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CONTROL OFICIAL DE TRIQUINA EN MATADEROS SEGÚN

NORMA UNE-EN ISO 17025

David Gargallo Iserte (CECAV)

ICOVV (Valencia) - 13.02.2016

1. Objetivos

2. Programa T

3. NORMA UNE-EN ISO/IEC 17025

4. Proceso de acreditación

ÍNDICE

5. Método de detección

6. Informes de resultados

7. Ejercicio cumplimentación de un ensayo

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OBJETIVOS� Adquirir conocimientos básicos sobre:

� El Programa T: red de Laboratorios de Análisis de Triquina de la C.V.

� Acreditación mataderos según Norma UNE-EN ISO/IEC 17025• Requisitos de Gestión

• Requisitos Técnicos

� Requisitos técnicos sobre la norma UNE-EN ISO/IEC 17025

• Personal y funciones

• Equipos

� Método de detección por digestión y microscopía según el Rto 2015/1375

• Cumplimentación de registros del SGC

• Informes de resultados

• Ejercicio práctico: cumplimentación datos de un ensayo

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PROGRAMA T

ESTRUCTURA� Red integrada de laboratorios de análisis de Triquina de la Comunidad Valenciana, bajo la

estructura: Laboratorio central- laboratorios satélite (relación contractual)

� Mismo SGC, administrado de forma centralizada – un único certificado de acreditación

� Única Dirección Técnica

� CECAV elabora y aprueba la documentación

del sistema y directrices a seguirUnidad Análisis

� Planificación centralizada de las

actividades:

� Elaboración y control documental

� Auditorías internas

� Control equipos

� Controles de Calidad

� Formación personal

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CECAV Laboratorio

central

Unidad Análisis

Unidad Análisis

Unidad Análisis

Unidad Análisis

Unidad Análisis

PROGRAMA T

� El Programa T nace para cumplir con lo establecido...

� RCE nº 882/2004: laboratorios que realicen el control oficial de Triquina en losmataderos, deben estar acreditados según la Norma UNE-EN ISO 17025

RCE nº 2076/2005: establece un período transitorio para la acreditación de 4� RCE nº 2076/2005: establece un período transitorio para la acreditación de 4años, que finaliza el 31 de diciembre de 2009

� RCE nº 1162/2009: establece un período transitorio adicional, que finaliza el31 de diciembre de 2013

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PROGRAMA T

� RCE nº 702/2013: establece un nuevo período transitorio para la plenaacreditación de los mataderos, desde el 1 enero de 2014 hasta el 31 dediciembre de 2016, siempre y cuando el laboratorio:

- Demuestre que se ha iniciado y prosigue con los procedimientos deacreditación necesarios conforme al RCE 882/2004acreditación necesarios conforme al RCE 882/2004

- Presente a la autoridad competente garantías satisfactorias de que sehan implantado sistemas de control de la calidad para los análisis

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PROGRAMA T

¿POR QUÉ CECAV?

� CECAV está acreditado por ENAC (Entidad Nacional de Acreditación) para ladetección de larvas de Triquina según la Norma UNE-EN ISO 17025, desdenoviembre de 2010

� La Conselleria de Sanitat, a través de la Dirección General de Salud Pública,� La Conselleria de Sanitat, a través de la Dirección General de Salud Pública,y CECAV, han firmado un Convenio de Colaboración en el cual la DGSPdesigna a CECAV como Laboratorio Oficial para el Control de Triquinas en laCV

� Acuerdo para formar una Red integrada de laboratorios de Análisis deTriquina en la CV, bajo la supervisión de la Conselleria de Sanitat y ladirección técnica de CECAV, con la colaboración de los mataderosimplicados en el proceso

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Norma UNE-EN ISO/IEC 17025

Contiene los requisitos que tienen que cumplir los laboratorios de ensayo y/ocalibración para demostrar que:

� Poseen un sistema de gestión

� Son técnicamente competentes

� Son capaces de emitir resultados técnicamente válidos

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� Se divide en 5 apartados, 2 anexos y una sección de bibliografía:

