fXI -1
9 Lisis de XPP 1 -1
10 Lisis de XPHA 1 -1
11 Lisis de XGLY 1 -1
No.↓ Procesos Velocidad de reacción
Organismos acumuladores de polifosfatos (PAO):
1 Almacenamiento de XPHAPAOX
PAOXGLYXGLYKPAOXGLYX
PAOXPPXPPKPAOXPPX
SALKMSAMqPHA
⋅+
⋅+
⋅⋅⋅
2 Almacenamiento aerobio
de XPP( ) PAOX
PAOXPPXMAXKIPPKPAOXPPXMAXK
PAOXPHAXPPHAKPAOXPHAX
SALKMSPOMSOMqPP
⋅−+
−⋅
+−⋅⋅⋅⋅ 42
3 Almacenamiento anóxico
de XPP( ) PAOX
PAOXPPXMAXKIPPKPAOXPPXMAXK
PAOXPHAXPPHAKPAOXPHAX
SALKMSPOMNOMSONPAOqPP
⋅−+
−⋅
+−⋅⋅⋅⋅⋅⋅ 432η
4 Crecimiento aerobioPAOX
PAOXPHAXPHAKPAOXPHAX
SALKMSPOMNHMSOMPAO
⋅+
⋅⋅⋅⋅⋅ 442µ
5 Crecimiento anóxicoPAOX
PAOXPHAXPHAKPAOXPHAX
SALKMSPOMNHMNOMSONPAOPAO⋅
+⋅⋅⋅⋅⋅⋅⋅ 4432ηµ
6 Almacenamiento aerobio
de XGLY( ) PAOX
PAOXGLYXMGKIGKPAOXGLYXMGK
PAOXPHAXGLYPHAKPAOXPHAX
SOMqGLY
⋅−+
−⋅
+−⋅⋅ 2
7 Almacenamiento anóxico
de XGLY( ) PAOX
PAOXGLYXMGKIGKPAOXGLYXMGK
PAOXPHAXGLYPHAKPAOXPHAX
SALKMNOMSONPAOqGLY
⋅−+
−⋅
+−⋅⋅⋅⋅⋅ 32η
8 Lisis de XPAO PAOXSALKMPAOb ⋅⋅
9 Lisis de XPP PPXSALKMPPb ⋅⋅
10 Lisis de XPHA PHAXSALKMPHAb ⋅⋅
11 Lisis de XGLY GLYXSALKMGLYb ⋅⋅
• Procesos de las bacterias acumuladoras de glicógeno (XGAO)
No.↓ Procesos \ Componentes SO2 SA SNO3 SPO4 XI XS XGAO XPHA,G XGLY,G
12 Almacenamiento de
XPHA,G
GSAY ,− 1 ),1( GSAY−−
13 Crecimiento aerobioGAOY
GAOY )1( −− PBMi− 1
GAOY1
−
14 Crecimiento anóxicoNOGAOY
NOGAOY
,86.2),1(
⋅
−− PBMi− 1
NOGAOY ,
1−
15 Almacenamiento aerobio
de XGLY,GGGLYY
GGLYY
,
),1( −−
GGLYY ,
1− 1
16 Almacenamiento anóxico
de XGLY,GGNOGLYY
GNOGLYY
,86.2),1(
⋅
−−
GNOGLYY ,
1− 1
17 Lisis de XGAO 4,17 POSV fXI 1-fXI -1
18 Lisis de XPHA,G 1 -1
19 Lisis de XGLY,G 1 -1
No.↓ Procesos Velocidad de reacción
Organismos acumuladores de glicógeno (GAO):
12 Almacenamiento de
XPHA,G
GAOXGAOXGGLYXGGLYK
GAOXGGLYXSALKMSAMq
GPHA⋅
+⋅⋅⋅
,,,
,
13 Crecimiento aerobioGAOX
GAOXGPHAXGPHAKGAOXGPHAX
SALKMSPOMNHMSOMGAO
⋅+
⋅⋅⋅⋅⋅,,
,442µ
14 Crecimiento anóxicoGAOX
GAOXGPHAXGPHAKGAOXGPHAX
SALKMSPOMNHMNOMSONGAOGAO⋅
+⋅⋅⋅⋅⋅⋅⋅
,,,
4432ηµ
15 Almacenamiento aerobio
de XGLY,G( ) GAOX
GAOXGGLYXGMGKGIGKGAOXGGLYXGMGK
GAOXGPHAXGLYGPHAKGAOXGPHAX
SOMqGGLY
⋅−+
−⋅
+−⋅⋅
,,,,,
,,,
2,
16 Almacenamiento anóxico
de XGLY,G( ) GAOX
GAOXGGLYXGMGKGIGKGAOXGGLYXGMGK
GAOXGPHAXGLYGPHAKGAOXGPHAX
SALKMNOMSONGAOqGGLY
⋅−+
−⋅
+−⋅⋅⋅⋅⋅
,,,,,
,,,
32,η
17 Lisis de XGAO GAOXSALKMGAOb ⋅⋅
18 Lisis de XPHA,G GPHAXSALKMGPHAb ,, ⋅⋅
19 Lisis de XGLY,G GGLYXSALKMGGLYb ,, ⋅⋅
METODOLOGÍA DE CALIBRACIÓN
