“COMPORTAMIENTO DE QUINCE CULTIVARES DE...
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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
Tesis de Grado Previo a la Obtención del Título de:
INGENIERO AGRÓNOMO
TEMA:
“COMPORTAMIENTO DE QUINCE CULTIVARES DE ARROZ
BIOFORTIFICADO FRENTE A LAS PRINCIPALES
ENFERMEDADES PRESENTES EN LA ZONA LA CUCA, EL ORO”
AUTOR:
Christopher Wilson Suarez Palacios
DIRECTOR DE TESIS:
Ing. Agr. Leticia Vivas Vivas MSc.
MILAGRO – ECUADOR
2013
Las investigaciones, resultados,
conclusiones y recomendaciones del
presente trabajo son de exclusiva
responsabilidad del autor.
________________________________
Christopher Wilson Suarez Palacios
C.I. 1205934563
Email: [email protected]
iii
CERTIFICADO DEL GRAMÀTICO
Ing. Leticia Vivas Vivas, con domicilio en la ciudad de Guayaquil, por
medio del presente tengo a bien CERTIFICAR: Que he recibido la Tesis
de Grado elaborada por el Sr. Egresado Christopher Wilson Suarez
Palacios con cédula de ciudadanía 1205934563, previo a la obtención del
título de INGENIERO AGRÒNOMO.
TEMA DE TESIS:
“Comportamiento de quince cultivares de arroz biofortificado frente a las
principales enfermedades presentes en la zona la Cuca, El Oro.”
La Tesis revisada a la fecha 25 de abril del 2014, ha sido escrita de
acuerdo a las normas gramaticales y de sintaxis vigentes de la lengua
española.
---------------------------------------
Ing. Agr.: Leticia Vivas Vivas
C.I.: 1304384546
Registro: 1006-05-609406
Teléfono: 0995143135
iv
DEDICATORIA
Dios, padre mío y guía de mi alma, te dedico este
arduo trabajo por darme salud, sabiduría, fortaleza, y
la valentía de volverme a levantar después de cada
caída, que sin tu ayuda no hubiera cumplido con éxito
el primero de mi larga lista de objetivos.
A la bendición más grande que Dios me ha dado; mis
padres, mi hermana, mis abuelos, tías, primos y a mi
amigo guardián Max, quien desde los cielos me protege
para que nada me pasara aun en los momentos más
críticos de mi vida. Gracias a ellos eh logrado salir
adelante, Por entregarme su sabiduría y compartir sus
consejos; y simplemente porque a ustedes les debo mi
vida. Las lágrimas, el sacrificio y las mil risas que
lleva este trabajo son dedicadas a ustedes
v
AGRADECIMIENTO
A:
La Secretaria Nacional de Educación Superior, Ciencia, Tecnología e
Innovación, por el apoyo a través del Programa de Becas.
Al Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias, en
especial a la Estación del Litoral Sur “Enrique Ampuero Pareja”, al
Programa Nacional de Arroz y al Departamento de Protección Vegetal,
por brindarme la oportunidad para llevar a cabo mi trabajo de
investigación.
La Universidad de Guayaquil, Facultad de Ciencias Agrarias, por
formarme como profesional.
A mi directora de tesis Ing. Agr. MSc. Leticia Vivas Vivas, por haberme
asistido, asesorado técnicamente, por brindarme lo mejor de sí a través
de su tiempo y esfuerzo, por su respeto, consideración y amistad valores
especiales brindados durante mi proceso de formación profesional.
Al Ing. Roberto Celi Herán Responsable del Programa Nacional de
Arroz, a los técnicos del programa Ings. Edison Mosquera, Sandro
Triana y Agr. Javier Arboleda y Sra. Janne Bustamante, secretaria,
porque cada uno de ellos me brindó sus conocimientos, amistad y apoyo
incondicional en las distintas etapas de mi trabajo.
A mis amigos por demostrarme el verdadero sentido de la amistad y por
brindarme su apoyo siempre, Claudia Elao, María Cuzco, Gabriela, y
Tatiana Vera, Cristina Enríquez, Alex Delgado, Guillermo Castañeda,
Juan Ronquillo y Álvaro Manzano, por demostrar confianza y por
demostrarme el verdadero sentido de la amistad y por brindarme su
apoyo y oportunos consejos que han impactado con mucha utilidad el
desarrollo de mi carrera profesional.
Agradezco toda la ayuda y conocimiento brindado por los trabajadores
de campo del Programa Nacional de Arroz y al resto del personal de las
distintas áreas.
vi
A las personas que de una u otra manera colaboraron para la realización
de este trabajo.
A todos ustedes, Gracias.
vii
ÍNDICE GENERAL
CONTENIDO
Caratula
Página de aprobación
Responsabilidad del autor
Certificado del gramático
Dedicatoria
Agradecimiento
Índice
Índice de cuadros de texto
Índice de imágenes
Resumen
Summary
1 INTRODUCCIÓN
Objetivos general
Objetivos específicos
2 REVISIÓN DE LITERATURA
2.1. La biofortificación de los alimentos
2.2. Descripción de las principales enfermedades del
cultivo de arroz
2.2.1. Pyricularia grisea (Cooke) Sacc (P. oryzae Cav.)
2.2.2. Organismo causal
2.2.3. Taxonomía
2.2.4. Síntomas
2.2.5. Ciclo de la enfermedad
2.2.6. Manejo de la enfermedad
2.3. Rhizoctonia solani Kuhn
viii
página
i
ii
iii
iv
v
vi
ix
xii
xvi
xix
xvii
1
3
3
4
4
5
5
5
6
6
7
8
8
2.3.1. Organismo causal
2.3.2. Taxonomía
2.3.3. Síntomas
2.3.4. Ciclo de la enfermedad y epifitología
2.3.5. Manejo de la enfermedad
2.3.6. Control químico
2.4. Gaeumannomyces graminis var. graminis (Sacc.)
Arx& D. L. Olivier
2.4.1. Organismo causal
2.4.2. Taxonomía
2.4.3. Síntomas
2.4.4. Ciclo de la enfermedad
2.4.5. Manejo de la enfermedad
2.5. Bipolaris oryzae Breda de Haan
2.5.1. Organismo causal
2.5.2. Taxonomía
2.5.3. Síntomas
2.5.4. Ciclo de la enfermedad
2.5.5. Manejo de la enfermedad
2.6. Sarocladium oryzae Sawada / Gams y Hawks
2.6.1. Organismo causal
2.6.2. Taxonomía
2.6.3. Síntomas
2.6.4. Ciclo de la enfermedad
2.6.5. Manejo de la enfermedad
2.7. Pseudomonas spp.
2.7.1. Organismo causal
ix
9
10 10 11 12 12 13
13 14 14 15 16 17 17 18 18 19 19 20 21 21 21 23 24 25 25
2.7.2. Taxonomía
2.7.3. Síntomas
2.7.4. Ciclo de la enfermedad
2.7.5. Manejo de la enfermedad
2.8. Rice Hoja Blanca Virus (RHBV)
2.8.1. Síntomas
2.8.2. Taxonomía
2.8.3. Ciclo de la enfermedad
2.8.4. Hospederos
2.8.5. Manejo
3 MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Ubicación
3.2. Factores en estudio
3.3. Materiales y equipos y reactivos
3.4. Tratamientos
3.5. Diseño experimental
3.6. Delineamiento experimental
3.7. Características de las variedades testigos
3.8. Manejo del experimento
3.8.1. Labores del cultivo
3.8.2 Incidencia y severidad de enfermedades
3.8.3. Aislamiento e identificación de microorganismos
causales de enfermedades
3.8.4. Procedimiento para la determinación de contenido
de hierro y zinc
3.8.5. Variables agronómicas
3.8.6. Calidad molinera
x
26 27 28 28 29 30 31 31 32 32 34 34 34 35 35 37 37 38 38 38 41 46
47
48 52
4 RESULTADOS
4.1. Enfermedades observadas en líneas y variedades en
el sector La Cuca, provincia de El Oro
4.2. Determinación del nivel de tolerancia de las
54
64
principales
enfermedades en 15 genotipos de arroz
4.3. Comportamiento Agronómico
5 DISCUSION
6 CONCLUSIONES
7 RECOMENDACIONES
8 LITERATURA CITADA
ANEXOS
xi
66 80 83 84 85 98
INDICE DE CUADRO DE TEXTOS
Cuadro 1.
Cuadro 2.
Cuadro 3
Cuadro 4
Genealogía de los materiales en estudio,
INIAP. Estación Experimental del Litoral
Sur 2013.
Características de las variedades testigos, INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur 2013. Escala para la evaluación de P. oryzae en el follaje y cuello de panícula, INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur 2013. Escala para la evaluación de Rhizoctonia y
36 39
41 42
Gaeumannomyces
graminis,
solani,
INIAP. Estación Experimental del Litoral
Sur 2013.
Cuadro 5
Cuadro 6
Cuadro 7
Cuadro 8
Escala para la evaluación de Bipolaris oryzae, INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur 2013. Escala para la evaluación de Sarocladium oryzae, INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur 2013. Escala para la evaluación de manchado de granos, INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur 2013. Escala para la evaluación de incidencia y severidad de hoja blanca, INIAP. Estación
xii
42
43
43
44
Experimental del Litoral Sur 2013.
Cuadro 9
Escala general para la evaluación de
45
materiales
de arroz,
INIAP.
Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Cuadro 10 Escala
para
la
evaluación
de
vigor
48
vegetativo, INIAP. Estación Experimental
del Litoral Sur 2013.
Cuadro 11 Escala para la evaluación de altura de
planta, INIAP. Estación Experimental del
Litoral Sur 2013.
Cuadro 12 Escala para la evaluación de número de
macollos, INIAP. Estación Experimental
del Litoral Sur 2013.
Cuadro 13 Escala para la evaluación de centro blanco,
INIAP. Estación Experimental del Litoral
Sur 2013.
Cuadro 14 Escala para le evaluación de longitud de
grano, INIAP. Estación Experimental del
Litoral Sur 2013.
Cuadro 15 Escala para la evaluación de forma de grano
49
50 52 53
53
descascarado, INIAP.
Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Cuadro 16 Porcentaje de severidad de Rhizoctonia, La
Cuca, Arenillas, El Oro 2013.
Cuadro 17 Porcentaje de severidad de, Bipolaris La
Cuca, Arenillas, El Oro 2013.
xiii
55
56
Cuadro 18 Porcentaje de severidad de, G. graminis, La
Cuca, Arenillas, El Oro 2013.
Cuadro 19 Porcentaje de severidad de, Sarocladium
oryzae, La Cuca, Arenillas, El Oro 2013.
Cuadro 20 Porcentaje de severidad de, Incidencia hoja
blanca, La Cuca, Arenillas, El Oro 2013.
58
59
61
Cuadro 21
Cuadro 22
Cuadro 23
Porcentaje de Severidad de hoja blanca, La Cuca, Arenillas, El Oro 2013. Promedios de Manchado de grano, La Cuca, Arenillas, El Oro 2013. Comportamiento de 15 genotipos de arroz
62
63
65
biofortificados
a
las
principales
enfermedades, La Cuca, Arenillas, El Oro
2013.
Cuadro 25
Promedio
de
algunas
características
70
agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro
2013.
Cuadro 26
Promedio
de
algunas
características
76
agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro
2013.
Cuadro 27
Promedio
de
algunas
características
77
agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro
2013.
Cuadro 28
Promedio
de
algunas
características
78
agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro
2013.
xiv
INDICE DE IMAGENES
Figura 1.
Figura 2.
Figura 3.
Figura 4.
Figura 5.
Labores del cultivo de arroz Síntomas de Rhizoctonia Síntomas de G. graminis Síntomas de Sarocladium Oryzae Síntomas de virus de la hoja blanca
xv
103
104
105
106
107
RESUMEN
El presente trabajo de investigación se realizó en campo y laboratorio.
En campo se efectuó en el sector “La Cuca,” cantón Arenillas, provincia
de El Oro. El de laboratorio en el área de Fitopatología y del Programa
de arroz de la Estación Experimental del Litoral Sur “Dr. Enrique
Ampuero Pareja”, del Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones
Agropecuarias (INIAP). El estudio se inició el 2 de enero de 2013 y
culminó el 31 de diciembre del mismo año, el periodo de siembra fue
del 12 y 13 de marzo y la cosecha entre el 29 y 30 de julio,
correspondiente a la época seca del año, por lo que el cultivo se realizó
bajo riego.
Los objetivos del presente trabajo fueron: Evaluar la incidencia y
severidad en comparación con
cuatro variedades comerciales;
Determinar el nivel de tolerancia a las principales enfermedades y
Conocer el comportamiento agronómico.
Se utilizó el diseño de bloques completamente al azar con tres
repeticiones; las líneas estudiadas fueron, GO-00869, GO-00882, GO-
00891, GO-00897, GO-00899, GO-00901, GO-00904, GO-00911, GO-
00912, GO-00913, GO-00914, GO-00918, GO-00919, GO-00920, GO-
00921 y como testigo las variedades comerciales INIAP-14, INIAP-17,
INIAP-FL 01, S-FL 09.
De los resultados obtenidos en el ensayo experimental se logró llegar a
las siguientes conclusiones:
La línea GO-00919, fue las más tolerantes a las enfermedades
presentadas en la investigación, fue la más precoz con 92 días, tuvo
xvi
una altura de 91 cm, con 140 granos por panícula y 29 g el peso de mil
granos, la longitud de grano de 7.2 mm y un ancho 2,3 mm, con un
rendimiento de 4286 kg/ha y un índice de pilado de 65%.
Las línea con mayor contenido de hierro fue GO-00920 (22.8 mg/ L) y
la línea GO-00918 un mayor contenido de zinc (21.8 m/ L).
xvii
SUMMARY
This research was conducted in field and laboratory. Field was carried
out in the sector “La Cuca “Arenillas city in the province of El Oro
laboratory in the area of Plant Pathology and Program Rice Experiment
Station Southern Coast “Dr. Enrique Ampuero Pareja " , the
Independent National Agricultural Research Institute ( lNlAP ) . The
study began on January 2, 2013 and ended on December 31 of the same
year , the sowing period was 12 and 13 March and harvest between 29
and 30 July , corresponding to the dry season, so that the cultures were
grown under irrigation.
The objectives of this study were to evaluate the incidence and severity
compared with four commercial varieties; determine the level of
tolerance to major diseases and know the agronomic performance.
Block design was used completely randomized with three replications ;
lines were studied , GO- 00869 , GO- 00882 , GO- 00891 , GO- 00897 ,
GO- 00899 , GO- 00901 , GO- 00904 , GO- 00911 , GO- 00912 , GO-
00913 , GO- 00914 , GO -00 918 , GO- 00919 , GO- 00920 , GO- 00921
and commercial varieties witness lNlAP -14 lNlAP- 17 , lNlAP - FL 01
, S -FL 09.
From the results obtained in the experimental trial were reached the
following conclusions:
The GO- 00919 , online was the most tolerant to diseases presented in
the research, was the earliest 92 days, had a height of 91 cm , with 140
grains per panicle and 29 g the thousand kernel weight , length bead
width 7.2 mm and 2.3 mm , with a throughput of 4286 kg / ha , and an
index of 65 % milled .
xviii
The line with the highest iron content was GO- 00920 (22.8 mg / L) and
GO- 00918 online higher content of zinc (21.8 m / L).
xix
FICHA DE REGISTRO DE TESIS
TITULO Y SUBTITULO:
“Comportamiento de quince cultivares de arroz biofortificado frente a las principales enfermedades presentes en la zona la Cuca, El Oro.”
AUTOR/ES:
Christopher Wilson Suarez Palacios
TUTOR:
Ing. Agr. MSc. Leticia Vivas Vivas
REVISORES:
Ing. Agr. MSc. Leticia Vivas Vivas
Ing. Agr. MSc. Eison Valdiviezo Freire
Ing. Agr. Dds. Pedro Vera Asang
INSTITUCIÓN:
Universidad de Guayaquil FACULTAD:
Ciencias Agrarias
CARRERA: Agronomía
FECHA DE PUBLICACIÓN: N. DE PAGS:128
ÁREAS TEMÁTICAS:
Cultivo, manejo, rendimiento, laboratorio.
PALABRAS CLAVE:
Biofortificados
RESUMEN:
El trabajo de investigación se realizó en campo y laboratorio. El trabajo de campo se efectuó en el sector
el 31 de diciembre del mismo año, el cultivo se realizó bajo riego. Los objetivos fueron: Evaluar la
incidencia y severidad en comparación con cuatro variedades comerciales; Determinar el nivel de
de bloques completamente al azar con tres repeticiones; las líneas estudiadas fueron, GO-00869, GO-
INIAP-14, INIAP-17, INIAP-FL 01, S-FL 09,
presentadas en la investigación , y los valores más altos en contenido de hierro y zinc lo obtuvieron la
13,4 mg/l 8 (fe) y 19 mg/l (zn)
N. DE CLASIFICACIÓN:
DIRECCIÓN URL (tesis en la web):
ADJUNTO URL (tesis en la web):
ADJUNTO PDF: SI NO
'
xx
CONTACTO CON AUTOR/ES: Teléfono:
0994026537
2971091
E-mail:
CONTACTO EN LA INSTITUCION:
Ciudadela Universitaria "Dr. Salvador
Allende" Av. Delta s/n y Av. Kennedy
s/n Teléfono: 593-42288040
Nombre: ING. AGR. MSc. Leticia Vivas Vivas
Teléfono: 593-42288040
E-mail: [email protected]
xxi
1. INTRODUCCIÓN
El cultivo de arroz (Oryza sativa L.) es considerado como uno de los
principales cereales a nivel mundial debido a su importancia económica
y alimentaria (Sica, 2003). En Ecuador, esta gramínea representa uno de
los alimentos básicos en la dieta de los ecuatorianos (Parra, 2000). La
superficie cosechada en el 2012 fue aproximadamente de 371,170 ha
con una producción de 1,565.535 t. (INEC, 2014).
Debido a la desnutrición humana, para cubrir sus necesidades básicas de
alimentación, especialistas en agricultura se han dedicado al
fitomejoramiento de cultivos de mayor consumo, entre ellos el arroz,
incrementando su contenido de nutrientes como el hierro y zinc
llamándolos cultivos Biofortificados.
La biofortificación consiste en aplicar técnicas de fitomejoramiento que
aprovechan la variabilidad existente en los diversos cultivares, para
aumentar el nivel de éstos nutrientes en los cultivos (Nestel et al., 2006).
Uno de los cultivos en proceso de biofortificación es el arroz para el que
se están intentando mejorar sus contenidos de Fe y Zn. Existen varias
razones para la biofortificación de este cultivo, la primera porque es la
principal gramínea de consumo mundial, es el alimento básico y la
principal fuente de proteína y calorías de las poblaciones más pobres.
Actualmente en Ecuador se encuentra en fase de evaluación en campo y
laboratorio, para determinar su comportamiento, tolerancia y nivel de
contenido de hierro y zinc para su posible liberación como variedad.
En el país, el cultivo del arroz es afectado por varias enfermedades que
reducen la producción y calidad del grano. La literatura mundial reporta
1
más de 80 enfermedades causadas por hongos, bacterias, virus y
nemátodos. La incidencia y severidad dependen del momento de la
aparición del patógeno y virulencia del mismo, ambiente favorable y
susceptibilidad de la variedad utilizada; por otra parte, la introducción
de nuevas variedades de arroz, muchas veces sin los respectivos
cuidados fitosanitarios, constituye un riesgo potencial por la entrada de
enfermedades que afectan de manera significativa al sector arrocero
(Armijos, 2007). En La Cuca, provincia de El Oro existen condiciones
climáticas durante todo el año que favorecen el desarrollo de
enfermedades conocidas como quemazón, mancha marrón, tizón de la
vaina, hoja blanca, falso carbón, manchado y vaneamiento de la
panícula, debido a las constantes lloviznas y altas temperaturas, mismas
que provocan daños que fluctúan entre el 20 hasta el 60% dependiendo
del causal, susceptibilidad del cultivar y edad de la planta en que es
afectada.
El manejo integrado de estas patologías requiere un conjunto de medidas
preventivas, cuyos componentes son la resistencia genética, prácticas
culturales, control químico y biológico, teniendo como objetivo la
reducción del inóculo del patógeno a niveles tolerables (Filippi, Prabhu
y Silva 2004).