1. Objeto y campo de aplicación

2. Referencias normativas

3. Términos y definiciones

4. Requisitos de gestión: Se dividen en 4

� Relaciones con proveedores

4.4. Revisión de pedidos, ofertas y contratos

4.5. Subcontratación de Ensayos y Calibraciones

4.6. Compras de Servicios y Suministros

� Relaciones con clientes

4.7. Servicios al Cliente

4.8. Quejas4. Requisitos de gestión: Se dividen en 4 grandes grupos

� Generalidades del Sistema de Calidad

4.1. Organización

4.2. Sistema de Gestión

4.3. Control de documentos

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4.8. Quejas

� Relaciones internas

4.9. Control de trabajos no conformes

4.10. Mejora

4.11. Acciones Correctivas

4.12. Acciones Preventivas

4.13. Control de Registros

4.14. Auditorías Internas

4.15. Revisiones por la Dirección


5. Requisitos Técnicos

5.1. Diferencias entre laboratorios de ensayo y de calibración

5.2. Personal

5.3. Instalaciones y condiciones ambientales

5.4. Métodos de Ensayo y Validación de Métodos

5.5. Equipos

5.6. Trazabilidad de las medidas5.6. Trazabilidad de las medidas

5.7. Muestreo

5.8. Manipulación de objetos de ensayo y calibración

5.9. Aseguramiento de la calidad de los resultados

5.10. Registros e informes de resultados

Anexo A: Referencias cruzadas con la norma ISO 9001

Anexo B: Directrices para campos específicos

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PERSONAL Y FUNCIONES

� Estructura: En cada unidad de análisis se diferencian 2-3 puestos

� Responsable de Calidad: Personal matadero. Mantenimiento y gestión ISO 17025

� Servicio Veterinario Oficial

� Auxiliar: Personal matadero. Apoyo al Servicio Veterinario Oficial

� Funciones y responsabilidades: Servicio Veterinario Oficial

� Supervisar / Realizar recepción muestras, preparación, digestión, registro formato asociado� Supervisar / Realizar recepción muestras, preparación, digestión, registro formato asociado

� Realizar la lectura de las muestras y cumplimentar el formato asociado

� Supervisar/Realizar limpieza material y eliminación muestras, descontaminación material

� Supervisar/Realizar verificación balanza

� Supervisar/ Realizar la comunicación al R. Calidad de la necesidad de comprar reactivos, material, equipos…

� Supervisar y realizar controles de calidad y validación del método, y cumplimentar el formato asociado

� Comunicar errores, incidencias que se detecten al R. Calidad y al Responsable del Programa T

� Introducir en Celims-T los resultados de los análisis, firma y emisión de boletines 11


EQUIPOS

� IDENTIFICACIÓN

� Etiqueta identificativa en el equipo

� Unidad analítica: Dispone de un Anexo en el que se enumeran los equipos e instrumental

� Daños, deterioros y reparaciones: Cualquierequipo, que haya sufrido sobrecargas o usosequipo, que haya sufrido sobrecargas o usosincorrectos, que proporcione resultadossospechosos, o que se considere defectuoso,será retirado e identificado con una etiqueta.Se procederá a su verificación/calibración porpersonal de CECAV o a su reparación.

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EQUIPOS

� CALIBRACIÓN Y VERIFICACIÓN

� Realización: CECAV, excepto la verificación de la balanza

Se identifica equipo con etiqueta de calibración

� Verificación: Comparación con el criterio de aceptación

� Emisión de un Certificado de calibración

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Equipo/material Calibración Verificación

Material volumétrico ---- Anual

Sonda temperatura A su recepción y anualAnual, intercalada con la

calibración

Balanza A su recepción y anual Antes de su uso

Pesas de trabajo A su recepción y anual -----


CONTROLES DE CALIDAD

� Objetivo: Demostrar la continua competencia de los laboratorios

A) Internos (en el matadero): semestral

• Muestras negativas: Muestra de rutina previamente analizada a la que se leañade un fragmento de carne libre de larvas de Triquina.

Criterio de Aceptación: El resultado de la evaluación será correcto cuando el resultado sea “Ausencia”.Criterio de Aceptación: El resultado de la evaluación será correcto cuando el resultado sea “Ausencia”.

• Muestras positivas: Muestra de rutina previamente analizada con resultadonegativo, a la que se le añade un fragmento de carne que contiene un númeroconocido de larvas de Triquina.

Criterio de Aceptación: El resultado de la evaluación será correcto cuando el resultado sea “Presencia”

� Registro: PT-28/3 Validación/ inoculación de parásitos. El Responsable del ProgramaT evaluará los resultados.