•Mantiene el mismo procedimiento experimental que la del ASM2, modificando el tratamiento matemático de la información obtenida en cada uno de los ensayos
• Calibración selectiva de los parámetros de elevada influencia mediante experimentos en discontinuo, realizados en laboratorio con biomasa real y agua residual real, bajo un amplio intervalo de condiciones de operación
• Experimentos en discontinuo:
Aislar Procesos/Facilitar la det. de Parámetros.
METODOLOGÍA DE CALIBRACIÓN
• Sigue el mismo procedimiento para la calibración de los procesos relacionados con XH y XAUT que en el ASM2
•Modifica el procedimiento para la calibración de los procesos relacionados con XPAO.
• Dado que se espera que los parámetros de las PAO y GAO no varíen significativamente para unas condiciones de pH y Temp.:
Calibración →2 edades del fango
Comprobará la capacidad de los parámetros para representar por simulación las dos y una tercera edad
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSAlmacenamiento anaerobio de A.G.V
• Procedimiento experimental• Biomasa a fase endógena • Ausencia total de aceptores de electrones• Separar biomasa en 3 reactores a idénticas
condiciones ambientales (20ºC)• Introducir en cada reactor diferentes
concentraciones de ácido acético• Seguir evolución temporal
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSAlmacenamiento anaerobio de A.G.V
• Los datos experimentales deben seguir la cinética propuesta por el modelo:
Para las bacterias PAO
Para las bacterias GAO
PAO
PAO
GLYGLY
PAO
GLY
AA
APHA
A X
XXK
XX
SKSq
dtdS
⋅+
⋅+
⋅=
GAO
GAO
GGLYGGLY
GAO
GGLY
AA
AGPHA
A X
XXK
XX
SKSq
dtdS
⋅+
⋅+
⋅=,
,
,
,
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSAlmacenamiento anaerobio de A.G.V
• Establecer los consumos de ácido acético para ambas poblaciones:
Según Henze: YPO4=0.40 mgP/mgDQO
Para 16 días: YPO4=0.26 mgP/mgDQO
•Consumo de glicógeno en función del tiempo
Para las bacterias PAO
Para las bacterias GAO
dtdS
YdtdS
dtdX A
SA
AGLY −⋅=1
dtdS
YdtdS
dtdX A
GSA
AGGLY −⋅=,
, 1
0
5
10
15
20
25
30
0 5 10 15 20 25
t (min.)
mg
DQ
O/L
0
10
20
30
40
50
60
0 5 10 15 20 25 30 35
t (min.)
mg
DQ
O/L
0102030405060708090
0 10 20 30 40
t (min.)
mg
DQ
O/L
Evolución del ácido acético por las PAO
(TRC 16 días)
Evolución del ácido acético por las GAO
(TRC 16 días) 02468
1012141618
0 5 10 15 20 25
t (min.)
mg
DQO
/L
0
5
10
15
20
25
30
35
0 5 10 15 20 25 30 35t (min.)
mg
DQ
O/L
05
101520253035404550
0 5 10 15 20 25 30 35
t (min.)