En cuanto al mejoramiento genético el Programa de Arroz del INIAP
tiene como objetivos generar cultivares de alto rendimiento, tolerantes a
las principales enfermedades y con altos contenidos de hierro y zinc,
elementos esenciales para la nutrición, especialmente en la población
materno – infantil; de esta manera contribuye con el mandato
constitucional de seguridad alimentaria.
2
En base a lo expuesto, la presente investigación tuvo los siguientes
objetivos:
GENERAL
Determinar el comportamiento de quince cultivares de arroz
biofortificados frente a las principales enfermedades del cultivo.
ESPECIFICOS.
Evaluar la incidencia y severidad de las principales enfermedades
en quince cultivares biofortificados en comparación con cuatro
variedades comerciales de arroz en la Cuca, provincia de El Oro.
Determinar el nivel de tolerancia a las principales enfermedades
en quince genotipos de arroz comparadas con cuatro variedades
comerciales.
Determinar el comportamiento agronómico de quince cultivares
de arroz biofortificados en las condiciones de La Cuca, provincia
de El Oro.
3
2. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1. La biofortificación de los alimentos
La deficiencia de micronutrientes, es un problema de salud pública a
nivel mundial y que afecta a un tercio de la población principalmente en
los países en vías de desarrollo (WHO, 2006). Dentro de las deficiencias
nutricionales más importantes y consideradas problemas de salud
pública se encuentran el hierro (Fe), zinc (Zn) y vitamina A (Hotz y
Brawn, 2004). Este tipo de deficiencias están asociadas con un bajo
desarrollo cognitivo, retrasos en el crecimiento, respuestas negativas en
el sistema inmune, entre otras (Latham, 1997).
Actualmente, una de las alternativas planteadas para combatir las
deficiencias por micronutrientes es la biofortificación de cultivos
básicos. Esta plantea el aumento en el contenido de nutrientes en la parte
comestible de las plantas mediante técnicas de fitomejoramiento
tradicional o biotecnológica (Nestel et al, 2006) (Fang-Jie y McGrath.,
2009).
La Biofortificación es una estrategia relativamente nueva y sostenible
que permite mejorar las características nutritivas de los alimentos desde
el momento de la producción, mediante el uso de diversas técnicas de
fitomejoramiento, mediante el aprovechamiento de la variabilidad
natural existente en las especies cultivadas, en cuanto al contenido de
nutrientes para elevar el nivel de los mismos mediante procesos de
selección convencional (Nestel et al., 2006).
Disminuye los efectos inhibidores de ciertos componentes de los
alimentos y mejora la calidad nutricional y la biodisponibilidad de
4
ciertos micronutrientes sin modificar los hábitos alimentarios de la
población (SENAPAN, 2011).
Se han tenido éxitos significativos en algunos cultivos tales como el
arroz con un contenido de hierro cinco veces mayor que en arroz
convencional (Haas et al., 2005)
Actualmente, la biofortificación es una de las alternativas planteadas
para combatir las deficiencias de micronutrientes a nivel mundial
(Bouis, 1996).
2.2. Descripción de las principales enfermedades del cultivo de arroz
2.2.1. Pyricularia grisea (Cooke) Sacc (P. oryzae Cav.)
La quemazón del arroz fue reportada por primera vez en Japón 1704, se
encuentra entre las principales limitaciones fitopatológicas en la
explotación del arroz (Oryza sativa L.), (González, 2002). Se encuentra
en todos los agroecosistemas de los trópicos y de las zonas templadas,
en que se cultiva el arroz comercialmente, afecta todas las partes de la
planta que crezcan sobre el nivel del suelo (Meneses et al., 2001).
En general, se distinguen dos periodos críticos en los cuales las plantas
de arroz son más susceptibles: 35 – 40 días de edad del cultivo
(infección foliar) y en floración (infección panicular) (González, 2002).
2.2.2. Organismo causal
El hongo Pyricularia grisea ocasiona la quemazón que es considerada la
más devastadora enfermedad del arroz a nivel mundial, debido a su
amplia distribución y las graves pérdidas económicas que ocasiona. Esta
enfermedad criptogámica es compleja debido a la variabilidad
5
patogénica y la rapidez con que este hongo vence la resistencia de la
planta (Ou. 1985). Las infecciones foliares P. oryzae reduce el
crecimiento de la planta, llegando a ocasionar enanismo así como el
número de panículas y el peso de 1000 semillas (Ou. 1972).
2.2.3. Taxonomía
De acuerdo a Castaño-Zapata y Del Rio (1994), la clasifica de la
siguiente manera
Hongo superior
Subdivisión:
Clase:
Orden:
Familia:
Género:
Especie
Deuteromycotina Deuteromycetes Moniliales Moniliaceae Pyricularia grisea
2.2.4. Síntomas
El hongo afecta todas las partes aéreas de la planta, hoja, nudos del tallo,
cuello de la panícula y la panícula misma. Las lesiones foliares varían
desde pequeños puntos de color café hasta manchas en forma de rombos
y diamantes de color verde oliva o gris rodeados por un halo más claro.
Los bordes de la lesión son de color pardo o pardo oscuro las lesiones
pueden crecer hasta juntarse unas con otras, la forma, color, tamaño y
número de las lesiones varían según las condiciones ambientales, edad
de la planta y grado de susceptibilidad de la variedad. Cuando la
infección ocurre alrededor de los nudos de los tallos se extienden
manchas de color café oscuro en forma de un anillo que pueden producir
6
un estrangulamiento de dichos nudos; este síntoma se observa
únicamente en las variedades más susceptibles. Cuando el nudo del tallo
se infecta, el pulvínulo de la vaina foliar se pudre, se dobla y se parte
permaneciendo unido a la vaina sólo por el septo.
La infección también ataca el cuello de la hoja y panícula, pudiendo
ocurrir el vaneamiento total de la misma si el ataque se presenta durante
la floración, la maduración puede anticiparse y se cosecharán entonces
granos vanos. Si aparecen durante el estado de plántula pueden ser muy
severos; en otras, el daño puede ocurrir durante el macollamiento
(Pantoja et al., 1997).
2.2.5. Ciclo de la enfermedad
El ciclo de la enfermedad en la naturaleza se inicia con la penetración
del tubo infectivo a través de la cutícula y la epidermis. Hifas infectivas
pueden ingresar también a través de los estomas. El tiempo requerido
para que el conidio invada la célula del hospedero varía según la
temperatura. Se ha determinado que se requiere un mínimo de 10 horas
a 32 ºC, de 8 horas a 28 ºC y de 6 horas a 24 ºC para que ocurra este
proceso. La infección se presenta con más facilidad en la oscuridad. El
período de incubación varía también según la temperatura, ya que se
requiere entre 13 a 18 días a 9 -10 ºC, 7 a 9 días a 17-18 ºC; 5 a 6 días a
24-25 ºC y entre 4 y 5 días a 26-28 ºC. La diseminación de los conidios
ocurre principalmente durante la madrugada entre las 2 y las 6 de la
mañana. Cuando aumenta la velocidad del viento se incrementa la
liberación de los conidios. La diseminación de estos por el viento
constituye la forma principal de la propagación de la enfermedad,
aunque esta puede ser diseminada también por semillas infectadas,
7
restos de plantas por conidios que caen en el área de riego (González,
2002).
2.2.6. Manejo de la enfermedad
La siembra de variedades resistentes y el empleo de fungicidas son los
principales métodos de control de la quemazón del arroz, en la mayor
parte de las regiones arroceras. El desarrollo de variedades resistentes a
P. grisea se orienta en la actualidad, hacia la combinación de genes que
resistan al ataque de diferentes razas genéticas del hongo. Por otro lado,
las diferentes prácticas del cultivo del arroz, manejo de agua,
fertilización, densidad de siembra y elección de una variedad mejorada,
desempeñan por si solas un papel muy importante en el desarrollo de la
enfermedad (Meneses et al., 2001).
Se necesita nivelación preparación adecuada del suelo, con un manejo
adecuado del agua, oportuna aplicación y dosificación de fertilizantes
(especialmente con nitrógeno), uso de semilla certificada, control de
malezas y la utilización de fungicidas (tratamiento de semilla y
aspersiones foliares) son alternativas para reducir la incidencia de esta
enfermedad (Rodríguez, Nass y Arteaga. 1993).
2.3. Rhizoctonia solani Kuhn
El tizón de la vaina es una de las principales enfermedades en las
regiones arroceras de Asia y Estados Unidos. Se califica de alto riesgo
en varios países de América Latina como Brasil, Argentina, Uruguay,
Venezuela, Colombia, Costa Rica y México (Fedearroz, 2000).
8
En Colombia se han reportado pérdidas de hasta un 40 % en el
rendimiento; temperaturas elevadas (30 °C), alta humedad relativa (más
de 96 %), alta densidad de siembra, macollamiento abundante y exceso
de fertilización nitrogenada, son factores que favorecen el desarrollo de
la enfermedad (Prado et al, 2001). En Ecuador la incidencia está en
incremento (Espinoza, 2007). Posee un amplio rango de hospedantes,
en las regiones arroceras afecta 188 especies de 32 familias botánicas,
principalmente gramíneas, leguminosas, ciperáceas y cucurbitáceas
(aunque la especies que afecta al cultivo de arroz es R. solani grupo
intraespecifico AG 1 – 1A (Rush y Lee, 1992).
2.3.1. Organismo causal
Rush y Lee, (1992) indican que el agente causal es el hongo Rhizoctonia
solani Kuhn grupo anastomosis AG- 1 y grupo intraespecifico 1A.
Este hongo sobrevive en el suelo por largos períodos de tiempo en
ausencia de hospederos, mediante estructuras reproductivas llamadas
esclerocios o por medio de hifas de pared gruesa sobre residuos de
plantas, al conservar estas características de patógeno no especializado,
es un buen competidor saprófito, puede colonizar muchos sustratos y
puede tolerar cambios amplios de ambiente, esta condición le favorece
tanto para su supervivencia como para su acción patógena sobre tejidos
juveniles o en estrés fisiológico (González, 1989).
Se ha reportado la existencia de más de siete tipos y más de seis razas
del hongo (Pantoja., et al 1997). El tizón de la vaina dependiendo de la
especie tiene varios sinónimos: añublo de la vaina (Rhizoctonia solani),
mancha de la vaina (Rhizoctonia oryzae) y mancha agregada de la vaina
9
(Rhizoctonia oryzae-sativae) (Rush, 1992; Ou, 1972). En Ecuador se
conoce de la ocurrencia de R. solani y R. oryzae-sativae (INIAP, 2011).
2.3.2. Taxonomía
De acuerdo a Agrios, (2004) ha sido clasificado como:
Hongo superior
Subdivisión:
Clase:
Orden:
Género:
Especie:
Deuteromycotina Agonomycetes Agonomycetales (Myceliales) Rhizoctonia R. solani
2.3.3. Síntomas
No aparecen hasta que la planta está en la fase de macollamiento.
Ocasionalmente, se encuentran en plantas jóvenes, los síntomas
consisten en una mancha verde grisácea circular o elíptica de 1 cm de
longitud que se da en la vaina de la hoja cerca de la línea de agua. La
lesión se alarga aproximadamente de 2 a 3 cm de longitud y 1 cm de
diámetro y en el centro de la lesión se aprecia un tono verde pálido o
blanco y rodeado por un borde irregular café purpura (Prado et al, 2001;
Rush y Lee, 1992). Las lesiones pueden unirse causando la muerte de las
hojas superiores (Cheany y Jennings, 1975).
Con condiciones favorables para la enfermedad como baja luminosidad,
humedad cerca del 95 % y altas temperaturas (28 a 32 °C) la infección
se extiende rápidamente hacia la parte alta de la planta incluyendo la
hoja bandera. Los esclerocios son producidos superficialmente en o
10
cerca del tejido infectado después de que aparecen los primeros
síntomas (próximo a los 6 días) y no están muy adheridos ya que
fácilmente se desprenden de la planta cuando están maduros (Rush y
Lee, 1992). Inicialmente son blancos y luego se tornan a café oscuro
(Espinoza, 2007). Teniendo la capacidad de sobrevivir en el suelo al
momento de la preparación de la siembra y posteriormente con el riego,
inician la infección al entrar en contacto con los tallos de la planta
(Correa, 1997).
Plantas muy infectadas particularmente en la porción baja de la panícula
producen granos vanos. Hay pérdidas en el rendimiento por la reducción
de los macollos como resultado de la muerte del tallo (Rush y Lee,
1992).
2.3.4. Ciclo de la enfermedad y epifitología
La enfermedad se desarrolla rápidamente durante la fase vegetativa y
llenado del grano. Los esclerocios flotantes en el arrozal tienden a
acumularse alrededor de la planta y la interface con el agua, entonces la
infección ocurre a nivel de la línea de agua. Los esclerocios y los
fragmentos escleróticos pueden iniciar el crecimiento de hifas
rápidamente, sobreviven en las áreas templadas y se acumulan en el
suelo a través del tiempo. En suelo seco los esclerocios pueden vivir 21
meses. La amplia adopción de nuevas variedades de porte bajo
susceptibles y los cambios en las prácticas culturales asociados con estos
cultivos favorecen al desarrollo del tizón de la vaina y han contribuido
para que haya aumentado la incidencia del daño en áreas de producción
de arroz en todo el mundo, debido a que requieren altos contenidos de
nitrógeno. Los factores de alta humedad, favorecen el desarrollo
11
temprano de la enfermedad en la etapa de crecimiento, lo que hace que
la enfermedad sea más severa (Rush y Lee, 1992).
2.3.5. Manejo de la enfermedad
Para la clave del manejo de las enfermedades está en conocer la
sintomatología y epidemiología del patógeno, las cuales permiten
establecer labores económicas y efectivas para controlar la enfermedad
reducir los problemas ocasionados se recomienda:
Manejar adecuadamente el agua drenando 5-7 días en el estado de
máximo ahijamiento (Infoagro 1997). Usar semilla certificada, sembrar
con densidades adecuada, fertilización balanceada y sobre todo
considerar la cantidad adecuada de potasio, realizar rotación de cultivos
cuando sea posible, arar profundamente el suelo para enterrar los
propágulos del hongo, inundar el suelo por dos semanas después del
arado, mantener el nivel del agua bajo para impedir infecciones en las
partes altas de la planta, Se deben destruir las socas del cultivo, ya que
sobre las vainas quedan adheridos los esclerocios que germinan en
condiciones favorables. La destrucción de hospederos de R. solani se
debe realizar de forma continua, especialmente las malezas gramíneas y
cyperáceas (Pabón, 1994).
2.3.6. Control químico
Ha sido la única solución al problema de la enfermedad del Añublo de la
vaina, especialmente en Japón y toda Asia. El periodo de control
químico se ejerce desde el estado de formación de la panícula hasta su
emergencia. El desarrollo de lesiones en la parte superior de la planta es
más serio que el mismo número de macollas afectadas. El tiempo más
12
adecuado para el control químico es el tiempo de desarrollo de las
lesiones de la vaina en la cuarta hoja antes que se extienda hacia la
tercera, lo cual coincide entre 5 a 15 días antes de la floración. Este es el
periodo más altamente asociado con pérdidas en un cultivo comercial
(Correa-Victoria, 1992).
2.4. Gaeumannomyces graminis var. graminis (Sacc.) Arx & D. L.
Olivier
El mal del pie está muy difundido en zonas de monocultivo y se sabe
que ha causado una considerable disminución del rendimiento en trigo,
especialmente cuando se emplean prácticas de encalado o labranza
mínima (Prescott, Burnett y Saari, 1986). Este hongo hasta ahora se ha
considerado como de incidencia secundaria sobre el cultivo, es necesario
profundizar en aspectos como el manejo químico y biológico del
patógeno, las épocas de control y las medidas culturales más pertinentes
para evitar niveles de infestación altos que puedan llegar a causar
pérdidas económicas (Ospina, 2010). El micelio de Gaeumannomyces
graminis puede permanecer por dos a tres años en el suelo (Smith,
1994).
2.4.1. Organismo causal
G. graminis forma ascosporas que tienen poca importancia, ya que la
diseminación es fundamentalmente de planta a planta a través de las
hifas que el hongo desarrolla en el suelo, haciendo puentes entre raíces
enfermas, pasando así de las plantas infectadas o restos de rastrojo del
cultivo antecesor (donde subsiste como saprófito) a un hospedero
cercano susceptible. Las pérdidas de rendimiento varían con el tipo de
13
suelo, sistema de labranza, las rotaciones y las condiciones climáticas;
estimándose que en ataques severos la merma de rendimiento puede
alcanzar hasta un 50 %. Cuando ocurren infecciones moderadas y no se
observan los síntomas característicos de la enfermedad en la parte aérea,
las pérdidas de rendimiento pueden llegar a 10 %. Dentro de esta
especie, actualmente se incluyen tres variedades: graminis, avenae y
tritici, todas ellas con un rango de hospedantes en gramíneas
(SINAVIMO, 2010). En Ecuador se ha identificado a G. graminis var
graminis en plantaciones arroceras de las principales zonas productoras
de arroz (INIAP, 2011).
2.4.2. Taxonomía
De acuerdo a SINAVIMO, (2010), la clasifica de la siguiente manera
Dominio:
Reino:
Phylum:
Clase:
Subclase:
Familia:
Género:
Especie:
Eukaryota Fungi
Ascomycota
Ascomycetes
Sordariomycetidae
Magnaporthaceae Gaeumannomyces graminis
2.4.3. Síntomas
El síntoma típico de esta patología es la presencia de una lesión de
forma irregular y coloración oscura en la vaina de la hoja, en la base de
los tallos, a la altura de la lámina de agua. En los predios afectados,
suele observarse una maduración prematura de la planta e incluso la
14
muerte de las macollas secundarias, dependiendo de la fase de desarrollo
de la planta en que se produzca la infección. Es común, que los síntomas
antes descritos se confundan con los del añublo de la vaina causado por
Rhizoctonia solani. Según Whitney (1990), una vez que se presenta la
lesión en la vaina de la hoja, ésta se extiende por la misma de manera
ascendente causando un anaranjamiento que alcanza la lámina de la hoja
afectada. En los estadios iniciales de infección, puede observarse un
micelio café oscuro en la cara interna de las vainas de las hojas
afectadas. Las plantas enfermas en estado de maduración muestran una
decoloración marrón que se inicia a la altura de la lámina de agua y se
extiende en las vainas y láminas de las hojas restantes. En este punto, se
hacen visibles los peritecios como puntos negros inmersos en el tejido
enfermo en la zona donde se produjo la infección inicial (Ospina, 2010).
En ataques severos las plantas manifiestan crecimiento reducido o
enanismo, desuniformidad de altura, bajo número de macollas, clorosis,
retraso de la floración, pobre llenado del grano y senescencia anticipada
(SINAVIMO, 2010).
2.4.4. Ciclo de la enfermedad
Las ascosporas de G. graminis var. graminis, infectan a la planta a nivel
de las vainas de las hojas basales exteriores, la penetración puede ser
directa o por la formación de apresorios, después el micelio se disemina
internamente formando un enrollamiento de hifas entre la vaina,
finalmente se infecta el tallo y la cámara de aire de la vaina de las hojas
se llenan con ovillos de hifas las cuales maduran en peritecios. Además,
el hongo es capaz de diseminarse a través de la semilla, infectando
alrededor del 1 al 2 % de las plántulas (Ou, 1985).
15
G. graminis var. graminis, puede atacar al cultivo en cualquier estado
de crecimiento cuando las plantas son arrancadas, las raíces no ofrecen
resistencia y el sistema radical se encuentra total o parcialmente
destruido. Cuando se lavan las raíces puede observarse en las mismas
una pudrición de color negro, donde se evidencia la presencia de costras,
constituidas por el micelio del hongo que se extienden hasta el primer
nudo de la planta. Si las infecciones ocurren tarde la enfermedad no
provoca disminuciones importantes en la altura de las plantas, pero
puede provocar aborto floral y espigas blancas. La muerte de la planta
determina la madurez precoz de algunas espigas con la formación de
granos vanos (SINAVIMO, 2010).
Filippi, Prabhu, y Silva. (2004) reportan que el hongo G. graminis ha
sido observado en diferentes malezas del grupo de las gramíneas como:
Leptochloa sp., Cynodon sp., Chloris sp., Pennisetum sp., Stenotaphrum
sp., Triticum sp. y Axonopus sp., las cuales pueden constituirse como
hospederos alternativos para el patógeno en el cultivo de arroz. De la
misma manera, se ha determinado que este hongo sobrevive en residuos
de cosecha y puede ser diseminado por el agua o el viento.