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B) Externos: anual

• Ejercicio intercomparación: Permiten compararresultados y el funcionamiento de los métodosanalíticos con otros laboratorios de ensayo

� Organizador: CNA (Agencia Española deConsumo, Seguridad Alimentaria y Nutrición)

� Participan los laboratorios oficiales para análisisde triquina de las CCAA (28 en 2014)

� Se analizan muestras negativas y positivas condistintos niveles de inoculación de larvas (3-5, 7-10 y negativo)

� Realizado por el laboratorio central, CECAV

� Informe del ejercicio y evaluación de resultados

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MODIFICACIÓN DE REGISTROS

Cuando tengamos que modificar un registro:

Tachar dejando visible la

información errónea

Firmar al lado de la

información errónea

Modificar el registro


� No realizar tachones

� No utilizar cinta correctora, no dejando visible la información anterior

� No poner datos ilegibles

� No utilizar lápiz

errónea errónea

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Proceso de acreditación

¿Qué es la Acreditación?

Reconocimiento formal de que una organización es competente para la realización de unadeterminada actividad (realización de los ensayos y emisión de resultados fiables), a través de unaAuditoría de tercera parte por un Organismo acreditador autorizado

Auditoría de tercera parte: realizada por organismos oficiales (externos)

Organismo acreditador: ENAC (Entidad Nacional de Acreditación)

¿Qué Acreditación obtienen las Unidades de Análisis?

Se acreditan según la Norma UNE-EN ISO 17025 «Requisitos generales relativos a la competenciade los laboratorios de ensayo y/o calibración»

Alcance: Detección de larvas de Triquina según Reglamento 2015/1375

Matriz: carne fresca de porcino y/o equino

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� Acreditación:

� Documentación de la solicitud:

• Solicitud, alcance, datos organización

• Personalidad jurídica, personal del laboratorio, organigrama

• Listado equipos y material, y plan de calibración

• Procedimientos internos, listado de documentos

• Plan de intercomparaciones, actividades de

controles de calidad, ejemplos de informes de

resultados

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� Tras la Auditoría de ENAC a la Unidad de Análisis:

� Emisión de Informe de Auditoría (Auditor jefe)

� Envío Plan de Acciones Correctivas: subsanar las desviaciones detectadas en la Auditoría

� Estudio de la Comisión de Acreditación� Estudio de la Comisión de Acreditación

Certificado de Acreditación Expediente Único

NOTA.- si alguna Unidad Analítica pierde la acreditación, por extensión, la pierden todas las Unidades Analíticas y el Laboratorio Central

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Método de detección

Acreditación: ISO 17025 para el ensayo Detección de larvas detriquina (Trichinella spp.) por digestión pépsica ymicroscopía

Campo de actuación: Carne fresca de cerdo y/o caballo

Documentos de referencia: PNTR-03 Ed.8 (13.05.14)

Detección de larvas de Triquina por digestión ymicroscopía según Reglamento 2015/1375 Anexo ICapítulo I y Anexo III

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TOMA DE MUESTRA

� Tamaño de muestra: El objetivo es proveer un adecuado nivel de sensibilidad

Especie LocalizaciónCantidad a

analizar

Pilar diafragma: mín. 1g Mínimo 1g

*Otros: maseteros, lengua o músculos abdominales 21

CerdosPilar diafragma: mín. 1g

*Otros: mín. 2g

Mínimo 1g

Mínimo 2g

Cerdas de cría y verracosPilar diafragma: mín. 2g

*Otros: mín. 4g

Mínimo 2g

Mínimo 4g

CaballosLengua o maseteros: mín. 10g

Pilar diafragma: mín. 10g

Mínimo 5g

Mínimo 5g


Hay que distinguir entre:

a) La canal

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b) La muestra tomada


TOMA DE MUESTRA

� Las muestras se recibirán en bandejas divididas en cuadrados u orificios. Cadauno de ellos contendrá una muestra de carne de cada canal muestreada. Cadamuestra debe distinguirse claramente de las otras muestras presentes en labandeja

� El peso de las muestras de carne para analizar se entenderá libre de toda grasao fascias, que son indigestibles y pueden dificultar la lectura

� Deben identificarse para permitir la trazabilidad hasta la canal de origen

� Las muestras de carne pueden mantenerse a temperatura ambiente si seanalizan en un corto período de tiempo (< 48 horas)

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� INSTRUMENTAL Y EQUIPOS

� Un cuchillo o tijeras y pinzas para cortar las muestras

� Bandejas divididas en orificios individuales

� Picadora

� Agitador magnético provisto de una placa térmica de temperatura

controlada

Embudo de separación cónico de vidrio (2L)� Embudo de separación cónico de vidrio (2L)