mg
DQ
O/L
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSAlmacenamiento anaerobio de A.G.V
T.R.C 16 días T.R.C 14 días
Parámetros Valor Parámetros Valor
Bacterias PAO
qPHA XPAO 3008 qPHA XPAO 2436
KA 1.02 KA 6.26
KGLY XPAO 0.80 KGLY XPAO 0.60
Bacterias GAO
qPHA,G XGAO 2295 qPHA,G XGAO 1698
KA 1.01 KA 6.26
KGLY,G XGAO 0.85 KGLY,G XGAO 0.70
• Procedimiento experimental• Biomasa a fase endógena • Ausencia total de aceptores de electrones• Introducir una cantidad conocida de ácido acético• Seguir evolución temporal concentración acético
hasta consumo total• Biomasa a condiciones aerobias• Registro velocidad de consumo de oxígeno y
concentración de fósforo
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSComportamiento aerobio de las PAO y GAO
• Los datos experimentales deben seguir la cinética propuesta por el modelo:
Para las bacterias PAO
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSComportamiento aerobio de las PAO y GAO
3
2O
2
2O
1
2O2O
dtdS
dtdS
dtdS
dtdS
⎟⎠⎞
⎜⎝⎛+⎟
⎠⎞
⎜⎝⎛+⎟
⎠⎞
⎜⎝⎛=−
PAO
PAO
PPMAXIPP
PAO
PPMAX
PAO
PHAPPHA
PAO
PHA
PHA1
2O X
XXKK
XXK
XXK
XX
qYdt
dSPP
⋅⎟⎠⎞⎜
⎝⎛ −+
−⋅
+⋅⋅=⎟
⎠⎞
⎜⎝⎛
−
( )PAO
PAO
PHAPHA
PAO
PHA
PAO
PAO
2
2O X
XXK
XX
YY1
dtdS
PAO⋅
+⋅µ⋅
−=⎟
⎠⎞
⎜⎝⎛
( )PAO
PAO
GLYMGIG
PAO
GLYMG
PAO
PHAGLYPHA
PAO
PHA
GLY
GLY
3
2O X
XXKK
XXK
XXK
XX
qY
Y1dt
dSGLY
⋅⎟⎠⎞⎜
⎝⎛ −+
−⋅
+⋅⋅
−=⎟
⎠⎞
⎜⎝⎛
−
• Los datos experimentales deben seguir la cinética propuesta por el modelo:
Para las bacterias GAO
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSComportamiento aerobio de las PAO y GAO
2
2O
1
2O2O
dtdS
dtdS
dtdS
⎟⎠⎞
⎜⎝⎛+⎟
⎠⎞
⎜⎝⎛=−
( )GAO
GAO
G,PHAG,PHA
GAO
G,PHA
GAO
GAO
1
2O X
XXK
XX
YY1
dtdS
GAO⋅
+⋅µ⋅
−=⎟
⎠⎞
⎜⎝⎛
( )GAO
GAO
G,GLYG,MGG,IG
GAO
G,GLYG,MG
GAO
G,PHAGLYG,PHA
GAO
G,PHA
G,GLY
G,GLY
2
2O X
XXKK
XXK
XXK
XX
qY
Y1dt
dSG,GLY
⋅⎟⎠⎞
⎜⎝⎛ −+
−⋅
+⋅⋅
−=⎟
⎠⎞
⎜⎝⎛
−
• Los datos experimentales deben seguir la cinética propuesta por el modelo:
Para las bacterias PAO
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSComportamiento aerobio de las PAO y GAO
PAO
PAO
PPMAXIPP
PAO
PPMAX
PAO
PHAPPHA
PAO
PHA
4PO X
XXKK
XXK
XXK
XX
q)1(dt
dSPP
⋅⎟⎠⎞⎜
⎝⎛ −+
−⋅
+⋅⋅−=
−
0100200300400500600700800900
1000
0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5t (h)
OUR
(mg
O/d
ía)
05
1015
2025
3035
Fósf
oro
(mg
P/L)
OUR calculado OUR medido Sp calculado Sp medido
Ajuste del comportamiento aerobio de las PAO y GAO
(T.R.C. 16 días)
T.R.C 16 días T.R.C 14 días
Bacterias PAO
YPAO 0.57 YPAO 0.59
YPHA 0.32 YPHA 0.32
YGLY 0.98 YGLY 0.99
µPAO XPAO 670 µPAO XPAO 585
KPHA XPAO 24 KPHA XPAO 21
KPHA-P XPAO 56 KPHA-P XPAO 49
qPP XPAO 2235 qPP XPAO 1893
KIPP XPAO 1.60 KIPP XPAO 0.07
KMAX XPAO 224 KMAX XPAO 188
qGLY XPAO 3040 qGLY XPAO 2784