2.4.5. Manejo de la enfermedad
La pica y quema es una práctica que tiene por objeto reducir el potencial
del inóculo, mediante la destrucción de las estructuras de conservación y
de propagación de los patógenos formados durante la campaña agrícola
anterior, uno de los factores que favorecen el desarrollo de las
enfermedades por hongos del suelo es la lámina de agua, se ha
observado que los campos con mala nivelación o con lámina de agua
alta presentan altos niveles de severidad, las láminas de agua baja,
16
permite que aquellas vainas fuertemente afectadas mueran y caigan
impidiendo que el patógeno siga penetrando en las demás vainas hasta
alcanzar los tallos (Garrido, 2009).
2.5. Bipolaris oryzae Breda de Haan
La mancha marrón u ojo de pájaro es causado por B. oryzae. Este
patógeno se encuentra distribuido en todos los sistemas de siembra, y
está asociado con la fertilidad del suelo y daños radicales. El hongo
ataca en cualquier etapa del cultivo, pero la incidencia más severa ocurre
al final del ciclo, cuando el hongo alcanza la panícula (Nass y
Rodríguez, 1983).
Ataca plántulas, hojas y granos en formación. Esta enfermedad afecta al
arroz de secano y se encuentra en áreas más drenadas y en suelos que
sufren fertilización reducida, o la acumulación de sustancias toxicas,
esta enfermedad no es grave en plantas bien nutridas (Cheany y
Jennings, 1975).
Esta enfermedad ha causado epidemias en muchas regiones arroceras de
África, Asia y América ubicadas tanto en el trópico como en las zonas
subtropicales y templadas (Guzmán, 1997).
2.5.1. Organismo causal
El hongo B. oryzae, se caracteriza por su micelio de color oscuro y
apariencia aterciopelada, el mismo que consta de hifas postradas,
ramificadas y abundantes. Sobre ellas se levanta conidióforos más o
menos erectos que se inician como ramas laterales en las hifas, el
micelio puede permanecer en un tejido infectado más de tres años. Las
17
conidias sobreviven en los granos infectados hasta cuatro años y, en
ciertas condiciones, sobreviven en el suelo (Guzmán, 1997).
2.5.2. Taxonomía
De acuerdo a Martínez et al, (2006) su taxonomía es la siguiente:
Reino: Fungi
División: Ascomycota
Clase:
Orden:
Dothideomycetes Pleosporales
Familia: Pleosporaceae
Género: Bipolaris
Especie: oryzae, (Breda de Haan) Shoem
2.5.3. Síntomas
Los síntomas de la enfermedad se observan generalmente en las glumas
de los granos y en las hojas. Pueden verse también en otras partes de la
planta como coleóptilo, vaina foliar, raquis de la panícula. En hojas, las
lesiones típicas son de forma ovalada y tamaño variado, se distribuyen
en toda su superficie. Las manchas jóvenes son de color café y tiene un
halo amarillo a medida que crece su centro adquiere una coloración gris.
En los granos, las manchas son de color negro o café oscuro; en ataques
severos la mancha cubre toda la superficie del grano; en ciertos casos, el
hongo penetra en las glumas y causa manchas negruzcas en el
endospermo (Guzmán, 1997).
18
2.5.4. Ciclo de la enfermedad
El hongo es transportado en la semilla y puede permanecer viable hasta
por cuatro años. La enfermedad comúnmente aparece en suelos con
problemas de desorden nutricional, fundamentalmente del nitrógeno o
con deficiencias de nutrimentos, como potasio, manganeso, magnesio,
silicio, hierro y calcio. También influyen otros factores como
compactación del suelo, daños radicales de insectos, estrés hídrico, entre
otros, al promover alteraciones fisiológicas en la planta, particularmente
durante la fase reproductiva (INIA, 2004).
La enfermedad se desarrolla con éxito cuando la temperatura oscila
entre 25 y 30 ºC y la humedad relativa es superior al 89 %. El agua libre
depositada en las hojas (rocío) favorece la infección. Las plantas son
más susceptibles al patógeno cuando el suelo está seco. La infección
aumentará, por tanto, cuando el riego es deficiente, si dos de estas
condiciones se combinan (humedad relativa alta y humedad del suelo
baja) se inhibe en las plantas la absorción de Si y K del suelo. En
consecuencia, disminuye el contenido de SiO2 y K2O en las hojas,
condición que incrementa la susceptibilidad de la planta (Guzmán,
1997).
2.5.5. Manejo de la enfermedad
La semilla certificada reduce los riesgos de aparición de la enfermedad,
el uso de arroz paddy, en cambio, incrementa la fuente del inóculo
inicial, otra medida de manejo es realizar rotación de cultivos. Se debe
ajustar la fecha de siembra para que la etapa reproductiva del arroz no
coincida con periodos de alta humedad relativa. Proporcionar a las
19
plantas una nutrición balanceada basada en el análisis de suelos,
especialmente los elementos menores como Zn, B, Mn. La frecuencia
del riego y su duración deben ajustarse a la textura del suelo en que se
sembró el cultivo; por ejemplo, si la incidencia del inóculo va de
moderada a alta y el suelo es arenoso, los riegos muy separadas (4 a 5
días) elevan la incidencia del patógeno, no ocurre lo mismo si el suelo es
arcilloso (Guzmán, 1997).
2.6. Sarocladium oryzae Sawada / Gams y Hawks
Las pérdidas causadas por el hongo S. oryzae varían de un país a otro en
dependencia de las condiciones ambientales y de las variedades de arroz
en producción. En Taiwán la presencia de este hongo en variedades
susceptibles ha provocado la esterilidad, vaneado y decoloración de la
semilla, con pérdidas estimadas entre un 20-60% (Tschen et al, 1997)
En Ecuador por primera vez se constató su presencia en 1975. En los
años subsiguientes su ocurrencia fue de poca importancia; recién en el
segundo semestre del 2004 fue observada causando estragos en
plantaciones arroceras del área de la Estación Experimental Boliche
(INIAP) registrándose un 40% de manchado en las vainas y 14% en los
granos. Este incremento de infección de la “pudrición de la vaina” pudo
estar relacionado a las condiciones ambientales que se registraron en la
época seca del 2004, en que se prolongó el ciclo por descenso de
temperatura (Espinoza, 2007). Este patógeno se manifiesta activamente
en las vainas foliares, deteriorando la calidad y cantidad de la cosecha.
En algunos países ha causado pérdidas hasta de 85 % (Correa, 1997).
20
2.6.1. Organismo causal
Esta enfermedad fue descrita por primera vez por Sawada en 1912. Se
reportó primero en Taiwán y es un problema fitopatológico serio. El
organismo que la causa se clasifico inicialmente como Acrocylindrum
oryzae. Actualmente se conoce como Sarocladium oryzae (Sawada) W.
Gams et D. Hawksw.
En 1956, Gams y Hawksw identificaron otra especie que causaba
síntomas similares a S. oryzae en arroz y la nombraron S. attenuatum
(Ou. 1985 b). Bridge et al., 1989 realizando estudios de análisis
bioquímicos y morfogenéticos, concluyeron que ambas especies eran
idénticas. Por tanto S. attenuatum es sinónimo de S. oryzae. El hongo
produce conidióforos verticales con una o dos ramificaciones. En la
parte terminal de los conidióforos se forman las conidias, las cuales son
cilíndricas y en algunas ocasiones curvas; son hialinas y unicelulares.
2.6.2. Taxonomía
Reino:
Phylum:
Clase:
Familia:
Género:
Especie:
fungi
“mitospóricos”
Hyphomycetes
Moniliaceae
Sarocladium
oryzae
2.6.3. Síntomas
Las lesiones aparecen en las vainas de las hojas superiores y en la vaina
de la hoja bandera, estas lesiones son oblongas y alargadas con borde
21
café y centro grisáceo. A medida que la enfermedad progresa, las
lesiones se alargan y coleasen, cubriendo gran parte de la vaina de la
hoja. Infecciones severas y tempranas. Los síntomas de la enfermedad
aparecen en la fase de embuchamiento, comienzo de la formación de la
panícula. La manifestación consiste en la pudrición de la vaina desde la
hoja bandera, afección que impide la emergencia de la panícula. Esta
enfermedad está también asociada con el manchado y el vaneo del grano
(Sandoval y Bonilla, 2001)
En estudios realizados se comprobó que éste reduce el peso de los
granos, la germinación de la semilla y el contenido de proteínas (Estrada
et al., 1984). Además redujo la longitud de la raíz y del tallo
(Velazhahan, Ramabadran y Sudhakar., 1989).
Las lesiones en sus inicios se caracterizan por formar manchas
redondeadas e irregulares de 0,5 a 1,5 cm. de largo, con margen café y
centro gris, en ocasiones las lesiones se alargan y coalescen hasta cubrir
completamente la vaina. Si la humedad es alta, entre la vaina infectada y
el tallo, el hongo desarrolla un polvillo blanco o rosado compuesto por
micelio y conidios. El agrandamiento de una mancha o la unión con
otras puede llegar a cubrir y rodear totalmente la vaina. También suele
evidenciarse en las vainas decoloraciones difusas de color marrón
rojizas. (Correa-Victoria, 2005)
Las infecciones en la hoja bandera iniciados en embuchamiento causan
interferencia con la emergencia total de la panícula. Las panículas que
no emergen o lo hacen parcialmente, tienden a pudrirse y las glumas se
colorean de marrón oscuro o marrón rojizo, observándose granos vanos
22
o parcialmente llenos y arrugados. El hongo, se desarrolla en la
superficie interna de la vaina (INIA, 1988-2002).
2.6.4. Ciclo de la enfermedad
S. oryzae es capaz de sobrevivir en granos de arroz infectados por más
de 12 meses. En la India sobrevivió en la paja de arroz infectada hasta
10 meses. Las semillas infectadas generalmente germinan sin mostrar
lesiones aparentes, hasta la fase de embuchamiento, momento en que
comienzan a desarrollarse los síntomas visibles (Milagrosa, 1987).
Lo que asevera que la transmisión es fundamentalmente por semilla,
aunque también puede penetrar a la planta por los estomas o por heridas
y en ocasiones, atravesando el tejido de la vaina una vez ha penetrado en
la planta crece intracelularmente (Crop Protection Compendium, 2004).
Este hongo ha sido encontrado en la cubierta, en el endospermo y en el
embrión de semillas manchadas (Neninger et al., 2003).
Siendo también favorecidas por bajos niveles de nitrógeno, altas
densidades de siembra, humedad relativa mayor del 90 % y
temperaturas que oscilan entre los 20 – 25 °C. S. oryzae provoca una
reducción en la germinación del arroz entre el 11 y 32.7 % y retarda de 7
a 11 días esta etapa del cultivo. Cuando la intensidad de la enfermedad
es severa el manchado de las panículas puede ser del 78 al 100 %.
Este patógeno tiene como hospederos alternos algunas malezas y el
bambú. Reportes de literatura sugieren que aislamientos de este hongo
provenientes de malezas son capaces de infectar al arroz. Otras plantas
pueden ser infectadas de manera natural por este hongo destacándose
entre ellas: Algunas arvenses (Cyperus iria, C. tenneriffae, C. difformis,
23
Echinochloa cruss-galli, Eleusine indica y Monochoria vaginalis) han
sido calificadas como hospederas secundarias en campos de arroz, las
que actúan como una fuente natural de inóculo en áreas endémicas. En
el caso de Echinocloa colona puede conservarse en la inflorescencia
hasta por 7 meses en condiciones de almacenamiento (Crop Protection
Compendium, 2004).
2.6.5. Manejo de la enfermedad
Debido a la forma de conservación y diseminación de este patógeno, las
medidas de control deben estar dirigidas a frenar éstos. Dentro de este
control, las medidas más eficaces han sido:
Control cultural; Uso de semillas certificadas debido a que S. oryzae se
transmite por semillas tanto interna como externamente. Eliminar restos
de cosechas y arvenses que puedan ser fuentes de inóculo en el campo.
La aplicación de fertilizantes potásicos que disminuyan el índice de la
enfermedad, con un correspondiente incremento en el rendimiento del
grano (Jayasekhar y Prasad, 1989)
Resistencia varietal; Se trabaja intensamente en la selección de
variedades resistentes a la pudrición de la vaina, pero aún solo unas
pocas variedades de arroz muestran resistencia a esta enfermedad.
Control químico; Teniendo en cuenta que es un patógeno que se
transmite fundamentalmente por semilla se recomienda la desinfección
de la misma con los ingredientes activos benomil Las combinaciones de
fungicidas (carbendazim) (IIA, 2006) (Das et al., 1997)
24
2.7. Pseudomonas spp.
Entre las bacterias patógenas del arroz se menciona a Pseudomonas
cepacia, la cual puede producir síntomas que incluyen el tizón y
pudrición de plántulas y granos, los cuales a menudo son considerados
como manifestaciones de una enfermedad conocida en Colombia como
añublo bacterial del arroz (Devescovi et al., 2007).
Se ha considerado la enfermedad con mayor importancia en este cultivo
(Ham, Melanson y Rush., 2011). Esta enfermedad fue reportada por
primera vez en el distrito de Kyushu en Japón (Goto y Ohata, 1956).
En campos de arroz severamente afectados por P. cepacia, P.
fuscovaginae se han reportado pérdidas del 75 % de la producción,
debido a que la bacteria causa varios tipos de daño como: inhibición de
la germinación de la semilla, añublo de la panícula, pudrición de vainas,
esterilidad de flores y aborto del grano (Shanjahan et al., 2000; Jeong, et
al. 2003; Nandakumar et al., 2009).
2.7.1. Organismo causal
En el año 1987 Zeygler y Álvarez en el CIAT hacen el primer reporte
como complejo bacteriano del arroz. Consistente en una decoloración y
vaneamiento del grano, descrita como P. cepacia, conocida como
añublo bacterial de la panícula del arroz. Expresándose con mayor
incidencia y severidad en la fase de floración, ocasionando esterilidad en
las espiguillas (Rivera, 2011).
Esta bacteria se caracteriza por presentar bacilos Gram negativos (-) con
1 a 7 flagelos polares, sin esporas, mide 1,5-2,5 μm de largo x 0,5-0,7
μm de diámetro, y no produce pigmento fluorescente sobre medio King
25
B. Las colonias son de crecimiento lento, circulares, elevadas y con
márgenes lisos (Ou, 1985; Saddler, 1994).
Se han encontrado cuatro especies de Pseudomonas causando:
Pudriciones en la vaina del arroz, grano manchado y esterilidad (Rivera,
2011).
· Pseudomonas fuscovaginae: Pudrición bacterial de la vaina del arroz
· Pseudomonas syringae: Rayado bacterial
· Pseudomonas avenae: Pudrición bacterial de la vaina
· Pseudomonas cepacia (Burkholderia glumae): Pudrición bacterial del
grano.
2.7.2. Taxonomía
La clasificación y taxonomía de Pseudomonas ha estado en continuo
cambio a medida que las técnicas comparativas de alineamiento de ARN
ribosómico (ARNr) 16S mejoraban. El género Pseudomonas se
clasificaron dentro de cinco grupos basados en la homología del ARNr,
posteriormente, a principios de los años 90, los miembros del grupo I se
mantuvieron como pertenecientes al género Pseudomonas, pero las
cepas descritas a los grupos II, III, IV y V pasaron a considerarse como
nuevos o preexistentes géneros (Palleroni et al; 1973).
Especies de Pseudomonas agrupadas según el grado de identidad de sus
ARNr. Los grupos II, III, IV y V, están actualmente ubicados en nuevos
géneros de alpha proteobacteria, cuyo nuevo nombre se presenta entre
paréntesis.
26
P. aeruginosa, P. fluorescens, P. putida, P. chlororaphis, P. syringae, P.
cichorii, P.stutzeri, P. mendocina, P. alcaligenes, P. pseudoalcaligenes,
P. agarici, P. ngulata, P. fragi, P. synxantha, P. taetrolens, P.
mucidolens, P.oleovorans, P. resinovorans
P. (Burkholderia) cepacia, P. gladioli, P. caryophylli, P. (Alcaligenes) pseudomallei, P. mallei, P. (Ralstonia) solanacearum,
P. (Ralstonia) pickettii, P. pyrrocinia, P. andropogonis
P. (Comamonas) acidovorans, P. (Comamonas) testosteroni, P.
saccharophila, P. facilis, P. delafieldii, P. alboprecipitans, P.
palleronii
P. diminuta, P. vesicularis
Pseudomonas spp., X. (Xanthomonas) maltophilia, P. geniculata, P. gardneri
2.7.3. Síntomas
Los síntomas de la enfermedad se pueden presentar en las plántulas, en
la vaina de la hoja bandera y en las panículas. Las espiguillas afectadas
son de color pajizo, decoloración del grano, pudrición y vaneamiento.
La bacteria se multiplica rápidamente y los síntomas aparecen desde la
emergencia de la panícula.
Según Jeong et al. (2003) los síntomas aparecen a los 3 días después de
inocular las panículas, aumentando el número de afectadas en forma
gradual, observando la mayor incidencia 10 días después de la
inoculación; las panículas enfermas son focos de infección para
diseminar la enfermedad. Las enzimas degradativas y la toxina
Toxoflavin juegan un papel importante en la patogenicidad de la
bacteria (Rivera, 2011).
27
El proceso de infección depende de la susceptibilidad varietal, de la
densidad del inóculo y los factores climáticos que juegan un papel muy
importante en la incidencia y severidad de la enfermedad.
2.7.4. Ciclo de la enfermedad
La enfermedad se desarrolla en condiciones de alta temperatura,
humedad relativa y precipitaciones frecuentes. Se considera que esta
enfermedad puede ocurrir más frecuentemente en países tropicales y
semi-tropicales durante épocas de siembra con temperaturas más altas
de lo normal (Diago et al., 2009; Ham, Melanson y Rush., 2011).
El período más susceptible para la infección, es durante la emergencia
de la panícula, observándose el síntoma tres días después de la floración
e incrementando su incidencia y severidad hasta la etapa de grano
lechoso a pastoso. La bacteria produce una toxina llamada Toxoflavin,
la cual avanza por los tejidos verdes, tanto en: tallos, vainas, hojas y
granos. Esta toxina causa taponamientos de los haces vasculares,
originando el vaneamiento y decoloración del grano, por la capacidad de
movimiento de la toxina dentro de los haces vasculares. La enfermedad
puede transmitirse en forma directa a través de semillas, a partir de lotes
infectados o de malezas hospederas. La bacteria puede entrar a la planta
a través de los estomas y se multiplica en los espacios intercelulares del
parénquima (Rivera, 2011).
2.7.5. Manejo de la enfermedad
Pseudomonas cepacia P. fuscovaginae pueden ser erradicadas de la
semilla, mediante tratamiento térmico a 65 °C durante seis días, sin
28
efectos considerables en la germinación (Zeigler y Álvarez, 1989;
Agbagala, 1997).
Manejo cultural, aunque se ha centrado en la reducción de la
fertilización nitrogenada para minimizar la severidad, esta actividad no
ha sido muy exitosa en el manejo de la enfermedad (Groth, 2010).
Poseen varios hospedantes entre ellos se destacan las malezas
pertenecientes a los géneros Andropogon, Eleusine, Eragrostis, Lolium,
Panicum, Paspalum, Pennisetum y Setaria.
Se puede reducir la severidad manejando la densidad de siembra, ya que
altas poblaciones de plantas incrementan la humedad ambiental en el
cultivo y predispone a la planta al ataque de patógenos. Corregir factores
que ocasionan stress al cultivo, como suelos compactados, competencia
con malezas, aplicación tardía de herbicidas, mal manejo del agua,
competencia con arroz rojo y desbalance nutricional reducen los daños
ocasionados por estos patógenos (Rivera, 2011). El control químico no
es positivo debido a que la bacteria se moviliza dentro de la planta muy
rápidamente.
2.8. Rice Hoja Blanca Virus (RHBV)
La enfermedad de la hoja blanca es exclusiva de las Américas,
reportándose por primera vez en Colombia a mediados de 1930, luego
en Cuba en 1946 se observaron los primeros síntomas de la enfermedad;
resurgió en forma epidémica la virosis en 1950 y causó en esa época
grandes pérdidas en el rendimiento de las zonas arroceras del Caribe,
América Central, y de la parte norte de América del Sur. La última
epidemia de ésta enfermedad ocurrió en Colombia en 1982 causando
29
pérdidas en rendimiento entre 25 a 75 % en la variedad Cica 8 (Meneses
et al., 2001).