� Tamiz con malla 177 o 180 micras / Embudo destinado a recibir el tamiz

� Vaso de precipitados (2 o 3 L)

� Probeta graduada o tubo de recogida (10-50 ml)

� Un triquinoscopio o estereomicroscopio/microscopio,

con una fuente de luz de intensidad regulable bajo la platina

(aumentos entre 15 – 60 veces)

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Método de detección� Cubeta acrílica cuadriculada 180x40 mm fondo útil, para el cómputo de larvas, o placas

de Petri con un diámetro de 9 cm cuyo fondo se haya dividido en cuadrados de 10 x 10mm.

� Hoja de aluminio

� Balanza de precisión de al menos 0,1 g

� Cubetas o recipientes para recoger el jugo digestivo sobrante, el caso que en un mismodía se realicen más de 1 análisis y el volumen de ensayos no permita el mantener el jugodigestivo en el embudo hasta la lectura. Habrá que identificar cada cubetadigestivo en el embudo hasta la lectura. Habrá que identificar cada cubeta

� Pipetas y propipeta

� Algún instrumento con el que se aspire los 30 ml de líquido de

digestión del tubo de recogida. Ej. jeringa graduada o pipeta

� Un termómetro o sonda de temperatura de una precisión

de 0,5 ºC y con una graduación de 1 a 100 ºC, como mínimo

� Los equipos e instrumental específicos de cada unidad de análisis

se describen en el Anexo APNTR-03/1

� Manuales equipos

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� REACTIVOS

� Ácido clorhídrico 25 %

� Pepsina en polvo con una concentración de:

• 1: 10 000 NF (US National Formulary)

• 1: 12 500 BP (British Pharmacopoea)

• 2 000 FIP (Fédération Internationale de Pharmacie)• 2 000 FIP (Fédération Internationale de Pharmacie)

� Pepsina líquida estabilizada, con una concentración de 660 unidades de la farmacopea Europea/ml

� Agua del grifo

� Alcohol etílico 90% o al 96%. El del 90% se prepara añadiendo a 150 ml de alcohol etílico al 96%, 10 ml de agua

� Las condiciones de conservación de los reactivos serán las indicadas por el fabricante

� Certificados de calidad de los reactivos

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� GRAMOS DE MUESTRA ANALIZADOS POR ENSAYO

En el PNTR-03 se contemplan o distinguen 3 situaciones:

a) Grupos completos de muestras de cerdo (Digestión de 2L): Máximo 115 g

Ej. 1: 67 canales, se toman pilares del diafragma

Pesar alrededor de 100 g de muestra para mantener la proporción entrePesar alrededor de 100 g de muestra para mantener la proporción entrereactivos y carne � p.e.: 100,6 g (se supera con creces 1 g mínimo por canal queexige el reglamento)

Ej. 2: 104 canales, se toman pilares del diafragma

Pesar como mínimo 104 g y como máximo 115 � p.e.: 109,4 g

Ejemplo de trabajo No Conforme: pesar 115,3 g de muestra

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b) Grupos completos de muestras de caballo (Digestión de 2L): Máximo 100 g

Ej. 1: 15 canales, se toman maseteros

Pesar alrededor de 100 g de muestra para mantener la proporción entrereactivos y carne � p.e.: 99,5 g (se supera con creces 5 g mínimo por canal quereactivos y carne � p.e.: 99,5 g (se supera con creces 5 g mínimo por canal queexige el reglamento)


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c) Grupos de muestras de cerdo y/o caballo (Digestión de 1L): Máximo 50 g

Ej. 1: 23 canales cerdo, se toman pilares diafragma

Pesar alrededor de 50 g de muestra para mantener la proporción entre reactivos ycarne � p.e.: 49,5 g (se supera con creces 1 g mínimo por canal que exige el reglamento)

Ej. 2: 7 canales caballo, se toman maseteros

Pesar alrededor de 50 g de muestra para mantener la proporción entre reactivos y carne � p.e.: 49,7 g (se supera con creces 5 g mínimo por canal que exige el reglamento)


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Situaciones a evitar en la medida de lo posible

Ej. 1: 115 canales cerdo, se toman pilares diafragma → pesar 115 g

Ej. 2: 20 canales caballo, se toman maseteros → pesar 100 g

Ej. 3: 50 canales cerdo, se toman pilares diafragma → pesar 50 g

Ej. 4: 10 canales caballo, se toman pilares diafragma → pesar 50 g

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� PROCEDIMIENTO

� Grupos completos de muestras (100 g de muestras a la vez):