KMG XPAO 207 KMG XPAO 174
KIG XPAO 24.0 KIG XPAO 0.48
KPHA-GLY XPAO 96 KPHA-GLY XPAO 77
T.R.C 16 días T.R.C 14 días
Bacterias GAO
YGAO 0.58 YGAO 0.57
YGLY,G 0.97 YGLY,G 0.99
µGAO XGAO 680 µGAO XGAO 522
KPHA,G XGAO 26 KPHA,G XGAO 20
qGLY,G XGAO 1020 qGLY,G XGAO 770
KMG,G XGAO 340 KMG,G XGAO 255
KIG,G XGAO 26.0 KIG;G XGAO 0.45
KPHA,G-GLY XGAO 6.8 KPHA,G-GLY XGAO 5.8
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSTratamiento global de la información respirométrica
• La consideración conjunta de toda la información respirométrica permite calcular
• parámetros cinéticos de muerte (bi)• proporción de cada tipo de biomasa• resto de parámetros cinéticos
( )
( )
( )
( )
X
x
)f1('b
XXKK
XXK
XXK
XX
qY
Y1
XXK
XX
YY1
x
)f1('b
XXKK
XXK
XXK
XX
qY
Y1
XXK
XX
YY1
XXKK
XXK
XXK
XX
qY
x)f1('bSK
SY
Y57.4
x)f1('bSK
SY
Y1
r
GAO
pGAO
GAO
G,GLYG,MGG,IG
GAO
G,GLYG,MG
GAO
G,PHAGLYG,PHA
GAO
G,PHA
G,GLY
G,GLY
GAO
G,PHAG,PHA
GAO
G,PHA
GAO
GAO
PAO
pPAO
PAO
GLYMGIG
PAO
GLYMG
PAO
PHAGLYPHA
PAO
PHA
GLY
GLY
PAO
PHAPHA
PAO
PHA
PAO
PAO
PAO
PPMAXIPP
PAO
PPMAX
PAO
PHAPPHA
PAO
PHA
PHA
ApANHNH
NHA
A
A
HpHSs
SH
H
H
G,GLY
GAO
GLY
PAO
PP
⋅
⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥⎥
⎦
⎤
⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢⎢
⎣
⎡
⋅
⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟
⎠
⎞
⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜
⎝
⎛
−⋅
+
⎟⎟⎟⎟
⎠
⎞
⎜⎜⎜⎜
⎝
⎛
⎟⎠⎞
⎜⎝⎛ −+
−⋅
+⋅⋅
−
+⎟⎟⎟⎟
⎠
⎞
⎜⎜⎜⎜
⎝
⎛
+⋅µ⋅
−
+⋅
⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟⎟
⎠
⎞
⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜⎜
⎝
⎛
−⋅
+⎟⎟⎟⎟
⎠
⎞
⎜⎜⎜⎜
⎝
⎛
⎟⎠⎞⎜
⎝⎛ −+
−⋅
+⋅⋅
−
+⎟⎟⎟
⎠
⎞
⎜⎜⎜
⎝
⎛
+⋅µ⋅
−
+⎟⎟⎟⎟
⎠
⎞
⎜⎜⎜⎜
⎝
⎛
⎟⎠⎞⎜
⎝⎛ −+
−⋅
+⋅⋅
+⋅⎟⎟⎠
⎞⎜⎜⎝
⎛−⋅+
+⋅µ⋅
−
+⋅⎟⎟⎠
⎞⎜⎜⎝
⎛−⋅+
+⋅µ⋅
−
=
−
−
−
)f1(Y1'bb
pH
ii −⋅−=
Henze (1987)
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSResultados obtenidos
ValorParámetro
T.R.C 16 (días) T.R.C 14 (días)
Unidades
Bacterias PAO
YSA 0.75 0.75 g DQO/g DQO
YPO4 0.40 0.40 g P/g DQO
YPHA 0.32 0.32 g DQO/g P
YPHA,NO 0.57 0.57 g DQO/g P
YPAO 0.57 0.59 g DQO/g DQO
YPAO,NO 0.46 0.48 g DQO/g DQO
YGLY 1 1 g DQO/g DQO
YGLY,NO 1 1 g DQO/g DQO
qPHA 3.7 3.5 g DQO/(g PAO.día)
KA 1.02 6.26 g DQO/m3
KGLY 0.001 0.0008 g DQO/ g PAO
qPP 2.8 2.7 g PP/(g PAO.día)
KPHA-P 0.07 0.07 g PHA/g PAO
KMAX 0.28 0.27 g PP/g PAO
ValorParámetro
T.R.C 16 (días) T.R.C 14 (días)
Unidades
Bacterias PAO
KIPP 0.0020 0.0001 g PP/g PAO
KPHA 0.03 0.03 g PHA/g PAO
µPAO 0.84 0.84 día-1
ηPAO * 0.48 -
qGLY 3.81 4.00 g DQO/(g PAO.día)
KPHA-GLY 0.12 0.11 g PHA/g PAO
KMG 0.26 0.25 g DQO/g PAO
KIG 0.0300 0.0007 g DQO/g PAO
bPAO 0.08 0.08 día-1
bPP 0.08 0.08 día-1
bPHA 0.08 0.08 día-1
bGLY 0.08 0.08 día-1
ValorParámetro