Las epidemias del RHBV se han presentado de forma cíclica,
alcanzando picos máximos cada 7 a 15 años, intercaladas por períodos
de bajos niveles de infección. Las dos primeras epidemias del RHBV se
presentaron durante las décadas de 1950 y 1960, después la enfermedad
desapareció virtualmente. En 1981, serios brotes se presentaron
nuevamente en Colombia, Ecuador y Venezuela causando pérdidas del
100 % (Vargas 1985 citado por Zeigler.,et al. 1988, Calvert et al. 2005ª)
En Ecuador Vera (1971) realizó la primera investigación sobre la
distribución y comportamiento del vector del virus causante de la hoja
blanca
2.8.1. Síntomas
La enfermedad del virus de la hoja blanca es trasmitida por el insecto
Tagosodes orizicolus (Muir) llamando comúnmente sogata. El insecto
comienza a alimentarse de las plantas desde que estas tienen pocos días
de germinadas; pero el daño principal es la inoculación del agente causal
del virus de la hoja blanca (VHB). Se observa los primeros síntomas en
las plantas afectadas, en función de la edad de las mismas, estos son
apreciados en las hojas que emergen después la inoculación del virus y
consisten en áreas cloróticas o en lesiones típicas en dependencia de la
variedad (Meneses et al., 2001).
Calvert y Reyes (1999) dicen, que el virus de la hoja blanca, infecta al
cultivo y es letal para el insecto. Los síntomas de esta virosis en la
planta son, puntos amarillentos bien definidos sobre el verde normal de
30
la hoja, formando estrías discontinuas blancuzcas paralelas a las venas.
Los puntos y rayas se fusionan a lo largo y ancho de la lámina foliar
conformando bandas blancuzcas de bordes o márgenes irregulares. En el
campo los síntomas pueden confundirse con albinismo, toxicidad por
graminicidas sistémicos, toxicidad por herbicidas.
El virus se mueve sistémicamente causando clorosis general,
atrofiamiento general y marchitez temprana. Las panículas de plantas
infectadas pueden ser completamente estériles con glumas deformes y
descoloridas (Zeigler, Rubiano y Pineda. 1988).
2.8.2. Taxonomía
El RHBV pertenece al género de los Tenuivirus, cuyo virus tipo es el
virus del rayado del arroz (RSV: Rice stripe virus). Este género se
caracteriza por ser transmitido de forma propagativa por delfácidos
(Falk y Tsai, 1998).
2.8.3. Ciclo de la enfermedad
El RHBV se multiplica tanto en la planta como en su insecto vector T.
orizicolus y tiene dos mecanismos de transmisión, uno vertical (de la
hembra a su progenie) y otro horizontal (planta-insecto-planta) El
primero y principal corresponde a la transmisión transovarial ya que
presenta alta eficiencia (80%) y las ninfas al nacer son transmisoras. El
segundo tipo es menos eficiente debido al periodo prolongado de
incubación en el vector posterior a la adquisición, el cual es de 36 días
(Zeigler, Rubiano y Pineda. 1988).
31
2.8.4 Hospederos
Existen algunas malezas que se presentan en el cultivo de arroz
principalmente gramíneas, que son hospedantes naturales del virus de la
hoja blanca, siendo las principales Echinochloa colonum, E. crusgalli,
Cyperus rotundus y el arroz negro. Muchas de las plantas hospederas se
manifiestan asintomáticas, pero son portadoras del virus, constituyendo
una fuente de inóculo poco visible (Armijos, 2007).
2.8.5. Manejo
Las estrategias de control se han centrado en el uso de insecticidas
dirigidos a sogata; sin embargo, el uso indiscriminado de plaguicidas
(piretroides, órganofosforados monocrotofos, órganoclorados, entre
otros) ha provocado el desarrollo de resistencia por parte de la plaga,
serios problemas a la salud humana y animal, además de altos costos
tanto económicos como ambientales (Torres y Capote, 2004).
Medidas culturales consisten en eliminación de soca y control eficiente
de malezas con el fin de reducirlos hospederos de la plaga.
Para el manejo del insecto se debe considerar el umbral económico de la
plaga, para ello la aplicación de insecticidas debe realizarse cuando se
determine la población de la plaga y su evolución, a fin de determinar el
nivel crítico que pudiera ocasionar daño económico. Se recomienda que
se utilice una red entomológica y que se evalué la población en cinco
sitios del terreno; en cada sitio se debe realizar 10 pases dobles de la red
y determinar el promedio de la sogata por sitio. También se necesita
evaluar el porcentaje de plantas enfermas con el VHB. Se ha
establecido que con una incidencia entre el 3 y 10 % de plantas
32
enfermas, la decisión de control debe realizarse cuando el nivel de la
sogata sea mayor de 50 sogatas por sitio; si la infestación es mayor del
10 %, entonces el control debe realizarse cuando la población sea mayor
de 20 sogatas por sitio. Las aplicaciones de insecticidas deberán hacerse
tanto al cultivo como a las malezas, especialmente en los primeros 45
días de edad del cultivo. Las medidas de control biológico son
importantes y que los campos arroceros del Ecuador poseen un
excelente control biológico natural para muchos insectos plagas, entre
ellos las arañas que reducen poblaciones de adultos y ninfas de la sogata
(Arias de López, 2007).
33
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Ubicación
La investigación se realizó en campo y laboratorio. El trabajo de campo
se efectuó en el sector “La Cuca,” cantón Arenillas, provincia de El Oro.
Se ubica en las coordenadas 3º 29' 45.32", latitud sur 80 º 4' 8.19" latitud
occidental, a 15 msnm, clima tropical seco y con una temperatura 18 ºC
a 30 ºC, con una pluviosidad anual de 203.2 mm y 86.2 % de humedad
relativa media anual1
El trabajo de laboratorio en el área de Fitopatología y del Programa de
arroz de la Estación Experimental del Litoral Sur “Dr. Enrique
Ampuero Pareja”, del Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones
Agropecuarias (INIAP), ubicado a 26 km. al Este de Guayaquil en la vía
Durán – Tambo, parroquia Virgen de Fátima, cantón Yaguachi,
provincia del Guayas. Se ubica en las coordenadas 2 º 3 ` 15” latitud sur
y 79 º 5 ` 40” longitud occidental y a 17 msnm2, con una pluviosidad
anual de 1154.3 mm temperatura media anual 26.5 ºC y 76.2 % de
humedad relativa media anual3
3.2. Factores estudiados
Se estudió 15 cultivares de arroz
biofortificados y cuatro testigos
comerciales, mismos que se detallan a continuación: GO-00869, GO-
00882, GO-00891, GO-00897, GO-00899, GO-00901, GO-00904, GO-
00911, GO-00912, GO-00913, GO-00914, GO-00918, GO-00919, GO-
1
Proyecto de Manejo Integrado de los Recursos Hídricos y Cuencas del Rio Arenillas. Quito- Ecuador
2001. 2
3 INAMHI, instituto Nacional de Meteorología del Ecuador.
Fuente Fuerza Aérea Ecuatoriana, Base Taura, promedio de doce años (1995 -2007)
34
00920, GO-00921, INIAP 14, INIAP-17, INIAP FL-01, FL 09; en ellos
se evaluó la incidencia y severidad de las enfermedades presentes en
“La Cuca”,
3.3. Materiales equipos y reactivos
Los materiales que se utilizaron fueron: microscopio simple de luz,
estereomicroscopio, cámara de flujo laminar, autoclave, destilador,
estufa, autoclaves, cajas Petri, morteros, matraces, vasos de
precipitación, medios de cultivo, pinzas, asas bacteriológicas, tijeras,
cuchillo, fundas plásticas, fundas de papel, semillas, piolas, fertilizante,
herbicidas, estaquillas, balanza electrónica, determinador de humedad,
calibrador, clasificador de rotor, aspirador de impurezas, descascarador
y pulidor de arroz, molino de bolas de zirconio, tanque metálico, lona,
sacos.
3.4. Tratamientos
Los tratamientos estuvieron constituidos por los 15 genotipos de arroz
biofortificados y cuatro variedades comerciales como testigos, mismas
que se describen en el Cuadro 1.
35
Cuadro 1. Genealogía de los materiales en estudio, INIAP. Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Tratamientos Cultivares
Cruzamiento
1
2
3
GO-00869 F1BC1PERLA / O.Ruf // wc413
GO-00882 PERURUTONG /*FEDEARROZ50
GO-00891 FEDEARROZ 50*2 // CT13432(107)
4 GO-00897 CPR36 // WC413
5
6
7
8
9
GO-00899 IR 68719-34-1-2-3 // IR 72860-68-1-1-1
GO-00901 IR 24594-204-1-3-2-6-2 // IR 28222-9-2-2-2-2
GO-00904 IR 717003-657-3-1-2 // *FEDEARROZ 50
GO-00911 PCT-22/0/0/0>23-4-1-1-1-1-1-M
GO-00912 PCT-22/0/0/0>23-4-1-1-1-1-2-M
10
11
GO-00913
GO-00914
UQUIHUA/ JUMA62 //CT9748-13-2-1-M-M-
1-1
ECIA 213-F4-J153* //RHS376-57-CX-2CX-
3CX-OZ
12
13
14
GO-00918 BC2IR685552-100-1-2-2 // FL00593-6P-1-3P
GO-00919 BC2IR685552-100-1-2-2 // FEDEARROZ 50
GO-00920 BC2IR71703-657-3-1-2 // FL00593-6P-1-3P
15
GO-00921
BC2IR717003-657-3-1-2 // FLOO593-6P-1-
3P
Testigos
16 INIAP 14 PSBRC 12
17 INIAP-17 IN69-M-9-1/IN19-3-M-M-M-2-M
18
INIAP FL- FL001028-8P-3-2P-1P-M-2X-3P-1P/FL03146-
01 3P-2-2P-3P-M-1P//FL03188-7P-5-4P-1P-M
19 FL 09 Origen FLAR Colombia
Fuente: Programa de Arroz E.E.L.S.
36
3.5. Diseño experimental
El diseño experimental fue bloques completamente al azar con tres
repeticiones, el esquema del análisis de varianza es el siguiente:
Fuentes de variación
Total (rt-1)
Tratamientos (t-1)
Repeticiones (r-1)
Error experimental (t-1) (r-1)
G.L. 56
18
2
36
Para la comparación de las medias de tratamientos, se la realizó
mediante la prueba de rangos múltiples de Duncan=0,05.
3.6. Delineamiento experimental
Número de repeticiones
Número de tratamientos
Número de parcelas
Distancia entre repetición
Distancia entre hileras
Distancia entre plantas
Largo de parcela
Ancho de parcela
Área total de cada parcela
Área útil de cada parcela
Área total del ensayo
Área útil
37
3 19 57 1m 0.25 m 0.25 m 5m 1.80 m 9 m2 6 m2 615.60 m2 342 m2
3.7. Características de las variedades testigos
Las características de las variedades comerciales evaluadas se describen
en el Cuadro 2
3.8. Manejo del experimento
Durante el desarrollo de la investigación se efectuaron todas las labores
inherentes al cultivo y evaluaciones de incidencia y severidad de
enfermedades.
3.8.1. Labores de cultivo
Análisis del suelo
Se realizó un análisis físico y químico de suelo, para conocer las
necesidades nutricionales del cultivo.
Semillero
La siembra del semillero se realizó al voleo sobre terreno fangueado y
bien nivelado utilizando 150 g de semilla de cada material en estudio
por m2. Para el semillero se construyeron camas a unos 0.05 m de altura
del nivel del suelo con una dimensión de 1m de ancho por el largo
necesario para el experimento.
Preparación del terreno
Se realizó de forma convencional, mediante un pase de arado y uno de
rastra luego se inundó, se fangueó y niveló.
38
Cuadro 2. Características de las variedades testigos, INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur 2014.
Variedades
Ciclo
Vegetativo
Altura
de
planta
Longitud
de
grano
Índice
de
pilado
Pyricularia Rhizoctonia Sarocladium
Manchado de grano
Hoja blanca
INIAP 14
INIAP-17
113 – 117
117 – 140
99 – 107 103 - 125
Largo
Extra largo
66 67
MS
Tolerante
Tolerante Tolerante
MS
Tolerante
MS
Tolerante
MS
Tolerante
INIAP FL-01 120 – 140
94 - 115
Extra largo
64
Tolerante
Tolerante
Tolerante
Tolerante
MS
FL 09
115 – 125
120 - 125
Extra
largo
62
Resistente
Tolerante
Tolerante
Resistente
Resistente
M.S. = Moderadamente susceptible
39
Estaquillado y distribución de las parcelas
Esta labor se realizó según el croquis de campo del experimento y las
condiciones que presentó el terreno. Se delimitaron parcelas de 5 m de
largo por 1.80 m de ancho para cada tratamiento con 1 m de separación
por repetición.
Siembra
La siembra se realizó por trasplante en forma manual, después de haber
sido preparado el terreno y cuando las plantas cumplieron 21 días de
edad en el semillero, la distancia de siembra fue de 0,25 entre hilera y
0,25 cm entre plantas, con dos a tres plántulas por sitio.
Riego
Se lo hizo por gravedad a través de la cuantificación del consumo de
agua y balance hídrico integral (climático, edáfico y fenológico)
(Beltrame y Louzada, 1992).
Fertilización
Los fertilizantes edáficos a base de fosforo (P) y potasio (K), fueron
incorporados al suelo en el momento del fangueado, se aplicó 50 kg/ha
de P2O5 (súper fosfato triple), 50 kg/ha de K2O (muriato de potasio) el
nitrógeno a razón de 120 kg/ha, se utilizó urea al 46 %, y se dividió en
tres fracciones: a los 10, 30 y 50 días después del trasplante.
Control de malezas
Esta labor se realizó a los diez días después del trasplante utilizando
(bispiribac sodio + pendimentalin) en dosis de 0,3 + 3,0 l/ha, y para hoja
ancha se utilizó agroxone en dosis de 500 cc/ha, a los 70 días se realizó
una deshierba manual.
40
Cosecha
La cosecha se efectuó en forma manual, sobre el área útil de cada unidad
experimental, de acuerdo al estado de madurez fisiológica de cada una
de ellas, se cosechó individualmente cada una de las parcelas para que
no existan mezclas en las mismas para ello se utilizó una lona, un tanque
y hoces.
3.8.2. Incidencia y severidad de enfermedades en campo
La evaluación de incidencia y severidad de las enfermedades se la
realizó a los 20 días después de la siembra y luego con frecuencia de 20
días, mediante las escalas propuestas por IRRI para cada una de ellas.
Pyricularia oryzae
Para evaluar P. oryzae en el follaje y cuello de panícula se utilizó las
escalas que se describen en el Cuadro 3.
Cuadro 3. Escala para la evaluación de P. oryzae en el follaje y cuello de panícula.
INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur. 2013.
Grados 0
1
3
5
7
9
Categoría Ninguna lesión visible Menos del 1% 1-5 %
6 – 25 % 26 - 50 %
51 – 100 %
Descripción Ninguna lesión ramificaciones secundarias afectadas Ramificaciones principales y secundarias
afectadas en su mayoría.
Eje o base de panícula parcialmente afectada. Eje o base de panícula afectada totalmente, con
menos del 30 % del grano lleno
Base de la panícula o entre nudo superior,
afectado totalmente con menos del 30 % del grano
lleno.
41
La escala para Rhizoctonia solani Kuhn y Gaeumannomyces graminis
var. graminis. (Sacc.) Arx& D. L. Olivier se describe en el Cuadro 4.
Cuadro 4. Escala IRRI para evaluación de R. solani y G. graminis var. graminis.
INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur. 2013.
Grado 0
1
2
3
4
5
6
% 0
1-5 6-15 16-30 31-50 51-80 81-100
Síntoma Sin síntomas
Leve amarillamiento de la vaina Quemado libre Quemado leve – moderado 3 cm Quemado intenso 6 cm Quemado intenso 10 cm Quemado intenso mayor 10 cm
Daño
Ninguno
Incipiente Visible Poco severo Medianamente severo Severo Extremadamente severo
Bipolaris oryzae
Cuadro 5. Escala para evaluación de Bipolaris oryzae, INIAP. Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados
0
1
3
5
7
9
Descripción
Ninguna lesión visible del área foliar
Menos del 1% del área foliar
1 - 5 % de del área foliar
6 – 25 % del área foliar
26 - 50 % del área foliar
51 – 100 % del área foliar
42
Sarocladium oryzae Sawada / Gams y Hawks
Cuadro 6. Escala para evaluación de Sarocladium oryzae, INIAP. Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados
0
1
3
5
7
9
Descripción
Ninguna incidencia
Menos del 1%
1-5 %
6 – 25 %
26 - 50 %
51 – 100 %
Decoloración de las glumas o manchado de granos
Cuadro 7. Escala para la evaluación de manchado de granos, INIAP. Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados
0
1
3
5
7
9
43
Descripción Ninguna lesion visible Menos del 1 % 1 – 5%
6 – 25 % 26 – 50 % Mayor del 51 %
Incidencia y severidad del virus de la hoja blanca
Cuadro 8. Escala para la evaluación de incidencia y severidad de hoja blanca,
INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados
0
1
2
3
5
7
9
Categoría
Ninguna incidencia
Menos de 1%
1 – 5
6 – 10
21 – 30
41 – 60
81 – 100
Descripción
Plantas sanas
Plantas con pocas hojas ligeramente moteadas
Planta con varias hojas moteadas
Plantas con leves rayas amarillentas
Plantas con hoja bandera afectada, amarillamiento
moteado de hoja
Amarillamiento severo de hojas, panículas afectadas
Amarillamiento y secamiento de hojas. Muerte de plantas o esterilidad de grano
Escala general usada para la evaluación de materiales de arroz
En el cuadro 9 se encuentra la escala utilizada por el IRRI para
determinar tolerancia o susceptibilidad de líneas en investigación.
44
Cuadro 9. Escala general del IRRI para la evaluación de materiales de arroz, INIAP. Estación Experimental del Litoral Sur 2013.
Grado en
la
escala
Severidad o
incidencia
Clasificación por
Comparación con testigos
Valoración
cualitativa4
Calificació
n
Utilidad
Comentarios
0 0 ( inmune) HR
1 Menor 1 % Igual al testigo resistente o R Buena Expresión varietal satisfactoria. Se puede usar como
2
mejor R
progenitor y como variedad comercial
3 1-5 % MR Expresión varietal no tan buena como debería ser,
4 6-25 % Entre el testigo resistente y
el susceptible MS
Regular pero se puede aceptar bajo ciertas circunstancias, por
ej. Para la característica “desarrollo lento de enfermedades “
5
6
7
26-50 %
Igual testigo más
susceptible
S
Pobre
Expresión varietal desfavorable tanto para fines de
mejoramiento genético como para uso comercial
8
9
51-100 % HS
4 HR = Altamente resistente; R = Resistente; MR = Moderadamente resistente; MS = moderadamente susceptible; S = susceptible; HS = altamente susceptible
3.8.3. Aislamiento e identificación de microorganismos causales de
enfermedades
Para determinar la incidencia de enfermedades del follaje se evaluó en
10 sitios al azar y en 10 macollos de acuerdo a los síntomas y se anotó el
nombre de la misma con su respectivo grado de severidad de acuerdo a
escalas del IRRI, las ya descritas en variables estudiadas.
En plantas cuyos síntomas no fueron bien definidos se tomó muestras y
se llevó al laboratorio de Fitopatología para su identificación. Para la
identificación directa de patógenos en los tejidos, éstos fueron frotados
con cinta Scott y se colocaron sobre un portaobjetos, que contenía una
gota de ácido láctico, luego se observó en el microscopio simple de luz.
Para los que no fueron posible su identificación directa, se procedió al
aislamiento en medios de cultivos papa dextrosa agar (PDA), agar jugo
V8 y agar salvado de arroz.
Las muestras fueron previamente desinfectadas con una solución de
hipoclorito de sodio al 1 %, enjuagadas tres veces con agua destilada
estéril y colocadas en el respectivo medio de cultivo, se incubó a
temperatura ambiente entre cinco a siete días. Las colonias fueron
observadas en el microscopio simple de luz. Para la identificación se
utilizó las claves de Barnett (1973); Ainsworth, Sparrow y Sussman
(1973) en el caso de hongos.
Para el aislamiento de bacterias en cada muestra colectada se seleccionó
10 semillas con síntomas de manchado y vanas, éstas se depositaron en
un tubo estéril de 1.5 mL; luego en la cámara de flujo laminar se las
maceró, y posteriormente, se adicionó 500 μl de agua destilada estéril.