• Añadir 2 L de agua en un vaso de precipitados de 3L y calentar a 47 ± 1 ºC, oen su defecto, precalentar a una T que garantice que la digestión se lleva acabo en un rango de T de 45 ± 1 ºC

• Añadir 16 ± 0,5 ml de HCl 25% y homogeneizar• Añadir 16 ± 0,5 ml de HCl 25% y homogeneizar

• Añadir 10 ± 0,2 g o 30 ± 0,5 ml de pepsina y agitar para homogeneizar

• Añadir un máximo de 115 g de carne de cerdo o 100 g de carne de caballopara analizar

• Cubrir con papel de Aluminio el vaso de digestión

• Digerir la carne a 45 ± 1 ºC, entre 30 y 60 minutos

• Verter los líquidos de digestión al embudo de separación de 2 L y dejarreposar durante 30 minutos

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• Traspasar 40 ml de los líquidos de digestión al tubo de recogida o probetagraduada

• Dejar reposar la muestra de 40 ml durante 10 minutos

• Aspirar con jeringa o pipeta 30 ml de las capas superiores, dejar un volumenque no supere los 10 ml y pasarlos a la cubeta

NOTA.- También es posible abrir la llave del tubo de recogida y dejar caer los10 ml del fondo en la cubeta10 ml del fondo en la cubeta

• Enjuagar la probeta o tubo de recogida con un máximo de 10 ml de agua del grifo y añadirlos a la cubeta para efectuar su lectura

• Leer la cubeta en el triquinoscopio o estereomicroscopio

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2) Digestión de la muestra1) Preparación de la muestra

3) Decantación: 1 y 2 4) Lectura en triquinoscopio

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� Puntos críticos a controlar:

� Trazabilidad entre digestiones y canales muestreadas

� Orden adición reactivos: 1º HCl, 2º Pepsina. Degradación de la pepsina por contacto directo con el HCl concentrado

� Calidad y cantidades reactivos

� Cantidad de muestra pesada para el ensayo:

Digestión 2L Digestión 1L

Carne de cerdo Máximo 115 g Máximo 50 g

Carne de caballo Máximo 100 g Máximo 50 g

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� Puntos críticos a controlar:

� T digestión: T próximas a 50 ºC pueden inactivar la pepsina

� Residuo carne no digerido: < 5% peso muestra inicial

Si residuo carne > 5%: Aumentar t digestión (máx. 60 minutos)

� Tamiz limpio (no obturado)� Tamiz limpio (no obturado)

� Cumplir Xempos de sedimentación: t ↓ → tasas de recuperación ↓

� Abrir llave embudo completamente para evitar retención de larvas

� Sedimento transparente. Clarificar para evitar falsos negativos

� Mantenimiento y calibración equipos

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� Registro de datos primarios del ensayo:

Es un requisito de la Norma y son muy importantes ya que:

- permiten trazabilidades

- demuestran que se ha realizado un trabajo

- según los procedimientos definidos en el SGC (PNTR-03)- según los procedimientos definidos en el SGC (PNTR-03)

- se emite un informe de resultados acorde con los datos tomados

Hay dos formatos según el volumen de matanza de los mataderos:

� PNTR-03/1 Detección de larvas de Triquina

� PNTR-03/2 Detección de larvas de Triquina en Unidades Analíticas de granVolumen

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� Registro de datos primarios del ensayo:

• Fecha y nº de análisis

• Unidad de análisis

• Tipo de muestra y especie

• Nº canales muestreadas y peso total de la muestra

• Identificación de las canales• Identificación de las canales

• Lotes y cantidades de reactivos

• Tiempo de digestión (entre 30 y 60 minutos)

• % residuo sin digerir

• Sedimento transparente y nº de clarificaciones (si es necesario)

• Resultado del ensayo

• Responsables de cada proceso

• Campo de observaciones (control de la T de digestión)

• Equipos utilizados (calibrados o verificados) 37


38


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Ejemplo de cálculo del % de residuo sin digerir:

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�Registro de datos primarios del ensayo

Proceso de Clarificación:

• ¿Cuando tenemos que clarificar la muestra?

1. Cuando los líquidos de digestión no se examinen en los 30 minutossiguientes a su preparación

2. Cuando el examen revele que el sedimento no es lo suficientemente2. Cuando el examen revele que el sedimento no es lo suficientementetransparente como para emitir un resultado fiable

• ¿Cómo?