T.R.C 16 (días) T.R.C 14 (días)
Unidades
Bacterias GAO
YSA,G 0.75 0.75 g DQO/g DQO
YGAO 0.58 0.57 g DQO/g DQO
YGLY,G 1 1 g DQO/g DQO
YGLY,GNO 1 1 g DQO/g DQO
qPHA,G 2.7 2.6 g DQO/(g GAO.día)
KA 1.01 6.26 g DQO/m3
KGLY,G 0.001 0.001 g DQO/ g GAO
µGAO 0.80 0.80 día-1
KPHA,G 0.03 0.03 g PHA/g GAO
ηGAO * 0.00 -
qGLY,G 1.20 1.18 g DQO/(g GAO.día)
KPHA,G-GLY 0.008 0.009 g PHA/g GAO
KMG,G 0.40 0.39 g DQO/g GAO
KIG,G 0.0300 0.0007 g DQO/g GAO
bGAO 0.08 0.08 día-1
bPHA,G 0.08 0.08 día-1
bGLY,G 0.08 0.08 día-1
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSDiscusión de los resultados
• El valor de YPAO (0.58 gDQO/gDQO) de las bacterias acumuladoras de polifosfatos, es coherente con los resultados obtenidos en diferentes trabajos encontrados en la bibliografia (Henze, 1995; Mino, 1995; Maurer y Gujer, 1998). (≈YGAOe YH). Estos valores son más consistentes con el metabolismo de estos organismos que el obtenido (0.80 gDQO/gDQO) en el proceso de calibración del modelo ASM2.
• El valor de la velocidad máxima de crecimiento de la biomasa PAO (µPAO=0.84 día-1), es muy cercano al valor propuesto en el modelo ASM2 (µPAO=1.0 día-1). Además, es ligeramente mayor que el valor de la velocidad máxima de crecimiento de la biomasa GAO (µGAO=0.80 día-1). Este hecho concuerda con el aumento del 2 % en la población PAO y con la disminución de un 1 % de la población GAO observados al disminuir el tiempo de retención celular de 16 a 14 días. ( Concordancia con Fukase (1985))
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSDiscusión de los resultados
• Los valores de KMAX (0.28 y 0.27) están dentro del intervalo habitual de 0.26 a 0.34 para los cultivos puros (Smolders, 1994; Henze, 1995; Filipe, 1998). Consistentes con el metabolismo de estos organismos que el obtenido (0.136) en el proceso de calibración del modelo ASM2.
• La velocidad máxima de almacenamiento de PHA obtenida para las bacterias PAO (qPHA=3.6 gDQO/(g PAO.día)) es mayor que la obtenida para las bacterias GAO (qPHA=2.6 gDQO/(g PAO.día)). Esto sugiere que en condiciones adecuadas en un proceso de eliminación biológica de nutrientes, las bacterias PAO siempre serán la población dominante.
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSDiscusión de los resultados
• El valor obtenido del 48 % (ηPAO=0.48) sugiere que el proceso de desnitrificación llevado a cabo por estas bacterias contribuye significativamente a la eliminación biológica de fósforo en los sistemas de eliminación biológica de nutrientes. (Consistente con el resultado del 50% obtenido por Kuba (1997b) en un experimento en discontinuo realizado con fangos procedentes de una planta de tratamiento a escala real).