46
Se depositó nuevamente el macerado en tubos de 1.5 ml y se
homogenizó la muestra en un Vortex durante 5 min. Se centrifugó
rápidamente (Spin) durante 5 segundos y se depositó el sobrenadante en
un tubo de 1.5 ml para centrifugar nuevamente a 10.000 rpm durante 5
min; para concentrar la muestra se redujo el volumen a 100 μl
aproximadamente y se suspendió por agitación leve.
Se hizo diluciones seriadas de cada una de las muestras y se sembraron
en medio de cultivo King B (Pseudomonas Agar F.) (Fory et al., 2010).
3.8.4. Procedimiento para la determinación de contenido de hierro y zinc
Según, Stangoulis y Sison (2008) es necesario entender la importancia de
evitar la contaminación común en la toma de muestras, en la
manipulación de los cultivos en el campo o en el laboratorio.
Se cosechó las panículas manualmente (120 días después de la siembra
aproximadamente), sólo de plantas verticales y no caídas. Luego fueron
trilladas manualmente y se colocó el grano fresco en bolsas de papel
marrón, limpio y se etiquetó correctamente.
Los granos de arroz fueron secados en un horno entre 35 - 45°C durante
un máximo de tres días para lograr un contenido de humedad de 12 a
14% (para minimizar la rotura de grano o fisuras, se evitó el sobresecado
y se monitoreo periódicamente el contenido de humedad de las
muestras). Se dejó equilibrar el grano seco durante tres días, para obtener
óptimos rendimientos de molienda.
Se extrajo una muestra representativa de 60 g de arroz pulido y se
procesó en un molino de bolas de zirconio, luego que las muestras fueron
47
procesadas en el laboratorio de calidad molinera del Programa de arroz,
se las llevó al Departamentos de Suelos y Aguas, donde por medio del
método de digestión establecieron el contenido de hierro y zinc.
3.8.5 Variables agronómicas
Las
variables agronómicas fueron
evaluadas mediante escalas
propuestas por el IRRI-CIAT (1983).
Vigor vegetativo
Según Jennings. (1985), el vigor vegetativo es la capacidad del material
en llenar rápidamente los espacios entre plantas y entre surcos. Además,
señala que un buen vigor vegetativo disminuye la competencia de
malezas y compensa las pérdidas de plantas.
Cuadro 10. Escala para la evaluación de vigor vegetativo, INIAP.
Estación Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados
1
3
5
7
9
Categoría
Material muy vigoroso
Vigoroso
Plantas intermedias o normales
Plantas menos vigorosas que lo normal
Plantas muy débiles y pequeñas
Días a la floración
Para determinar esta variable se tomó en consideración el tiempo
trascurrido desde la siembra hasta la fecha en que el cultivo presento el
50 % de panículas emergidas en cada unidad experimental y se expresó
en días.
48
Ciclo vegetativo
Constituye el número de días transcurridos desde el momento en que se
puso a pregerminar la semilla hasta cuando se realizó la cosecha de la
unidad experimental, se expresó en días.
Altura de la planta
Para esta variable se procedió a medir 10 plantas las cuales fueron
tomadas al azar en el área útil de cada unidad experimental considerando
el nivel del suelo, hasta el ápice de la panícula más alta excluyendo las
aristas de esta medida y se sacó el promedio en centímetros (cm). La
categoría del tipo de planta se describe en el Cuadro 11.
Cuadro 11. Escala para la evaluación de altura de planta, INIAP. Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Escala
1
5
9
Descripción (cm)
Menos de 100
De 101 a 130
Más de 130
Categoría
Planta semi enana Intermedia Alta
Número de macollos por m2
Se midió un metro cuadrado de terreno al azar dentro del área útil de la
unidad experimental al momento de la cosecha y se procedió a contar
los macollos existentes y se promedio. Para ello se usó la escala de
CIAT (Cuadro 12).
49
Cuadro 12. Escala para la evaluación de número de macollos, INIAP. Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados
Categoría
1
3
5
7
9
+ 25
20 - 25
10 - 19
- 9
- 5
muy bueno
bueno
mediano
débil
pobre
Número de panículas por m2
En la misma área donde se contabilizó el número de macollos/m2, al
momento de la cosecha se procedió a contar el número de panículas en
cada una de las unidades experimentales, se promedió y se expresó en
números de panículas / m2.
Longitud de panículas
En cada una de las unidades experimentales se colectó diez panículas al
azar desde el nudo ciliar hasta el ápice del grano más pronunciado sin
incluir las aristas y se llevó al laboratorio para medir su longitud, y se
expresó en centímetros.
Granos por panícula
Se contó el número de granos existentes en las 10 panículas tomadas al
azar en el área útil de cada unidad experimental y se obtuvo el
promedio, expresado en números.
50
Porcentaje de Granos llenos/panícula
Se contó el número de granos llenos de diez panículas, tomadas al azar,
de cada una de las unidades experimentales, se promedió y se expresó
en porcentaje.
Porcentaje de granos vanos/panícula
En las diez panículas señaladas anteriormente se determinó el número de
granos vanos se promedió y se expresó en porcentaje.
Peso de 1000 semillas
Este dato se lo obtuvo en base al peso de 1000 granos con el 14 % de
humedad y se expresó en gramos.
Rendimiento
Se cosechó 6 m2 como área útil de cada tratamiento, se registró el peso y
se expresó en kg/tratamiento, se ajustó al 14 % de humedad para obtener
el rendimiento en kilogramos por hectárea, se utilizó la siguiente
fórmula:
Donde:
Pa = Peso ajustado al tratamiento
Hi = Humedad inicial al momento de pesar
Hd = Humedad deseada al 14 %
Pm = Peso de la muestra
ac = Área cosecha
51
3.8.6. Calidad molinera
Centro blanco del grano
Para el efecto se usó una muestra pilada representativa de cada
tratamiento y se determinó el grado de opacidad del grano. Se registró
en base a la escala de 0 a 9 del IRRI-CIAT (1983).
Cuadro 13. Escala para la evaluación de centro blanco, INIAP. Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados
0
3
5
9
observación
Ninguno.
Pequeña (menos de 10 % del grano)
Mediano (11 a 20 % del grano).
Grande (más del 20% del grano).
Índice de pilado
Se tomó muestras de 100 gramos de arroz pady con 13% de humedad de
cada tratamiento, luego en un molino experimental del laboratorio de
calidad molinera del Programa de Arroz se procedió a su descascarado y
pulido. Se procedió a pesar el grano entero pilado más los granos con ¾
partes y se expresó en porcentaje.
Porcentaje de grano partido pilado
Por cada tratamiento, se tomó muestras de 100 gramos de arroz pilado,
se separó los granos partidos y se expresó en porcentaje.
52
Porcentaje de polvillo
Se tomó muestras de 100 gramos de cada tratamiento, se procedió al
pilado y se pesó el polvillo, cuyo valor se expresó en porcentaje.
Longitud del grano
Se lo determinó en 10 granos tomados al azar por cada tratamiento. Se
promedió y se expresó en mm, para ello se utilizó la escala del IRRI-
CIAT (1983), la que se describe a continuación:
Cuadro 14. Escala para le evaluación de longitud de grano, INIAP. Estación
Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados 1
3
5
7
Categoría
Mayor de 7,5 mm. Extra-largo Entre 6,61 a 7,5 mm. Largo 5,51 a 6,60 mm. Medio 5,50 mm o menos. Corto
Forma del grano descascarado
Se determinó mediante la relación largo/ancho en granos enteros de cada
tratamiento, se utilizó la escala del IRRI-CIAT (1983), la que describe a
continuación:
Cuadro 15. Escala para la evaluación de forma de grano descascarado, INIAP.
Estación Experimental del Litoral Sur 2013.
Grados
1
5
9
Observación
Alargada (Relación largo/ancho mayor de 3.0)
Medio (Relación 2,1 a 3.0)
Oblonga ( Menor de 2.0)
53
4. RESULTADOS
4.1. Incidencia y severidad de enfermedades observadas en líneas y
variedades de arroz en el sector La Cuca, provincia de El Oro.
En las cuatro evaluaciones realizadas se presentaron las siguientes
enfermedades: Rhizoctonia solani, Bipolaris oryzae, Gaeumannomyces
graminis var. graminis, Sarocladium oryzae, virus de hoja blanca y
manchada de grano.
Rhizoctonia solani
Los síntomas de R. solani se inician a partir de la segunda evaluación en
tres genotipos de arroz; en la tercera y cuarta evaluación hubo
diferencias significativas entre tratamientos. El porcentaje de severidad
más alto en la tercera observación se registró en los cultivares GO-
00891y GO-00912, mismos que fueron iguales entre sí y diferente de los
demás.
En la cuarta evaluación los genotipos de arroz GO-00869, GO-00882,
GO-00897 y GO-00913 fueron los de mayor severidad de R. solani (con
grado 5 o superior) y estadísticamente iguales entre sí. El genotipo GO-
00919 fue el de menor severidad y estadísticamente diferente; el
coeficiente de variación fue 8,71% (Cuadro 16).
Bipolaris oryzae
La severidad de B. oryzae fue observada en la primera evaluación en dos
cultivares GO-00897 y GO-00904. Desde la segunda evaluación la
enfermedad fue presentándose en otros cultivares, al igual que la tercera;
en la cuarta observación en el cultivar GO-00897 y la variedad INIAP
17 tuvo el valor de cinco en la escala de 0 a 9, lo que corresponde a
54
Cuadro 16. Severidad de Rhizoctonia solani, La Cuca, Arenillas, El Oro. 2014.
Genotipos
GO-00869
GO-00882
Primera
0,0 nns
0,0
Segunda
0,0 ns
0,0
Evaluaciones
Tercera
1,0 a1/
1,7 a
Cuarta
5,7 a
5,0 a
Promedio
1,7 ns
1,7
GO-00891
GO-00897
GO-00899
GO-00901
GO-00904
GO-00911
GO-00912
GO-00913
GO-00914
GO-00918
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,3
0,0
0,0
0,0
0,3
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
2,3
1,0 a
1,0 a
1,7 a
1,7 a
1,7 a
2,3
1,0 a
1,0 a
1,0 a
b
b
4,3 ab
5,0 a
3,7 ab
3,7 ab
3,7 ab
4,3 ab
4,3 ab
5,0 a
4,3 ab
4,3 ab
1,8
1,5
1,2
1,3
1,4
1,5
1,7
1,5
1,3
1,3
GO-00919 0,0 0,3 1,3 a 3,0 b 1,2
GO-00920
GO- 00921
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
C.V. (%)
0,0
0,0
0,0 ns
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0 ns
0,0
0,0
0,0
24.2
1,0 a
1,0 a
1,0 a
1,7 a
1,0 a
1,0 a
19.7
4,3 ab
3,7 ab
3,7 a
4,3 a
3,0 a
3,7 a
8.7
1,3
1,2
1,2 ns
1,5
1,0
1,2
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según Duncan al 0,05 de probabilidad.
síntomas de 26 a 50% en el follaje. El menor valor fue para el cultivar
GO-00899.
El análisis de varianza en la tercera evaluación demuestra diferencia
estadística con tres rangos de significancia la línea más tolerante fueron
GO-00904, GO-00901, GO-00914, con una escala de 1 menos del 1%
55
del área foliar afectada y la más susceptible fue la línea GO-00911 con
una escala de 3 que corresponde a 25% de afectación. En la cuarta
evaluación se encontró dos rangos de significancia estadística siendo la
más tolerante la línea GO-00899 y la más susceptible GO-00897 con
una escala de 5 que significa el 25 % del área foliar afectada, igual que
la variedad INIAP 17. La media de esta variable en las líneas fue de 2.68
en la escala con un CV de 17 % (Cuadro 17).
Cuadro 17. Severidad de Bipolaris oryzae. La Cuca, Arenillas, El Oro. 2013
Genotipos
Primera
Segunda
Evaluaciones
Tercera
Cuarta
Promedio
GO-00869
0,0 ns 0,0
c1/
0,3 bc 2,3 ab 0,7 bc
GO-00882
GO-00891
GO-00897
0,0
0,0
0,3
0,7 abc
0,7 abc
1,7 a
0,0
2,3
1,0
c
ab
abc
3,0
3,0
5,0
ab
ab
a
0,9
1,5
2,0
abc
abc
ab
GO-00899 0,0 0,3 bc 1,0 abc 1,7 b 0,8 c
GO-00901
GO-00904
GO-00911
GO-00912
0,0
1,0
0,0
0,0
1,0 ab
0,7 abc
1,0 ab
0,7 abc
0,0
0,0
3,0
2,3
c
c
a
ab
2,3
3,0
4,3
4,3
ab
ab
ab
ab
0,8
1,2
2,1
1,8
abc
abc
a
abc
GO-00913 0,0 0,0 c 0,0 c 2,3 ab 0,6 c
GO-00914
GO-00918
GO-00919
GO-00920
GO- 00921
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,7 abc
1,0 ab
1,0 ab
1,0 ab
1,0 ab
0,0
1,0
1,0
1,0
1,0
c
abc
abc
abc
abc
3,0
3,7
2,3
2,3
3,0
ab
ab
ab
ab
ab
0,9
1,4
1,1
1,1
1,3
abc
abc
abc
abc
abc
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
CV (%)
0,3 ns
0,3
0,0
0,0 31.6
1,0 ns
1,0
0,3
0,7 23.2
1,7 ns
3,0
1,0
2,3 43.0
3,7 ns
5,0
3,0
3,7 17.0
1,7 ns
2,3
1,1
1,7
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según
Duncan al 0,05 de probabilidad.
56
Gaeumannomyces graminis var. graminis
En las dos primeras evaluaciones no se observó síntomas de G. graminis
var. graminis. En la tercera evaluación el mayor grado de severidad fue
para el cultivar GO 00912 con 2,3 grados en la escala de 0 a 9; los
cultivares GO 00891, GO 00919 y GO 00921 no presentaron síntomas
de la enfermedad al igual que las variedades INIAP 17 e INIAP FL01,
mismas que fueron iguales estadísticamente entre sí. En la cuarta
evaluación no hubo significancia estadística pero se observó que las
líneas GO-00919, GO-00920, GO-00921, y las variedades INIAP 17 e
INIAP – FL 01 con 3 grados en la escala lo que demuestra un 30 % de
afectación. Las líneas GO-00869, GO-00918 llegaron a tener grado 5 lo
que significa el 80 % de macollos afectados. La media de esta variable
en las líneas fue 2.95, con un CV de 11% (Cuadro 18).
Sarocladium oryzae
Los síntomas de la enfermedad se inician a partir de la tercera
evaluación, el análisis de varianza demuestra que hubo diferencias
estadística con tres rangos y la cuarta evaluación con dos. En la tercera
evaluación las líneas con menor valor fueron GO-00897, GO-00901,
GO-00913, GO-0918, GO-0920 y GO-00921 con grado menor a 1 de
acuerdo a la escala 0 a 9. En la cuarta evaluación las líneas GO 00882 y
GO- 00921 tuvieron 3 y 2,6 grados en sus orden, mismas que fueron
estadísticamente iguales entre sí; la de mayor valor fue la línea GO-
00913 con grado 7, con más del 50 % de afectación. La media de esta
variable en las variedades fue de 3.22 con un CV de 8,30% (Cuadro 19).
57
Cuadro 18. Porcentaje de severidad de, G. graminis, var graminis La Cuca, Arenillas,
El Oro. 2013
Evaluaciones
Genotipos Primera Segunda Tercera Cuarta Promedio
GO-00869
GO-00882
GO-00891
GO-00897
GO-00899
GO-00901
GO-00904
GO-00911
GO-00912
GO-00913
GO-00914
GO-00918
GO-00919
GO-00920
GO- 00921
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
CV (%)
0,0 ns
0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
0,0 ns
0,0
0,0 0,0 0,0
0,0 ns
0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0
0,0 ns
0,0
0,0 0,0 25.9
1,0 ab1/
1,7 ab
0,0 c
1,0 bc
0,7 bc
1,0 ab
0,7 bc
1,0 ab
2,3 a
1,0 ab
1,0 ab
1,0 ab
0,0 c
0,7 bc
0 ,0 c
1,0 a
0,0 b
0,0 b
1,0 a
12.0
5,0 ns
4,3 4,3 4,3 3,7 3,7 3,7 4,3 4,3 4,3 3,7 5,0 3,0 3,0 3,0
4,3 ns
3,0
3,0 4,3 13.0
1,5 ab
1,5 ab
1,1 ab
1,3 ab
1,1 ab
1,2 ab
1,1 ab
1,3 ab
1,7 a
1,3 ab
1,2 ab
1,5 ab
0,8 b
0,9 ab
1,3 b
1,3 a
0,8 b
0,8 b
1,3 a
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según Duncan al 0,05 de probabilidad.
58
Cuadro 19. Porcentaje de severidad de Sarocladium oryzae, La Cuca, Arenillas, El
Oro. 2013.
Evaluaciones Genotipos
GO-00869
GO-00882
GO-00891
GO-00897
GO-00899
GO-00901
GO-00904
GO-00911
GO-00912
GO-00913
GO-00914
GO-00918
GO-00919
GO-00920
G- 00921
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
CV (%)
Primera
0,0 ns 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 ns 0,0 0,0 0,0
0,0
Segunda
0,0 ns 0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0 ns
0,0
0,0
0,0
14,5
Tercera
0,7 bc 1,0 abc
3,0 a
0,3 c
2,3 ab
0,3 c
1,0 abc
2,3 ab
1,3 abc
0,7 bc
1,7 abc
0,7 bc
1,0 abc
0,7 bc
0,4 bc
1,0 a
1,0 ab
0,0 b
1,7 a
26,9
Cuarta
4,3 b 3,0 ab 5,7 ab 5,7 ab 6,3 ab 4,3 b 4,3 b 5,7 ab 4,3 b 7,0 a 5,0 ab 5,0 ab 4,3 b 4,3 b 2,6 b 5,0 ns 5,0 4,3 5,0
8.3
Promedio
1,3 cde 1,0 abcde 2,3 a 1,5 bcde 2,2 ab 1,2 c 1,3 cde 2,0 abc 1,4 cde 1,9 abcd 1,7 abcde 1,4 cde 1,3 cde 1,3 cde 1,3 cde 1,5 ns 1,5 1,1 1,7
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según
Duncan al 0,05 de probabilidad
59
Incidencia de hoja blanca
Durante las cuatro evaluaciones hubo incidencia de hoja blanca (Cuadro
20). El análisis de varianza demuestra que la primera evaluación tuvo
tres rangos de significancia; la línea GO-00914 no mostró síntomas al
igual que la variedad INIAP 17; en la segunda evaluación igualmente el
valor más alto fue en el cultivar GO- 00891 con 2.3 de incidencia. En la
tercera observación obtuvo dos rangos de significancia; la línea GO-
00914 con 1,7 en la escala de 0 a 9. La cuarta evaluación tuvo el valor
más alto fue en el cultivar GO-00869 con grado 5 lo que corresponde a
30 % de plantas afectadas, mismo que fue estadísticamente diferente de
los demás. La media de esta variable en las variedades fue de 2.2 con un
CV de 15.3% (Cuadro 20).
Severidad de hoja blanca
La severidad durante las cuatro evaluaciones hubo significancia
estadística. El análisis de varianza demuestra que la primera evaluación
tuvo dos rangos de significancia, la línea GO-00914 y la variedad INIAP
17 tuvierón el menor valor y fueron diferentes de las demás. En la
segunda evaluación no tuvo diferencia estadística; la tercera presentaron
dos rangos de significancia, la línea GO-00919 tuvo el menor grado en
la escala (1.7); La cuarta evaluación tuvo dos rangos estadísticos, las
líneas con mayor severidad fueron GO-00911 y GO-00913 con una
severidad del 20 %, las variedades no mostraron diferencias
significativas, la de menor valor fue INIAP – FL01 con una escala de 2,
menos del 5 % de plantas afectadas. La media de esta variable en las
variedades fue 2.6 con un CV de 7.9 % (Cuadro 21).