- Trasvasar los 20 ml de la muestra que hay en la cubeta a la probeta o tubode recogida

- Llevar el volumen a 40 ml con agua del grifo. Dejar reposar 10 min., retirar30 ml de las capas superiores

- Recoger los 10 ml en la cubeta y añadir otros 10 ml de agua como máximo- Leer en el triquinoscopio o estereomicroscopio 41



Control de la T de digestión:

• Se toman 3 valores de T durante la digestión:

1. Antes de añadir la carne (Ti)2. A los 5 o 10 minutos después de empezar la digestión (T )2. A los 5 o 10 minutos después de empezar la digestión (Tx)3. Al finalizar la digestión, antes de decantar el vaso a través del tamiz (Tf)

• Se registran para:

- Controlar posibles fluctuaciones de T durante la digestión- Conocer el funcionamiento de la placa calefactora- Tener un histórico de registros que verifique el funcionamiento del equipo

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Control de la T de digestión:

•¿Dónde se registran?

- En el formato PNTR-03/1 para U.A. de volumen de matanza pequeño, en el campo de observaciones

- En el formato PNTR-03/3 para U.A. de gran volumen

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Control de la T de digestión en U.A. de volumen pequeño:

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Control de la T de digestión en U.A. de gran volumen:

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� RESULTADOS

El resultado se expresará como Presencia (P) o Ausencia (A) de larvas de triquina en lamuestra analizada

� Resultado Positivo

� Carne cerdo: Se tomará una nueva muestra de 20 g de cada canal muestreada en elanálisis anterior positivo. Las muestras de 20 g procedentes de cinco cerdos se reunirán yexaminarán. Si se detectan triquinas en un grupo de muestras de cinco cerdos, setomarán nuevas muestras de 20 g de cada animal del grupo, y se examinarán porseparado

� Carne caballo: Se tomará otra muestra de 50 g de cada canal para un posterior análisisindependiente.

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� RESIDUOS

� Las larvas se mantendrán en alcohol etílico 90%

� Jugos digestivos positivos: Residuo categoría 1 bajo supervisión de SVO

� DESCONTAMINACIÓN MATERIAL

� Lavar con agua el embudo de decantación para arrastrar posibles larvas de las paredesdel mismo, dejar caer el agua de lavado en el vaso de precipitados. Resto del material(vaso de precipitados, tubo de recogida o probeta, tamiz, y material de la picadora ycubeta de recuento de larvas) introducir dentro del vaso de precipitados. Someter a unatemperatura de al menos 60 ºC en el agitador térmico durante 5 minutos

� Descontaminar el material sumergiéndolo en agua a una temperatura superior a 60 ºC

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Informes de resultados

� Uno de los requisitos de la Norma ISO 17025 es que el laboratorio de ensayotiene que tener la capacidad de emitir Informes de Resultados técnicamenteválidos

� Los datos que aparecen en el informe tienen que ser concordantes con los datosprimarios tomados durante el ensayo

� Tienen que contener necesariamente una serie de información:

a) Nombre y datos del Laboratorioa) Nombre y datos del Laboratoriob) Datos del Clientec) Nº de boletínd) Fecha de recepción de la muestra y fecha de realización del ensayoe) Objeto del ensayof) Determinacióng) Resultado y unidadesh) Método de ensayoi) Cargo y firma del responsable

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� El SVO de la U.A. es el responsable de generar y firmar los informes deresultados

� El responsable de la lectura de la muestra en el triquinoscopio es el encargadode firmar el informe

� ¿Qué necesita el SVO para poder generar y firmar informes?

a) PC y conexión a Interneta) PC y conexión a Internet

b) Navegador: mínimo Internet Explorer 8

c) Disponer de un usuario y contraseña en el sistema informático CELIMS-T

d) Tener un certificado de firma digital

- Tarjeta de la Conselleria de Sanitat

- Firma digital tramitada en el Ayuntamiento correspondiente

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� https://celims1.cecav.es/cecav

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Imágenes de larvas

Líquido de digestión observado en microscopio

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Imágenes de larvas

Carne positiva observada con placa de compresión en el microsocopio

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Gracias porsu atención

CONTROL OFICIAL DE TRIQUINA EN

MATADEROS SEGÚN NORMA UNE-EN ISO 17025

David Gargallo Iserte [email protected]

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