Implica que en condiciones anóxicas, existe una competencia directa entre las bacterias PAO y las heterótrofas no acumuladoras por el nitrato (aceptor de electrones).
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSDiscusión de los resultados
• Los resultados obtenidos en la calibración muestran que las bacterias acumuladoras de glicógeno son incapaces de llevar a cabo los procesos de desnitrificación (ηGAO=0). Este resultado está en concordancia con un estudio de tipo microbiológico desarrollado por Blackall (1997), donde las bacterias GAO no tuvieron la capacidad de reducir el nitrato a nitrógeno gaseoso. Por lo tanto, puede decirse que un tanque anóxico, es anaerobio desde el punto de vista del metabolismo de las bacterias GAO.
Implica que en los sistemas de fangos activados para la eliminación biológica conjunta de nitrógeno y fósforo, las bacterias PAO están favorecidas en las zonas anóxicas con respecto a las bacterias GAO.
CALIBRACIÓN DE PARÁMETROSDiscusión de los resultados
• Los resultados obtenidos en los valores de los parámetros estequiométricos YGLY , YGLY,G , YGLY,NO y YGLY,GNO (1 gDQO/g DQO, para cada uno de ellos) supone que, en ambas poblaciones, el proceso de almacenamiento de glicógeno no requiere consumo de oxígeno ni de nitrato. Por lo tanto, el proceso de síntesis del glicógeno no requiere aporte externo de energía.
Esto supone que el proceso de síntesis de glicógeno se puede modelar como un proceso sencillo de transformación de PHA a glicógeno.
VALIDACIÓN DE LA METODOLOGÍA DE CALIBRACIÓN
• Simulación del funcionamiento de la planta piloto para tres edades del fango (16, 14 y 12 días)
• DESASS (Design and Simulation of Activated Sludge Systems)
• Valores medios del influente
• Configuración correspondiente a la planta piloto
• La media de los valores de los parámetros cinéticos y estequiométricos (14 y 16 días)
Reactor anaerobio
T.R.C 16 (días) T.R.C 14 (días) T.R.C 12 (días)
Valor
Medido
Valor
Simulado
Valor
Medido
Valor
Simulado
Valor
Medido
Valor
Simulado
SST(mg SST/L) 2286 2243 2047 1862 2054 2016
SSV(mg SSV/L) 1709 1663 1410 1252 1499 1445
DQO total
(mg DQO/L)
2743 2568 2271 1935 2526 2233
Fósforo soluble
(mg P/L)
28.3 27.8 24.9 24.5 30.1 30.6
Amonio (mg N/L) 9.8 11.3 15.5 12.1 11.5 14.8
Nitrato (mg N/L) <0.2 0.0 0.7 0.0 0.8 0.0
VALIDACIÓN DE LA METODOLOGÍA DE CALIBRACIÓN
VALIDACIÓN DE LA METODOLOGÍA DE CALIBRACIÓN
Reactor anóxico
T.R.C 16 (días) T.R.C 14 (días) T.R.C 12 (días)
Valor
Medido
Valor
Simulado
Valor
Medido
Valor
Simulado
Valor
Medido
Valor
Simulado
SST(mg SST/L) 3154 3362 2732 2783 2929 3019
SSV(mg SSV/L) 2308 2443 1850 1832 2112 2116
DQO total
(mg DQO/L)
3744 3767 2710 2827 3226 3265
Fósforo soluble
(mg P/L)
22.2 21.7 20.5 20.9 26.0 25.6
Amonio (mg N/L) 8.8 8.4 14.8 9.9 11.1 11.8
Nitrato (mg N/L) <0.2 0.2 0.8 0.2 0.9 0.2
VALIDACIÓN DE LA METODOLOGÍA DE CALIBRACIÓN
Reactor aerobio
T.R.C 16 (días) T.R.C 14 (días) T.R.C 12 (días)
Valor
Medido
Valor
Simulado
Valor
Medido
Valor
Simulado
Valor
Medido
Valor
Simulado
SST(mg SST/L) 3236 3400 2766 2817 2992 3066
SSV(mg SSV/L) 2298 2418 1822 1802 2081 2086
DQO total
(mg DQO/L)
3730 3723 2733 2776 3203 3213
Fósforo soluble
(mg P/L)
2.5 2.1 0.4 0.3 1.9 1.0
Amonio (mg N/L) <1.5 0.1 <1.5 0.1 <1.5 0.1
Nitrato (mg N/L) 7.8 7.2 9.6 8.6 15.0 10.2
DQO soluble
(mg DQO/L)
40 47.2 28 32.8 35 33.9
VALIDACIÓN DE LA METODOLOGÍA DE CALIBRACIÓN
Discusión
• La excelente concordancia entre los valores simulados y los experimentales (régimen estacionario) junto con la bondad de los ajustes de los resultados experimentales de los ensayos de calibración a las ecuaciones del modelo (régimen transitorio) supone la validación tanto del procedimiento de calibración llevado a cabo para ambas poblaciones (PAO y GAO) como del modelo propuesto.