60
Cuadro 20. Incidencia hoja blanca, La Cuca, Arenillas, El Oro. 2013
Evaluaciones Genotipos
Primera Segunda Tercera Cuarta Promedio
GO-00869
GO-00882
GO-00891
GO-00897
GO-00899
GO-00901
GO-00904
GO-00911
GO-00912
GO-00913
GO-00914
GO-00918
GO-00919
GO-00920
G- 00921
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
CV (%)
0,7 bc
0,7 bc 0,3 bc 1,0 bc 0,7 bc 3,0 a 1,0 abc 0,3 bc 0,3 bc 0,3 bc 0,0 c 0,3 bc 2,0 abc 3,0 a 2,0 abc
0,7 a 0,0 b 0,7 a 0,3 b 35.3
1,0 b
1,7 ab 2,3 a 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,7 ab 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b
1,0 ns 1,0 1,0 1,0 9.3
1,0 b
1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 a 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,7 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b 1,0 b
1,0 a 0,3 b 1,0 a 1,0 a 5.4
5,0 a
1,0 e 3,0 abcd 1,7 de 1,0 e 2,3 cde 1,7 de 3,0 bcd 1,0 e 4,3 ab 1,0 e 3,7 abc 1,7 de 1,0 e 3,0 abcd
1,7 a 1,0 b 1,7 a 2,3 a 12.1
1,9 a
1,1 cde 1,7 abc 1,2 bcde 0,9 de 1,8 ab 1,2 bcde 1,3 abcde 0,8 e 1,8 ab 0,9 de 1,5 abcd 1,4 abcde 1,5 abcd 1,3 abc
1,1 ns 0,6 1,1 1,2
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según
Duncan al 0,05 de probabilidad.
61
Cuadro 21. Severidad de hoja blanca, La Cuca, Arenillas, El Oro. 2013
EVALUACIONES Genotipos
Primera Segunda Tercera Cuarta Promedio
GO-00869
GO-00882
GO-00891
GO-00897
GO-00899
GO-00901
GO-00904
GO-00911
GO-00912
GO-00913
GO-00914
GO-00918
GO-00919
GO-00920
GO- 00921
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
CV (%)
2,0 ab
2,0 ab 1,0 ab 1,0 ab 2,0 ab 3,0 a 1,7 ab 0,3 ab 1,0 ab 1,0 ab 0,0 b 1,0 ab 2,0 ab 3,0 a 2,0 ab
2,0 a 0,0 b 1,3 a 1,0 a
44.0
3,0 ns
3,0 3,0 3,0 3,0 3,0 2,3 3,0 3,0 3,0 2,3 3,0 3,0 3,0 3,0
3,0 ns 3,0 3,0 3,0
5.5
3,0 a
3,0 a 3,0 a 3,0 a 3,0 a 3,0 a 3,0 a 3,0 a 3,0 a 3,0 a 2,3 ab 3,0 a 1,7 b 2,3 ab 3,0 a
1,7 a 1,0 b 1,7 a 3,0 a
7.2
3,0 ab
3,0 ab 3,0 ab 3,0 ab 2,3 ab 2,3 ab 1,7 b 4,3 a 2,3 ab 4,3 a 3,0 ab 3,7 a 3,0 ab 3,0 ab 3,0 ab
3,0 ns 3,0 2,3 3,0
11.4
2,8 a
2,8 a 2,5 ab 2,5 ab 2,6 ab 2,8 a 2,2 ab 2,7 ab 2,3 ab 2,8 a 1,9 b 2,7 ab 2,4 ab 2,8 a 1,3 a
9,7 a
7 b 8,3 ab 10 a
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según
Duncan al 0,05 de probabilidad.
62
Manchado de grano
Esta variable solo fue observada en la cuarta evaluación, donde el
análisis de varianza mostró que la línea GO-00913 tuvo grado 7 en la
escala de 0 a 9. Los cultivares GO-00901, GO-00904, GO 00919
tuvieron los valores más bajos y fueron estadísticamente iguales entre sí;
La variedad INIAP 17 con grado 4.3 fue la de menor valor en su grupo.
La media de esta variable en las líneas fue de 3.2 con un CV de 10.3 %
(Cuadro 23).
Cuadro 22. Promedios de Manchado de grano, La Cuca, Arenillas, El Oro 2013
Genotipos
GO-00869
GO-00882
GO-00891
GO-00897
GO-00899
GO-00901
GO-00904
GO-00911
GO-00912
GO-00913
GO-00914
GO-00918
GO-00919
GO-00920
GO- 00921
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
CV (%)
IV Evaluación
5,0 a
5,7 e
5,0 abcd
5,7 de
6,3 e
3,7 cde
3,7 de
6,3 bcd
6,3 e
7,0 ab
5,7 e
5,0 abc
3,7 de
5,0 e
5,7 abcd
5,0 ab
4,3 b
5,0 ab
6,3 a
10.3
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales
estadísticamente según Duncan al 0,05 de probabilidad.
63
4.2. Determinación del nivel de tolerancia de las principales
enfermedades en 15 Genotipos de arroz
En la zona de la Cuca, cantón Arenillas, provincia de El Oro, durante la
ejecución del estudio (enero – diciembre de 2013) el comportamiento de
los genotipos de arroz frente a R. solani fue de moderadamente resistente
a moderadamente susceptible. Los materiales con mayor promedio de
severidad fueron GO-00869, GO-00882 y GO- 00913 y corresponden a
la categoría Moderadamente susceptible (Cuadro 23).
Para B. oryzae el cultivar GO-00899 tuvo el menor grado de severidad,
siendo categorizado como resistente al igual que los cultivares GO-
008969 y GO-00901, correspondió; la variedad INIAP 17 y el cultivar
GO-00897 presentaron el valor de más alto (grado 5) siendo
moderadamente resistente (Cuadro 23).
Los cultivares GO-00919, GO-00920 y GO-00921 y las variedades
INIAP 14, INIAP 17 y INIAP FL 01 fueron moderadamente resistentes a
G. graminis var. graminis (Cuadro 23).
El cultivar GO-00913 fue susceptible a Sarocladium oryzae con valor de
7 en la escala de 0 a 9 y el cultivar GO 00882 fue moderadamente
resistente (Cuadro 23).
En cuanto a incidencia y severidad del virus de la hoja blanca (RHBV)
los cultivares GO 00904, GO-00912 y GO-00912 y la variedad INIAP
FL 01 fueron consideradas como resistentes (Cuadro 23).
64
Para manchado del grano el cultivar GO 00913 fue susceptible cuya
severidad fue grado 7, los demás genotipos fueron medianamente
susceptible (Cuadro 23).
Cuadro 23. Comportamiento de 15 genotipos de arroz biofortificados a las principales enfermedades. La
Cuca, Arenillas, El Oro. 2013.
Genotipos
R. solani
B. oryzae
G. graminis
S. oryzae Incidencia
Severidad
Manchado
HB HB del grano
GO 00869
GO 00882
5,7 MS 5,0 MS
2,3 3,0
R MR
5,0 MS 4,3 MS
4,3 MS 3,0 MR
5,0 1,0
MS
R
3,0 3,0
MR MR
5,0 5,7
MS MS
GO 00891
4,3 MS
3,0
MR
4,3 MS
5,7 MS
3,0 MR
3,0
MR
5,0
MS
GO 00897
GO 00899
GO 00901
GO 00904
5,0 MS 3,7 MS 3,7 MS 3,7 MS
5,0 1,7 2,3 3,0
MR
R
R MR
4,3 MS 3,7 MS 3,7 MS 3,7 MS
5,7 MS 6,3 MS 4,3 MS 4,3 MS
1,7 1,0 2,3 1,7
R R R R
3,0 2,3 2,3 1,7
MR MR MR
R
5,7 6,3 3,7 3,7
MS MS MS MS
GO 00911
4,3 MS
4,3
MS
4,3 MS
5,7 MS
3,0 MR
4,3
MR
6,3
MS
GO 00912
4,3 MS
4,3
MS
4,3 MS
4,3 MS
1,0
R
2,3
R
6,3
MS
GO 00913
5,0 MS
2,3
R
4,3 MS
7,0
S
4,3
MS
4,3
MR
7,0
S
GO 00914 4,3 MS 3,0 M R 3,7 MS 5,0 MS 1,0 R 3,0 MR 5,7 MS
GO 00918
GO 00919
GO 00920
4,3 MS 3,0 MR 4,3 MS
3,7 2,3 2,3
MS
R
R
5,0 MS 3,0 MR 3,0 MR
5,0 MS 4,3 MS 4,3 MS
3,7 1,7 1,0
MS
R
R
3,7 3,0 3,0
MR
R MR
5,0 3,7 5,0
MS MS MS
GO 00921
3,7 MS
3,0
MR
3,0 MR
2,6 MS
3,0 MR
3,0
MR
5,7
MS
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL
3,7 MS 4,3 MS 3,0 MR
3,7 5,0 3,0
MS MS MR
4,3 MS 3,0 MR 3,0 MR
5,0 MS 5,0 MS 4,3 MS
1,7 1,0 1,7
R R R
3,0 3,0 2,3
MR MR
R
5,0 4,3 5,0
MS MS MS
01
FL O9 3,7 MS 3,7 MS 4,3 MS 5,0 MS 2,3 R 3,0 MR 6,3 MS
R = resistente, MR = moderadamente resistente, MS= moderadamente susceptible S= susceptible
65
4.3. Comportamiento Agronómico
Días de floración
Los promedios de días a floración indican que éstos estuvieron entre 92
y 105 días. Los cultivares más precoces fueron los cultivares GO-00919,
GO-00869, con 92 y 93 días respectivamente, mismos que fueron
estadísticamente iguales entre sí. Los más tardíos fueron los cultivares
G0-00891 y GO 00914 con 105 y 104 días en su orden. La variedad
INIAP-14 que floreció a los 86 días. La media de las líneas fue 98,7
días, con un CV de 3.50 %, y las variedades 97.9 días con un CV 2.80 %
(Cuadro 24).
Ciclo vegetativo
Los
promedios
de
ciclo
vegetativo
demostraron
diferencias
significativas para los tratamientos. Destacándose por su menor ciclo
GO-00869, GO-00919, con 123 días respectivamente, comparándola
con la variedad testigo INIAP-14 con 117 días. No así con la línea GO-
00891, la cual tuvo el mayor ciclo con 135 días. La media para la
variable ciclo vegetativo de las líneas fue 129 días, con un CV de 2.65
% y variedades 128 días con un CV 2.23 % (Cuadro 24).
Altura de planta
Al realizar los análisis estadísticos correspondientes se halló diferencias
significativas para los tratamientos. Siendo la de menor altura la línea
GO- 00919 con 91 cm, comparada con la variedad testigo INIAP- 14
con 86 cm lo contrario ocurrió con la línea GO-00882 que tuvo 112 cm
66
de altura. La variable altura de planta de las líneas fue 102. cm con un
CV de 6.12 % y la variedades 103 cm con un CV. 3.80 % (Cuadro 24).
Numero de macollos/ m2
El
análisis
estadístico
correspondiente
demostró
diferencias
significativas. siendo la de mayor números de macollos la línea GO-
00921, con 402, macollos/m2 comparándola con la variedad testigo
INIAP- 17 con el mismo número macollos, no así con las líneas, GO-
00882, GO-00891 con 276, macollos. La variable macollos en las líneas
fue de 331.6 con un CV de 9,80 % (Cuadro 24).
Panículas / m2
Luego de realizar los análisis estadísticos correspondientes se encontró
diferencias significativas para los tratamientos. Siendo la de mayor
números de panículas la línea GO-00901, con 364, comparándola con la
variedad testigo INIAP- 14 con 320 panículas, no así con las línea, GO-
00882, con 216 panículas/ m2. La variable panículas/m2 tuvo una media
de 286 con un CV de 11,4 % y la media fue de 271 con un CV de 8,62%
(Cuadro 25).
Longitud de panícula
De acuerdo a los análisis estadísticos correspondientes se halló
diferencias significativas para los tratamientos. La panícula con mayor
longitud se obtuvo de la línea, GO-00899 con 28,41 cm comparándola
con la variedad testigo INIAP-FL 01 con 33.50 cm no así con la que
produjo la menor longitud fue la línea GO-00869, con 22,10 cm. La
media de la variable longitud de panícula de las líneas fue de 25,17 con
67
un CV. 3,04 % y las variedades fue de 27,4 con un CV 21,6 %
(Cuadro 25).
Granos por panícula
Al realizar los análisis estadísticos correspondientes se halló diferencias
significativas para los tratamientos. La línea que obtuvo el mayor
número de granos fue, GO-00899, con 180 granos por panícula,
comparada con la variedad testigo INIAP-17 con 154 granos por
panícula, no así con la línea GO-00921 con 97 granos por panícula. La
variable granos por panícula en las líneas fue de 147,4 con un CV de
12,48 % y las variedades fue de 138,4 con un CV de 10,8 % (Cuadro
25).
Granos llenos por panícula
De acuerdo a los análisis estadísticos correspondientes se halló
diferencias significativas para los tratamientos. La línea que tuvo el
mayor número de granos llenos fue, GO-00899 con 148 comparada con
la variedad testigo que tuvo 132 granos llenos por panícula, no así la
línea GO-00921 con 72 granos llenos por panícula. La variable granos
llenos por panícula en las líneas tuvo una media de 114 con un CV de
13,2 % y las variedades fue de 114 con un CV de 11,7 % (Cuadro 25).
68
Cuadro 24. Promedio de algunas características agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro. 2013
Tratamientos
Floración (días)
C. vegetativo (días)
Altura de planta (cm)
Macollos m2
1
2 3
4
5
6
7
8
9
10 11
12 13
14
15
16 17 18
19
GO 00869
GO 00882 GO 00891
GO 00897
GO 00899
GO 00901
GO 00904
GO 00911
GO 00912
GO 00913 GO 00914
GO 00918 GO 00919
GO 00920
GO 00921
Promedio
C.V. %
INIAP 14
INIAP 17 INIAP FL 01
FL O9
Promedio
C.V. %
93 ef
99 abcde 105 abcde
98 a
102 bcdef
100 ab
94 cdef
99 abcdef
102 ab
93 def 104 ab
101 ab 92 f
101 ab
99 abcd
98,70
3,5
86 b
104 a 102 a
99 a
97,91
2,80
123 e
129 abcde 135 a
128 bcde
132 ab
130 abc
124 cde
129 bcde
132 ab
123 de 134 ab
131 ab 123 e
131 ab
129 abcd
128,7
2,65
117 b
134 a 132 a
129 a
128,08
2,23
97 bc
112 a 107 ab
96 bc
108 ab
107 ab
98 bc
105 ab
107 ab
98 bc 101 abc
97 bc 91 c
98 bc
98 bc
101,5
6,12
98 b
111 a 101 b
101 b
102,77
3,80
368 ab
276 d 276 d
345 abc
329 bcd
378 ab
329 bcd
323 bcd
289 cd
352 abc 321 bcd
319 bcd 336 bcd
322 bcd
402 a
331,06
9,8
402 a
264 c 332 b
262 c
315
6,75
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según Duncan al 0,05 de probabilidad
69
Cuadro 25. Promedio de algunas características agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro 2014
TRATAMIENTOS
PANÍCULAS / M2
LONGITUD DE
PANÍCULA
GRANOS POR
PANÍCULA
GRANOS LLENOS POR PANÍCULA
1
2
3
4
5 6
7
8 9
10 11
12
13 14
15
GO 00869
GO 00882
GO 00891
GO 00897
GO 00899 GO 00901
GO 00904
GO 00911 GO 00912
GO 00913 GO 00914
GO 00918
GO 00919 GO 00920
GO 00921
Promedio
C.V. %
312 abc
216 d
238 cd
276 bcd
304 abc 364 a
296 abcd
264 bcd 265 bcd
285 abcd 272 bcd
287 abcd
268 bcd 304 abc
345 ab
286
11,4
22,10 f
27,05 ab
26,31 bc
23,16 ef
28,41 a 24,38 cde
25,63 bcd
25,64 bcd 26,23 bc
22,96 ef 23,83 def
27,28 ab
26,30 bc 24,85 cde
23,39 ef
25
3,04
136 abc
165 ab
164 ab
141 abc
180 a 141 abc
154 ab
156 ab 158 ab
147 ab 163 ab
141 abc
140 abc 128 bc
97 c
147
12,4
102 bc
125 ab
127 ab
107 bc
148 a 123 ab
116 ab
103 bc 121 ab
94 bc 133 ab
124 ab
108 abc 115 ab
72 c
114
13,2
16 17
18 19
INIAP 14 INIAP 17
INIAP FL 01 FL O9
Promedio
C.V. %
320 a 229 b
293 a 240 b
270
8,62
24 26
34 26
27
21,6
a a
a a
115 b 154 a
138 a 147 a
138
10,80
100 b 132 a
108 a 118 a
114
11,7
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según Duncan al 0,05 de probabilidad
70
Granos vanos por panícula
Al realizar los análisis estadísticos correspondientes se halló diferencias
significativas para los tratamientos. La línea que mostro el mayor
número de granos vanos fue GO-00914 con 65,4 granos vanos por
panícula, las líneas que tuvieron el menor número de granos vanos por
panícula fueron GO-00920, GO-00918, GO 00901, con 14, 17 y 18,
granos vanos por panícula, comparándolas con la variedad testigo
INIAP-14 que tuvo 16 granos vanos por panícula. La variable granos
vanos por panícula en las líneas tuvo una media de 37 con un CV de
58.5 % y las variedades fu de 24 con un CV de 23,2 % (Cuadro 26).
Peso de mil semillas
De acuerdo a los análisis estadísticos correspondientes se encontró
diferencias significativas para los tratamientos. Sobresaliendo por su
mejor peso la línea GO-00897 con 31.2 gramos, comparándola con la
variedad testigo INIAP-17 que tuvo 32.3 gramos, no así la línea GO-
00921 con 24.4 gramos. El promedio general del peso de mil semillas
fue de 27.3 gr con un CV de 4.5 % (Cuadro 26).
Rendimiento
Al realizar los análisis estadísticos correspondientes se encontró
diferencias significativas para los tratamientos. Sobresaliendo por su
mejor rendimiento la línea, GO-00899 con mayor producción por
hectárea 5603 kg, /Ha comparándola con la variedad testigo INIAP-14
que tuvo un rendimiento de 5217 kg/ Ha, no así las líneas GO-00891,
GO-00913, GO-00882, GO-00912, GO-00869, GO-00921 que tuvieron
un rendimiento de 3932, 3994.3, 4062.7, 4156, 4206,7 y 4231 kg/ ha. La
71
variable rendimiento en las líneas tuvo una media de 4544,73 con un CV
de 15,03 % y las variedades fue de 4673 con un CV de 15,72 % (Cuadro
26).
Longitud de grano descascarado
De acuerdo a los análisis estadísticos correspondientes hubo diferencias
significativas para los tratamientos. Sobresaliendo la línea, GO-00899,
GO-00920, con una longitud de 7.4 y 7.2 mm comparándola con la
variedad testigo INIAP- FL 01 que tuvo 7.7 mm, la línea que tuvo la
menor longitud fue GO-00882 con 6.7 mm.
La variable longitud de grano en las líneas tuvo una media de 7,1 con un
CV de 1.84 % y las variedades fue de 7,35 con un CV de 1.63 %
(Cuadro 26).
Ancho de grano descascarado
En los análisis estadísticos correspondientes se encontró diferencias
significativas para los tratamientos. Sobresaliendo las líneas, GO-00897,
GO-00901, con 2.4 mm comparándola con la variedad testigo INIAP 17
que tuvo 2.3 mm, la línea que tuvo la menor longitud fue, GO-00899,
GO-00918 con 2.03 mm (cuadro 27).
Índice de pilado
Los mayores promedios del indicé de pilado lo presentaron las
siguientes líneas GO-00901, con un 74 % seguidos GO-00869, GO-
00891, GO-00913 CON 71 %, GO-00913 con un 72%, comparadas con
la variedad INIAP FL-01 que tuvo un 71% (cuadro 27).
72
Centro blanco
Los menores promedios los presentaron las líneas, GO-00911, GO-
00904, GO-00882 y la variedad INIAP FL-01 con promedios que
variaron entre, 0.05 a 0.2. Los mayores promedios los mostraron las
líneas GO-00897, GO-00901, GO-00914, con promedios que fluctuaron
entre 0.6 a 1,1. Según la escala del grado opacidad de grano (CIAT)
(Cuadro 27).
Forma de grano descascarado
Siendo las líneas, GO-00899, GO-00920, GO-00921, GO-00912, y la
variedad INIAP FL-01 que presentaron una forma de grano largo, con
promedios que fluctúan entre 3.6 a 3.3 mm, y las líneas que presentaron
forma de grano medio fueron GO-00897, GO-00882, GO-00891, GO-
00901, que fluctúan entre, 3.0 a 2.8 (Cuadro 27).
Porcentaje de grano partido
Los menores promedios los presentaron las líneas GO-00891, GO-
00901 con promedios que variaron entre 3.3 y 3.8, comparadas con las
lineá testigo INIAP-FL01 con 5.2, el mayor promedio lo mostro la
líneas GO-00899, con un promedios que fluctuó entre 14.3 % (Cuadro
28)
Porcentaje de polvillo
Los menores promedios los presentaron las líneas GO-00918, GO-
00882 con promedios que variaron entre 3.5 y 4.3, comparadas con las
lineá testigo INIAP-FL01 con 4.2, el mayor promedio lo mostro la
líneas GO-00899, con un promedios que fluctuó entre 7.2 (Cuadro 28)
73
Contenido de Hierro
Los mayores promedios los presentaron las líneas GO-00920, GO-
00921, GO-00911 con promedios que variaron entre 22.8, 16.3, y 14.6
mg. comparadas con las lineá testigo INIAP 14 con 13.4, mg el menor
promedio lo mostro la líneas GO-00899, con un promedio que fluctuó
entre 5.5 mg / L (Cuadro 28)
Contenido de Zinc
Los mayores promedios los presentaron las líneas GO-00918, GO-
00904 con un promedio de 21.8, 21.4, mg. comparadas con las lineá
testigo S-FL09 con 19.7, mg el menor promedio lo mostro la líneas GO-
00899, con un promedio que fluctuó entre 16.1 mg (Cuadro 28)
Características agronómicas y molineras de los genotipos en
investigación.
En el cuadro 29 se muestra los resultados de las características
agronómicas y molineras de los materiales en investigación.
74
Cuadro 26. Promedio de algunas características agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro 2014
Tratamientos
Granos vanos por
panícula
Peso de mil semillas
Rendimiento
Longitud de
grano
descascarado
1
2 3
4
5
6 7
8
9 10
11
12 13
14 15
16 17 18
19
GO 00869
GO 00882 GO 00891
GO 00897
GO 00899
GO 00901 GO 00904
GO 00911
GO 00912 GO 00913 GO 00914
GO 00918 GO 00919
GO 00920 GO 00921
Promedio
C.V. %
INIAP 14
INIAP 17 INIAP FL 01
FL O9
Promedio
C.V. %
33,90 ab
40,1 ab 49,3 ab
34,53 ab
32,3 ab
18,36 b 43,77 ab
52,9 ab
36,86 ab 53,06 ab 65,43 a
16,86 b 31,26 ab
13,63 b 25,37 ab
36,51
58,5
15,5 b
22,1 a 30,5 a
28,73 a
24,2
23,23
27,17 bcd
26,84 bcd 27,52 bcd
31,26 a
25,41 cd
26,47 bcd 27,81 bc
29,23 ab
28,29 abc 26,45 bcd 27,49 bcd
26,87 bcd 29,34 ab
25,62 cd 24,43 d
27,34
4,53
27,37 bc
32,31 a 30,1 ab
24,45 c
28,56
6,8
4207 b
4063 b 3932 b
4872 ab
5603 a
5235 ab 5190 ab
4393 ab
4146 b 3994 b 4458 ab
5010 ab 4286 ab
4541 ab 4231 b
4545
15,03
5217,3 a
5142 a 3788 a
4544,7 a
4673
15,72
7,15 bc
6,70 f 6,82 ef
7,24 abc
7,43 a
6,87 def 7,15 bc
7,18 bc
7,18 bc 7,00 cde 7,03 cde
7,22 abc 7,19 abc
7,27 a 7,09 bcd
7,1
1.84
7,27 b
7,13 b 7,78 a
7,23 b
7,35
1.63
ns = no significativo 1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según Duncan al 0,0
76
Cuadro 27. Promedio de algunas características agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro 2014
Tratamientos
Ancho de grano
Indicé de pilado
Centro blanco
Forma de grano
1
2
3
4 5
6
7
8 9
10
11 12
13
14 15
GO 00869
GO 00882
GO 00891
GO 00897 GO 00899
GO 00901
GO 00904
GO 00911 GO 00912
GO 00913
GO 00914 GO 00918 GO 00919
GO 00920 GO 00921
Promedio
2,2 de
2,3 abcd
2,4 abc
2,5 a 2,1 f
2,4 a
2,3 cde
2,2 cde 2,2 de
2,2 cde
2,3 cd 2,0 f 2,3 cde
2,1 ef 2,1 ef
2,24
71
70
71
68 57
74
64
69 68
71
70 72
65
68 69
68
0,4
0,2
0,4
0,6 0,3
1,7
0,1
0,2 0,8
0,4
1,1 0,7
0,3
0,4 0,4
0,5
3,2
2,9
2,9
3,0 3,6
2,8
3,1
3,2 3,3
3,1
3,1 3,6
3,2
3,4 3,3
3,2
C.V. % 3,42
16
17
18
19
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
Promedio
2,13 bc
2,36 a
2,21 bc
2,1 c
2,2
69
63
71
69
68
1,9
0,65
0,1
0,4
0,76
3,4
3,0
3,5
3,4
3,3
C.V. %
ns = no significativo
2,11
1/ Las cifras de las columnas con la misma letra son iguales estadísticamente según Duncan al 0,05 de probabilidad
77
Cuadro 28. Promedio de algunas características agronómicas, La Cuca, Arenillas, El Oro 2014
Tratamientos
GRANO
PARTIDO
POLVILLO
Fe
Zn
VIGOR
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
GO 00869
GO 00882
GO 00891
GO 00897
GO 00899
GO 00901
GO 00904
GO 00911
GO 00912
GO 00913
GO 00914
GO 00918
GO 00919
GO 00920
GO 00921
INIAP 14
INIAP 17
INIAP FL 01
FL O9
4,8
5,1
3,3
6,2
14,3
3,8
8,5
6,3
7,8
5,2
5,7
5,7
7,9
7,7
7,6
5,7
13,8
5,2
5,7
4,4
4,3
5,2
4,6
7,2
4,4
5,6
4,8
5,7
4,7
4,9
3,5
5,9
5,2
4,9
7,4
6,3
4,2
4,9
9,3
8,3
10,0
7,5
5,5
7,4
8,7
14,6
8,1
11,2
7,9
7,8
8,8
22,8
16,3
13,4
7,0
8,7
8,7
18,4
21,6
21,6
16,2
16,1
17,7
21,6
18,5
19,0
17,9
18,3
21,8
19,8
20,0
17,8
19,0
14,6
19,1
19,7
4
4
4
4
3
3
4
3
3
4
4
4
4
3
4
3
3
3
3
78
Cuadro 29; Características agronómicas y molineras de los genotipos en investigación, La Cuca, Arenillas, El Oro
2014
79
5. DISCUSIÓN
El genotipo GO-00919 fue la que más sobresalió entre las líneas y
variedades, fue la más tolerante a las enfermedades estudiadas mientras
que las líneas GO-00911, GO-00918 que fueron las más susceptibles con
respecto a las variedades comerciales.
En lo referente a días a floración, y ciclo vegetativo se pudo observar
que no tuvo relación directa con el rendimiento, por cuanto se obtuvieron
buenos rendimientos tanto para: materiales intermedios como para los
materiales tardíos.
Con respecto a la altura de planta se pueden considerar a casi todas las
líneas como semíenanas; a excepción de la línea GO-00882 que se la
considera como intermedia, Características requeridas en los materiales
en estudio para evitar el acame, concordando con lo expresado por
.Jenning (1981), quien señala que tallos cortos y fuertes, más que ningún
otro carácter, determinan la resistencia al volcamiento,
Así mismo en lo referente a macollos y panículas / m2 obtenidas en el
campo se logró determinar que no hubo relación directa con el
rendimiento final ya que las Líneas que tuvieron el mayor número de
panículas / m2 no obtuvieron el mayor rendimiento, no concordando con
lo mencionado por Angladette (1969), quien sostiene que a mayor
números de macolles por panículas / m2, mayor rendimiento.
En lo referente a las características de las variables longitud de panícula
y granos / panícula, se observó que no necesariamente las panículas con
mayor longitud tuvieron el mayor número de granos / panícula, así
mismo no obtuvieron un bajo porcentaje de esterilidad y un buen peso
80
de grano, no concordando con lo mencionado por Carranza (1998),
quien en un trabajo similar encontró que a mayor longitud de panículas
existe un mayor número de grano por panícula, guardando relación con
el rendimiento.
Relacionado a la variable longitud de grano al ser estudiada se
determinó que la gran mayoría de los tratamientos mostraron granos
largos, característica que van de acuerdo a los objetivos del Programa de
arroz, argumentado por Coffman (1985) que en América Latina
generalmente Se prefiere un grano de tipo largo a extra - largo.
En lo que se refiere a. la calidad molinera, según los datos obtenidos, se
determinó que la mayoría presentaron buena calidad molinera sobre
pasando claramente el 55 % de grano entero, en cuanto a este carácter el
CIAT (1980) manifiesta que el porcentaje de grano entero y pulido que
se obtiene de una cantidad dada de arroz en cáscara, se denomina índice
de pilada.
En lo concerniente al rendimiento estos valores variaron entre 3932
kg/ha a 5603 kg/ha, las líneas G0-00891 y GO-00913 presentaron los
rendimientos más
bajos.
El
resto
de
tratamientos
mostraron
rendimientos superiores, en este aspecto Vargas (1981), menciona que el
objetivo final de una buena variedad en un alto potencial de
rendimiento.
Las líneas estudiadas presenta muy poco centro blanco (por debajo de 1
en la escala) con la excepción GO-00901, que tuvo una escala de 2, en
relación al centro blanco el CIAT (1980), manifiesta que los granos
translúcidos son los más deseados en la industria arrocera, por lo tanto
81
los fitomejoradores ponen particular interés en el desarrollo de nuevas
variedades que tengas granos libres de mancha blanca.
82
6. Conclusiones
En base a los resultados obtenidos en este estudio se concluye lo
siguiente:
1.
Se observó que las enfermedades Tizón de la vaina y Pudrición
negra del pie se presentaron a partir de los 50 y 60 días después de la
siembra.
2.
Las enfermedades Mancha marrón y virus de la hoja blanca,
tienden a enmascarar sus síntomas aparecen al comienzo del ciclo del
cultivo y poco a poco se van perdiendo para luego aparecer en la fase
final del ciclo.
3.
La línea GO-00919 y la variedad INIAP FL-01 lograron mayor
tolerancia a las enfermedades presentes en la investigación
4.
La línea GO-00919 fue la más precoz con 92 días del ciclo del
cultivo tuvo una altura de 91 cm, con 140 granos por panícula con un
peso de 29 gramos las mil semillas, con una longitud de grano de 7.2
mm y un ancho de 2.3 mm.
5.
Con respecto a la calidad molinera las líneas: GO-00919, con una
calidad de molienda de 65 % de granos enteros, mientras que la línea
GO-00899 tuvo un 74 %. Dichos materiales de arroz, cumplieron con
las características agronómicas y de calidad que interesan al productor
y el consumidor.
6.
Las línea con mayor contenido de hierro fue GO-00920 con 22.8
mg/ L, y la de mayor contenido de zinc fue GO-00918 con 21.8 mg/ L
y la variedad INIAP 14 con 13,4 mg/L de hierro y 19 mg/L zinc
83
7. RECOMENDACIONES
En base a los resultados obtenidos en este estudio se recomienda lo
siguiente:
Repetir el ensayo en diferentes zonas arroceras para confirmar los
resultados obtenidos y adaptabilidad a los diferentes ecosistemas.
Seleccionar
las
líneas que tuvieron mayor
tolerancia a
enfermedades, rendimiento y alto contenido de hierro y zinc para
futuros cruzamientos.
Realizar control preventivo de enfermedades como Rhizoctonia y
G. graminis antes de los 50 días del cultivo.
Indicar a los agricultores los beneficios de los cultivos
biofortificados.
Estimular la producción de cultivos biofortificados por las
instituciones públicas y empresas privadas.
84
8. LITERATURA CITADA
Agbagala, M. 1997. Ocurrence and survival of Burkholderia glumae
(Kurita & Tabei, Comb. Nov-) Yabuuchi et al. in rice (Oryza
sativa L.) seeds. Thesis (M.Sc.) University of The
Philippines at Los Baños. p. 67
Agrios, G. 2004. Fitopatologia. Editorial Limusa S.A. México p. 358
Angladette, R. (1969). El Arroz. Editorial Blume, Madrid, España.
Colección de Agricultura Trópica, pp 60-200,
Arias de López, Myriam.
2007. En Manual del cultivo de arroz.
Instituto
Nacional
Autónomo
de
Investigaciones
Agropecuarias. (INIAP) Estación Experimental Boliche, Ec.
Manual No. 66 p. 65-98.
Armijos, F. 2007. Enfermedades fungosas del arroz. En Manual del
cultivo de
arroz.
Instituto
Nacional
Autónomo
de
Investigaciones
Agropecuarias.
(INIAP),
Estación
Experimental Boliche, Ec. Manual No. 66 p. 77.
Ainsworth, G., Sparrow. F. y Sussman, A. 1973. The Fungi.Academic
Press. EE.UU. Volúmen IV A. 621 p
Barnett, H. 1973. Illustrated genera of Imperfect fungi. Burgess. EE.
UU. 218 p
Beltrame, L. y Louzada, J. 1992. Water Use Rationalization in Rice
Irrigation by Flooding. Mimeo. 9 pags. Porto Alegre. RS.
Brasil
85
Bouis, H. 1996. Enrichment of food staples through plant breeding: a
new strategy for fighting micronutrient malnutrition, Nutr.
Rev. 54: 131–137.
Bridge, P.D.; Hawksworth, D.L.; Kavishe, D.F.; Farnell, P.A. 1989. A
revision of the species concept in Sarocladium, the causal
agent of sheath-rot in rice and bamboo blight, based on
biochemical and morphometric analyses. Plant Pathology,
38(2): p.239-245.
Calvert, L. y Reyes, L. 1999. Manejo del Complejo “Sogata – Virus de
la hoja blanca” en el cultivo de Arroz. Centro Internacional
de Agricultura Tropical (CIAT) - Corporación Colombiana
de Investigación
Agropecuaria
(CORPOICA),
Fondo
Nacional del Arroz.
Castaño-Zapata, J. y Del Rio, L. 1994. Guía para el diagnóstico control
de Enfermedades en cultivos de importancia Económica.3ra
Edición. Zamorano, Honduras: zamorano Academic Press.
pp. 25 – 302.
CIAT, 1983. Sistema de Evaluación Estándar para Arroz. Programa de
Pruebas Internacionales de Arroz. Manual Arrocero,
Traductor y Adaptador. Cali, Colombia. 230 p.
Coffman W. 1985. Arree, Investigación y producción. Copilado y
editado por Eugenio Tascon y Elías García. Centro
Internacional de Agricultura Tropical. Calí (COI.). Editorial
XYZ. p 277.
86
Correa-victoria, F. 1992. Foro Nacional de Rhizoctonia en arroz,
Bogotá, abril 9-10 Fedearroz. Alternativas
Correa-Victoria, F, J. 1997. Principales enfermedades del arroz. MIP
en arroz. Manejo Integrado de Plagas: Artrópodos,
Enfermedades y Malezas.
Fundación Polar Venezuela,
FEDEARROZ
Colombia,
FLAR,
CIAT.
Caracas-
Venezuela. p. 123 – 141.
Correa-Victoria, F. 2005. Complejo Ácaro-Hongo-Bacteria del arroz.
Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT).
Cheaney, R. L. y Jennings, P.R. 1975. Problemas en cultivos de arroz en
América Latina. Cali, Colombia. CIAT. p. 54
Crop Protection Compendium (CD). 2004. Londres, Edition. CAB
International. Wallingford,
UK:
www.cabicompendium.org/cpc.
Das, S. R.; N. Nivedita; N. Nayak: «Efficacy of Fungicides in
Controlling Sheath Rot of Rice in Orissa», Crop Research-
Hisar. 14 (3): 497-500, 1997.
Diago, M., Ospina, J.O., Pérez, C.R., Saavedra, E., Echeverri, J.,
Cuevas, A., Castilla, L., Pineda, D.F., Ramírez, O., y
Bejarano, N. 2009. Un buen manejo del cultivo, verdadera
barrera contra el añublo bacterial. Revista Arroz 57(482): 30-
38.
Devescovi, G., Bigirimana, J, Degrassi, G.; Cabrio, L., Li Puma, J.J.,
Kim, J.,Hwang. I., y Venturi,V., 2007. Involvement of a
87
quorum-sensing-regulated lipase secreted by a clinical isolate
of Burkholderia glumae in severe disease symptoms in rice.
Applied and Environmental Microbiology 73(15): 4950-
4958.
Espinoza, A. 2007. Enfermedades fungosas del arroz. En Manual del
cultivo de
arroz.
Instituto
Nacional
Autónomo
de
Investigaciones
Agropecuarias,
Ec.
(INIAP)
Estación
Experimental Boliche. Manual No 66 p. 75 – 83
Fang-Jie Zhao and Steve P McGrath. 2009. Biofortification and
Phytoremediation Current Opinion in Plant Biology, 12:1–8
Falk, BW; Tsai, JH. 1998. Biology and molecular biology of virus in the
Tenuivirus. Annual Review of Phytopathology 36:139-163.
FEDEARROZ. 2000. Guía de reconocimiento y manejo de las
principales enfermedades de arroz. Santa Fe de Bogotá.
Colombia. p 21 – 40.
Filippi, M.C, Prabhu, A.S., Silva, G.B. 2004. Cultivo do Arroz Irrigado
no Estado do Tocantins. Sistemas de Produção, n 3. Goiania:
Embrapa Arroz e Feijão. Versão eletrônica.
Fory, P., Bravo, D., Ariacapa, G., Prado, G., Mosquera, G., 2010.
Diagnóstico molecular de B. glumae y B. gladioli en semillas
de arroz. CIAT.
Garrido, M. 2009. Manejo de la pudrición de tallos y vainas del arroz.
Universidad de Nacional de Tumbes y SERFIL S.A. p. 6-7,
15.
88
González, B. 2002.Espectro patológico de las principales enfermedades
del cultivo del arroz Departamento de Agricultura, Facultad
de Agronomía. Universidad de Matanzas.p.4-6,30.
González, L. 1989. Introducción a la Fitopatología. Servicio editorial
UCA. San José de Costa Rica. p. 148.
Goto, K. y Ohata, K. 1956. New bacterial diseases of rice (brown stripe
and grain rot).Ann. Phytopath. Soc. Japan 21:46-47.
Guzmán, P. 1997. Estudio Agrometereológico del Añublo de la Vaina
(Rhizoctonia solani Kuhn) en el Cultivo del Arroz.
Fitopatológia Colombiana. Vol 20 No. 1. p. 1-6.
Groth, D. 2010. Rice panicle bacterial blight update. Rice Research
Station News Vol 7 (4): p.2.
Hass, J. D.; J. L. Beard; L. E. Murray-Kolb; A. M. Del Mundo; A. Felix,
and G. B. Gregorio: “Iron-biofortified rice improves the iron
stores of nonanemic Filipino woman”, J. Nutr. 135: 2823-
2830, 2005
Ham, J., Melanson, R. y Rush, M. 2011.Burkholderia glumae: next
major pathogen of rice Molecular Plant Pathology 12(4): 32-
339.
Hotz, C., Brown, K., 2004. Assessment of the risk of deficiency in
populations and options for its control, Food Nutr Bull25.
S99–S199.
89
IIA: Instructivo técnico del cultivo de arroz, Centro Nacional de
Sanidad Vegetal, Ministerio de la Agricultura, Cuba, 2006.
INIA.
(Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas.) 1988-2002.
Informes
anuales.
Araure,
Portuguesa.
Centro
de
Investigaciones Agropecuárias del Estado Portuguesa. CIAE
Portuguesa.
INIA. 2004, El Cultivo del Arroz en Venezuela Instituto Nacional de
Investigaciones Agrícolas. 2004. Comp. Maracay. p. 202
(Serie Manuales de Cultivo INIA Nº1) p. 124-131.
INEC. 2014, Instituto Nacional de Estadísticas y Censos. Encuesta de
Superficie y Producción Agropecuaria Continua. ESPAC
2002-2011.
INIAP.
(Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, EC).
2011. Informe anual del Departamento Nacional de
Protección
Vegetal
sección
Fitopatología.
Yaguachi,
Ecuador, Estación Experimental Enrique Ampuero Pareja,
IRRI - CIAT (International Rice Research Institute – Centro
Internacional de Agricultura Tropical). 1983. Sistema de
evaluación, Estándar para arroz. 2da edición, Baños,
Filipinas. p. 61.