• Para unas condiciones de temperatura y pH dadas, utilizando un único vector de parámetros cinéticos y estequiométricos, ha sido capaz de simular los valores experimentales obtenidos en planta piloto bajo tres diferentes tiempos de retención celular, cada uno de ellos con tres diferentes características del agua residual influente.
VALIDACIÓN DE LA METODOLOGÍA DE CALIBRACIÓN
• La buena concordancia entre los valores de la concentración de fósforo simulados y los experimentales en ambos reactores (anóxico y anaerobio) supone la validación de los procesos de desnitrificación propuestos para la biomasa PAO.
• Probablemente, la presencia en una proporción elevada de bacterias acumuladoras de glicógeno en el sistema, para las edades del fango consideradas, se debió a un exceso de ácido acético en el agua residual influente que causó una baja relación de fósforo a carbono (P/C) en el influente.
• La eliminación de fósforo se logró en todos los tiempos de retención celular para las condiciones de operación y las concentraciones de ácido acético utilizadas en este trabajo experimental.
VENTAJAS DEL MODELO
• La principal ventaja del modelo propuesto es que se ha desarrollado con un mayor grado de detalle que el modelo ASM2. El trabajo experimental para el modelo propuesto es el mismo que el del modelo ASM2.
• Otra ventaja del modelo propuesto es que utiliza los mismos procedimientos experimentales para la caracterización del agua residual influente que la del modelo No. 2. No requiere un esfuerzo mayor en esta caracterización.
• Para las condiciones de temperatura y pH consideradas, los valores obtenidos para los parámetros cinéticos y estequiométricos de las bacterias PAO y de las bacterias GAO son inherentes a la biomasa.
el modelo propuesto representa de una manera más aproximada a la realidad la dinámica que se sucede en los sistemas de fangos activados con eliminación biológica de nutrientes, sin necesidad de incrementar el trabajo experimental.
CONCLUSIONES
• El modelo matemático general propuesto para la eliminación biológica de nutrientes en los sistemas de fangos activados, representa satisfactoriamente el comportamiento metabólico de las poblaciones estudiadas en dichos sistemas. Esto conlleva un mejor entendimiento tanto de los mecanismos que se suceden en un sistema de fangos activados como de la dinámica de los procesos.
• Para representar los sistemas de fangos activados con eliminación biológica de nutrientes es necesario considerar las siguientes poblaciones: heterótrofas que efectúan los procesos de fermentación, desnitrificación y crecimiento aerobio, autótrofas que efectúan los procesos de nitrificación, bacterias acumuladoras de polifosfatos que efectúan los procesos de desnitrificación y crecimiento aerobio, y bacterias acumuladoras de glicógeno que efectúan los procesos de crecimiento aerobio.
CONCLUSIONES
• La metodología de calibración desarrollada para la determinación de los parámetros del modelo propuesto ha permitido obtener un conjunto de valores de los parámetros con el que ha sido posible reproducir los resultados experimentales, tanto en régimen estacionario como transitorio.
• Es posible llevar a cabo la calibración del modelo propuesto utilizando los mismos ensayos experimentales que se requieren para la calibración del modelo ASM2, complicando únicamente el tratamiento matemático de la información.
UNIVERSIDAD DEL NORTE
GRUPO DE INVESTIGACIÓN EN TECNOLOGÍAS DEL AGUA
ELIMINACIÓN BIOLÓGICA DE NUTRIENTES EN LOS SISTEMAS DE FANGOS ACTIVADOS.
Barranquilla, 2005.