Jayasekhar y Prasad, 1989. effect of different levels of potasium at each
of the two nitrogen levels on the incidence of sheath rot,
growth and yield of rice. Madras agric. J. 78(1): 1-4
90
Jeong, Y., Kim, J., Kim, S., Kang, Y., Nagamatsu, T. &Hwang, I. 2003.
Toxoflavin produced by Burkholderia glumae causing rice
grain rot is responsible for inducing bacterial wilt in many
field crops. Plant Dis. 87: 890-895.
Jenning P, 1.981. Mejoramiento del arroz Centro Internacional de
Agricultura Tropical. Calí, (COL). pp 79-80.
Jennings, P.R. 1985. Mejoramiento del arroz. Arroz: Investigación y
Producción. Referencia de los cursos de capacitación sobre
arroz dictado por el CIAT, Cali, Colombia. p. 205 – 231.
Latham, 1997. Human nutrition in the developing world, FAO Food and
Nutrition Series No. 29, Roma, 428p
Martínez-González, E., Barrios-Sanromá, G., Rovesti, L. y Santos-
Palma R. 2006. Manejo Integrado de Plagas. Manual
Práctico. Centro Nacional de Sanidad Vegetal (CNSV),
Cuba.
Meneses, R., Gutiérrez, A., García, A., Antigua, G., Gómez, J., Correa-
Victoria y Calvert. L., 2001. Guía para el trabajo de campo
en el manejo integrado de plagas del arroz. CIAT, IIA-Cuba,
FLAR. Publicación del Fondo Latinoamericano para Arroz
de Riego (FLAR). 4ta ed. revisada y ampliada. Cali,
Colombia. pp.41- 44 – 49- 76.
91
Milagrosa, S. 1987. Transmission of Sarocladium oryzae (Sawada) W.
Gams & Hawksv through rice seeds. Unpublished PhD
thesis. University of the Philippines at Los Baños, 84p.
Nandakumar, R., Rush, M., Shahjahan, A., O’Reilly, K. y Groth, D.
2009. Bacterial panicle blight of rice in the southern United
States caused
by
Burkholderia
glumae
and
B.
gladioli.Phytopathology 95 (suppl.): S73.
Nenínger, Hilda; Hidalgo, Elsa; Barrios, L.; Pueyo, María. 2003.
Hongos presentes en semillas de arroz (Oryza sativa L.) en
Cuba. FITOSANIDAD. 7(3):p.7-11.
Nass, H. y Rodríguez, H. 1983. Observaciones de la problemática
fitopatológicos del
arroz
en
Portuguesa.
FONAIAP
Divulgativo 1 (11): 29.
Nestel P., Bouis H.,Meenakshi J., Pfeiffer.2006. W. Biofortification of
staple food crops. J Nutr, 136:1064–1067.
Ou, SH. 1985. Rice Diseases. 2a ed. Commonwealth Agricultural
Bureau. Wallingford, Inglaterra. p. 660.
Ou, S.H. 1985. Rice diseases.CAB Commonwealth Mycological
Institute, Kew Surrey, England. p. 380.
Ou, S.H. 1985b. Sheath rot. En; International Rice Research Institute
(IRRI). Rice diseases, 2a. ed. Los baños (Laguna). Filipinas.
P. 291- 294
92
Ou, S. O. 1972. Rice Diseases. Commonwealth Mycological Institute.
England. p. 268-269.
Ou, S. M. 1972. Rice Diseases. Commonwealth Mycological Institute.
Kew, Surrey England. 368 p.p.
Ospina. J. 2010. Alternativas de control de la mancha naranja
(Gaeumannomyces graminis var. graminis). Revista Arroz
(Fedearroz) - Vol. 57 no. 479 pp. 13-14, 52.
Pabón, F. 1994. Pudrición de la Vaina del Arroz Manejo y Control.
CORPOICA (Corporación Colombiana de Investigación
Agropecuaria).
Palleroni, N. J., R. Kunisawa, R. Contopoulou, y M. Doudoroff. 1973.
Nucleic acid homologies in the genus Pseudomonas. Int J
Syst Bact 23:333-339.
Prado, G., Correa, F., Aricapa, M. y Escobar, F. 2001. Caracterización
preliminar de la resistencia de germoplasma de arroz al
añublo de la vaina (Rhizoctonia solani Kuhn). In: Foro
arrocero latinoamericano 7(1): 8-11.
Pantoja, A., Fischer, A., Correa-Victoria, F., Sanint L., y Ramírez. 1997.
MIP en Arroz: Manejo integrado de plagas; Artrópodos,
enfermedades y
malezas.
Cali,
Colombia.
Centro
Internacional de agricultura Tropical (CIAT). Publicación N°
292. p. 141
Parra, J. 2000.Arroz: “Evaluación de herbicidas post-emergentes en
mezclas con ácidos húmicos”. SICA (Servicio de
93
información y censo agropecuario del Ministerio de
Agricultura, Ganadería, Acuacultura y Pesca, Ec.) Boletín
informativo http://www.sica.gov.ec.
Prescott, J.M., Burnett, P.A., Saari. E.E. 1986. Enfermedades y plagas
del trigo: una guía para su identificación en el campo.
CIMMYT. México, D.F., México.
Rivera, C., 2011. Ciat, Bulkholderia glumae (Kurita Y Tabei) un nuevo
problema, un nuevo reto agronómico – taller de generación
de capacidades vinculadas con el sector arrocero y cambio
climático (Comagagua, Honduras noviembre del 2011).
Rodríguez, H., Nass, H., Arteaga de R., L. 1993. Tratamiento de semilla
con fungicidas para controlar piricularia en arroz. Fitopatol.
Venez. 6: 38-40.
Rush, M. 1992. Leaf Sheath Culm Diseases. Compendium of Rice
Diseases.The American Phytopathological Society.P. 23-24.
Rush, M. and Lee, F. 1992. Leaf Sheath Culm Diseases. Compendium
of Rice Diseases. The American Phytopathological Society.p
22 – 23.
Saddler, G.S. 1994. Burkholderia caryophylli. IMI Descriptions of
Pathogenic Fungi
and
Bacteria
No.
1215.
CAB
International, Wallingford, UK.
Sandoval, Ileana y Bonilla, Tania. 2001. Comportamiento de la
pudrición de la vaina del arroz por Sarocladium oryzae
94
(Sawada) Gams & Haswks en variedades de la Habana y
Pinar del Río. FITOSANIDAD. 5(1): p.3-6.
Shahjahan, A. K., Rush, M. C., Groth, D. y Clark, C. 2000. Panicle
blight research points to a bacterial cause. Rice J. 103:26-
28.Saddler, G.S. (1994). IMI Descriptions of fungi and
bacteria. No. 1219. Mycopathologia 128: 59-60.
SENAPAN, 2011. Secretaría Nacional para el Plan de Seguridad
Alimentaria y Nutricional, Panamá, boletín divulgativo.
Sica. 2003. (Servicio de información y censo agropecuario del
Ministerio de Agricultura, Ganadería, Acuacultura y Pesca,
Ec.). Importancia del arroz. http://www.sica.gov.ec.
SINAVIMO. 2010. Sistema Nacional de Vigilancia y Monitoreo de
Plagas - SENASA. Gaeumannomyces graminis var. tritici
Boletín p. 2.
Smith, D, Onions AHS. 1994. The Preservation and Maintenance of
Living Fungi. 2nd ed. Wallingford, United Kingdom: CAB
International. p. 122.
Stangoulis J, y Sison C. 2008. Crop Sampling Protocols for
Micronutrient Analysis, Harvestplus:
Torres, D; Capote, D. 2004. Agroquímicos un problema ambiental: uso
del análisis químico como herramienta para el monitoreo
ambiental (en línea). Ecosistemas: revista científica y técnica
de ecología y medio ambiente (3). Consultado 5 oct. 2013.
95
Disponible
en:
http://www.revistaecosistemas.net/pdfs/50.pdf
Tschen, S.M.J.; Chen, L.L.; Hsieh, S.T.; Wu, T.S. 1997. Isolation and
phytotoxic effects of helvolic acid from plant pathogenic
fungus Sarocladium oryzae. Botanical Bulletin of Academia
Sinica, 38(4): p.251-256.
Vargas D. 1981. Arroz, Investigación y Producción. Compilado y
editado por Eugenio Tascón y Elías García (ClAT) Calí
Colombia, p 93.
Velazhahan, R.; Ramabadran, R.; Sudhakar, R. 1989. Influence of
Acrocylindrium oryzae Sawada on rice seed germination and
seedling vigour. International Rice Research Newsletter,
14(2): 23p.
Vera,
V.
1971.
Estudio
preliminar
sobre
la
distribución
y
comportamiento de Tagosodes orizicolus Muir en las
principales zonas arroceras de la provincia del Guayas.
Guayaquil, Ecuador, tesis: Ing. Agr. Universidad de
Guayaquil, Facultad de Agronomía y Veterinaria p. 56.
Whitney, N. 1990. Fungicide performance on Black Sheath Rot of rice.
Texas A. y M. University Agricultural Research and
Extension Center at Beaumont.
WHO, 2006. Guidelines on Food Fortification with Micronutrients,
World Health
Organization/Food
and
Agricultural
96
Organization of the United Nations, WHO/FAO, Geneva,
2006.p. 527.
Zeigler, R.S., y Álvarez, E. 1987. Bacterial sheath brown rot of rice
caused by Pseudomonas fuscovaginae in Latin America.
Plant Dis. 71: 592-597
Zeigler, RS; Rubiano, M; Pineda, A. 1988. A field screening method to
evaluate rice breeding lines for resistance to hoja blanca
virus. Annals of Applied Biology 112:151-158..
Zeigler, R.S. y Álvarez, E. 1989. Grain discoloration of rice caused by
Pseudomonas glumae
In
Latin
America.
Plant
Diseases.73:368.
Zeigler, RS; Rubiano, M; Pineda, A. 1988. A field screening method to
evaluate rice breeding lines for resistance to hoja blanca
virus. Annals of Applied Biology 112:151-158.
97
Valores originales transformados a √ x+1
Rhizoctonia
Trat. I II III IV ∑
GO 00869 1,0 ns 1,0 ns 2 a 3,4 a 7,4
GO 00882 1,0 ns 1,0 ns 2,2 a 3,2 a 7,4
GO 00891 1,0 ns 1,3 ns 2,5 b 3,1 ab 7,9
GO 00897 1,0 ns 1,0 ns 2 a 3,2 a 7,2
GO 00899 1,0 ns 1,0 ns 2 a 2,9 ab 6,9
GO 00901 1,0 ns 1,0 ns 2,2 a 2,9 ab 7,1
GO 00904 1,0 ns 1,3 ns 2,4 a 3,3 ab 8,0
GO 00911 1,0 ns 1,0 ns 2,2 a 3,1 ab 7,3
GO 00912 1,0 ns 1,0 ns 2,5 b 3,1 ab 7,6
GO 00913 1,0 ns 1,0 ns 2 a 3,2 a 7,2
GO 00914 1,0 ns 1,0 ns 2 a 3,1 ab 7,1
GO 00918 1,0 ns 1,0 ns 2 a 3,1 ab 7,1
GO 00919 1,0 ns 1,3 ns 1,9 a 2,7 b 6,9
GO 00920 1,0 ns 1,0 ns 2 a 3,1 ab 7,1
GO 00921 1,0 ns 1,0 ns 2 a 2,9 ab 6,9
INIAP 14 1,0 ns 1,0 ns 2 a 2,9 a 6,9
INIAP 17 1,0 ns 1,0 ns 2,2 a 3,1 a 7,3
INIAP-FL01 1,0 ns 1,0 ns 2 a 2,7 a 6,7
S-FL 09 1,0 ns 1,0 ns 2 a 2,9 a 6,9
Valores originales transformados a √ x+1
Bipolaris
Trat. I II III IV ∑
GO 00869 1,0 ns 1,0 c 1,3 bc 2,5 ab 5,8
GO 00882 1,0 ns 1,7 abc 1,0 c 2,7 ab 6,4
GO 00891 1,0 ns 1,7 abc 2,5 ab 2,7 ab 7,9
GO 00897 1,3 ns 2,2 a 1,6 abc 3,2 a 8,4
GO 00899 1,0 ns 1,3 bc 1,6 abc 2,2 b 6,2
GO 00901 1,0 ns 2,0 ab 1,0 c 2,4 ab 6,4
GO 00904 2,2 ns 1,8 abc 1,0 c 3,2 ab 8,2
GO 00911 1,0 ns 2,0 ab 2,7 a 3,1 ab 8,8
GO 00912 1,0 ns 1,7 abc 2,5 ab 3,1 ab 8,2
GO 00913 1,0 ns 1,0 c 1,0 c 2,5 ab 5,5
GO 00914 1,0 ns 1,7 abc 1,0 c 2,7 ab 6,4
GO 00918 1,0 ns 2,0 ab 1,6 abc 2,9 ab 7,5
GO 00919 1,0 ns 2,0 ab 1,6 abc 2,4 ab 7,0
GO 00920 1,0 ns 2,0 ab 1,6 abc 2,4 ab 7,0
GO 00921 1,0 ns 2,0 ab 2,0 abc 2,7 ab 7,7
INIAP 14 1,3 ns 1,6 a 2,2 a 2,9 a 8,1
INIAP 17 1,3 ns 2,0 a 2,7 a 3,2 a 9,3
INIAP-FL01 1,0 ns 1,3 a 1,6 a 2,7 a 6,6
S-FL 09 1,0 ns 1,7 a 2,5 a 2,9 a 8,1
C. Suarez
99
C. Suarez
Valores originales transformados a √ x+1
Sarocladium
Trat. I II III IV ∑
GO 00869 1 ns 1 ns 2 bc 3 b 6,70
GO 00882 1 ns 1 ns 2 abc 3 ab 7,50
GO 00891 1 ns 1 ns 3 a 3 ab 8,40
GO 00897 1 ns 1 ns 1 c 3 ab 6,70
GO 00899 1 ns 1 ns 3 ab 4 ab 8,00
GO 00901 1 ns 1 ns 1 c 3 b 6,40
GO 00904 2 ns 1 ns 2 abc 4 b 7,80
GO 00911 1 ns 1 ns 3 ab 3 ab 7,80
GO 00912 1 ns 1 ns 2 abc 3 b 7,00
GO 00913 1 ns 1 ns 2 bc 4 a 7,30
GO 00914 1 ns 1 ns 2 abc 3 ab 7,50
GO 00918 1 ns 1 ns 2 bc 3 ab 6,90
GO 00919 1 ns 1 ns 2 abc 3 b 7,10
GO 00920 1 ns 1 ns 2 bc 3 b 6,70
GO 00921 1 ns 1 ns 2 bc 3 b 6,70
INIAP 14 1 ns 1 ns 2 a 3 a 7,20
INIAP 17 1 ns 1 ns 2 ab 3 a 6,80
INIAP-FL01 1 ns 1 ns 1 b 3 a 6,10
S-FL 09 1 ns 1 ns 2 a 3 a 7,50
Valores originales transformados a √ x+1
Gaeumannomyces
Trat. I II III IV ∑
GO 00869 1,0 ns 1,0 ns 2 ab 3,2 ns 7,2
GO 00882 1,0 ns 1,0 ns 2,2 ab 3,1 ns 7,3
GO 00891 1,0 ns 1,3 ns 1 c 3,1 ns 6,1
GO 00897 1,0 ns 1,0 ns 1,6 bc 3,1 ns 6,6
GO 00899 1,0 ns 1,0 ns 1,7 bc 2,9 ns 6,6
GO 00901 1,0 ns 1,0 ns 2 ab 2,9 ns 6,9
GO 00904 1,0 ns 1,3 ns 1,8 bc 3,4 ns 7,2
GO 00911 1,0 ns 1,0 ns 2 ab 3,1 ns 7,1
GO 00912 1,0 ns 1,0 ns 2,5 a 3,1 ns 7,6
GO 00913 1,0 ns 1,0 ns 2 ab 3,1 ns 7,1
GO 00914 1,0 ns 1,0 ns 2 ab 2,9 ns 6,9
GO 00918 1,0 ns 1,0 ns 2 ab 3,2 ns 7,2
GO 00919 1,0 ns 1,3 ns 1 c 2,7 ns 5,7
GO 00920 1,0 ns 1,0 ns 1,7 bc 2,7 ns 6,3
GO 00921 1,0 ns 1,0 ns 1 c 2,7 ns 5,7
INIAP 14 1,0 ns 1,0 ns 2 a 3,1 ns 7,1
INIAP 17 1,0 ns 1,0 ns 1 b 2,7 ns 5,7
INIAP-FL01 1,0 ns 1,0 ns 1 b 2,7 ns 5,7
S-FL 09 1,0 ns 1,0 ns 2 a 3,1 ns 7,1
100
Valores originales transformados a √ x+1
Incidencia de hoja blanca
Valores originales transformados a √ x+1
Severidad de hoja blanca
Trat.
GO 00869
GO 00882
GO 00891
GO 00897
GO 00899
GO 00901
GO 00904
GO 00911
GO 00912
GO 00913
GO 00914
GO 00918
GO 00919
GO 00920
GO 00921
INIAP 14
INIAP 17
I
1,7 bc
1,7 bc
1,3 bc
1,6 bc
1,7 bc
2,7 a
2,2 abc
1,3 bc
1,3 bc
1,3 bc
1,0 c
1,3 bc
2,2 abc
2,7 a
2,2 abc
1,7 a
1,0 b
II
2 b
2 ab
3 a
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2,2 ab
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2 a
2 a
III
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2 b
2 a
2 b
2 b
2 b
2 b
2 a
1 b
IV
3,2 a
2,0 e
2,7 abcd
2,2 de
2,0 e
2,5 cde
2,7 de
2,7 bcd
2,0 e
3,1 ab
2,0 e
2,9 abc
2,2 de
2,0 e
2,7 abcd
2,2 a
2,0 a
∑
8,9
7,9
8,6
7,8
7,7
9,2
9,4
8,0
7,3
8,6
7,2
8,2
8,4
8,7
8,9
7,9
6,3
Trat.
GO 00869
GO 00882
GO 00891
GO 00897
GO 00899
GO 00901
GO 00904
GO 00911
GO 00912
GO 00913
GO 00914
GO 00918
GO 00919
GO 00920
GO 00921
INIAP 14
INIAP 17
I
2,2 ab
2,2 ab
1,6 ab
1,6 ab
2,2 ab
2,7 a
2,7 ab
1,3 ab
1,6 ab
1,6 ab
1,0 b
1,6 ab
2,2 ab
2,7 a
2,2 ab
2,2 a
1,0 b
II
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,8 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,5 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
2,7 ns
III
2,7 a
2,7 a
2,7 a
2,7 a
2,7 a
2,7 a
3,2 a
2,7 a
2,7 a
2,7 a
2,5 ab
2,7 a
2,2 b
2,5 ab
2,7 a
2,2 a
1,6 b
IV
2,73 ab
2,73 ab
2,73 ab
2,66 ab
2,49 ab
2,49 ab
2,66 b
3,1 a
2,5 ab
3,1 a
2,7 ab
2,9 a
2,7 ab
2,7 ab
2,7 ab
2,7 ns
2,7 ns
∑
10,4
10,4
9,8
9,7
10,1
10,7
11,3
9,9
9,5
10,1
8,7
9,9
9,9
10,7
10,4
9,9
8,0 INIAP-FL01 1,7 a 2 a 2 a 2,2 a 7,9 INIAP-FL01 1,9 a 2,7 ns 2,2 a 2,5 ns 9,4
S-FL 09 1,3 b 2 a 2 a 2,5 a 7,8 S-FL 09 1,6 a 2,7 ns 2,7 a 2,7 ns 9,8
101
Valores originales transformados a √ x+1
Manchado de grano
Trat. I II III IV ∑
GO 00869 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,24 a 6,2
GO 00882 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,34 e 6,3
GO 00891 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,20 abcd 6,2
GO 00897 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,37 de 6,4
GO 00899 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,51 e 6,5
GO 00901 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 2,79 cde 5,8
GO 00904 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,43 de 6,4
GO 00911 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,5 bcd 6,5
GO 00912 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,5 e 6,5
GO 00913 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,6 ab 6,6
GO 00914 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,4 e 6,4
GO 00918 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,2 abc 6,2
GO 00919 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 2,9 de 5,9
GO 00920 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,2 e 6,2
GO 00921 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,4 abcd 6,4
INIAP 14 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,24 ab 6,2
INIAP 17 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,07 b 6,1
INIAP-FL01 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,20 ab 6,2
S-FL 09 1,0 ns 1,0 ns 1,0 ns 3,51 a 6,5
102