Calidad Ambiental Al Interior en Hospitales y Salas de Ambiente Controlado

REVISTA DE CALIDAD AMBIENTAL INTERIOR EN HOSPITALES Y SALAS DE AMBIENTE CONTROLADO

International Standard Serial Number (ISSN) 2013-746X

Núm. 5, ABRIL 2011

www.biotecnologiahospitalaria.com Página 2

Sumario

3. VIGILANCIA ACTIVA DE CONTAMINANTES

AMBIENTALES EN QUIRÓFANOS PARA LA MINIMIZACIÓN DE INFECCIONES NOSOCOMIALES.

E.E. MORENO CAMPOY. Farmacéutica, Responsable de Seguridad del Paciente, Área Sanitaria Serranía, Málaga.

Mª J. PEREZ SANTOS. Facultativo esp. de Área de Microbiología, Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía. Málaga.

F. J. MÉRIDA DE LA TORRE. Director de Área de gestión clínica, Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía. Málaga.

19. CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS

EN EL AIRE DEL HOSPITAL.

C. NEVES PIMENTA DE FRANCA. Bióloga, Máster en Bioquímica aplicada. Universidad de Madeira, Portugal.

31. CALIDAD DE AIRE EN LAS CENTRALES DE

ESTERILIZACIÓN.

E. ISIDORO VELASCO. Facultativo esp. de Área, Microbiología Área de Gestión clínica Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Area Sanitaria Serranía. SERMED.

J.J. CRIADO ALVAREZ. Facultativo esp. de Área, Microbiología Área de Gestión clínica Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Area Sanitaria Serranía. SERMED.

37. BIOSEGURIDAD DE AIRE EN

QUIRÓFANOS.

M.A. TORRES CAÑADILLAS Enfermera de Medicina Preventiva del Hospital General de Ciudad Real.

41. PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO

DE PÉRDIDA DE LA BIOSEGURIDAD AMBIENTAL EN AMBIENTES CONTROLADOS DE UN CENTRO SANITARIO. FCO. J. DE LA VEGA OLÍAS. Médico especialista en Medicina Preventiva y Salud Pública, Hospital Mancha Centro de Alcázar de San Juan.

EDITORIAL

Dra. Gloria Cruceta

Clústers de Biotecnología y las ciudades del Siglo XXI

Cómo recuperar la competitividad utilizando el potencial de la economía del conocimiento? ¿Crear valor a partir capital intelectual?

Es aquí donde el sector de las ciencias de la vida: empresas farmacéuticas y de biotecnología y sector médico, y sus clústers, serán prioridad para las ciudades del Siglo XXI.

Es así como las organizaciones que mantengan su interés en la innovación, serán las líderes en un mercado global, hablo de canalizar e impulsar la cultura de la innovación no como un fin, sino como un medio de captación de ideas.

Directora de la Publicación: Dra. Gloria Cruceta

ISSN 2013-746X. Realización: SEGLA s.l. c/ Córcega, 534, entlo. 1ª Barcelona. 08025 Tel. 93 436 40 61 Fax 93 450 14 88.

Cualquier forma de reproducción, distribución, o transformación de esta obra sólo puede ser realizada con la autorización de los titulares de la publicación.

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BIOSEGURIDAD EN EL LABORATORIO DE MICOBACTERIAS VIGILANCIA ACTIVA DE CONTAMINANTES AMBIENTALES EN QUIRÓFANO PARA LA MINIMIZACIÓN DE IN FECCIONES NOSOCOMIALES.


VIGILANCIA ACTIVA DE CONTAMINANTES AMBIENTALES EN QUIRÓFANO PARA LA MINIMIZACIÓN DE INFECCIONES NOSOCOMIALES COMO ESTRATEGIA PARA LA SEGURIDAD DEL PACIENTE.

EE Moreno Campoy

Farmacéutica, Responsable de Seguridad del Paciente, Área Sanitaria SerranÍa, Málaga.

Mª Jesús Pérez Santos.

Facultativo especialista de Área, Microbiología Área de Gestión Clínica Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía, Málaga.

Francisco Javier Mérida de la Torre

Director Área de Gestión Clínica Laboratorio Clínico y Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía, Málaga.

INTRODUCCIÓN:

La mejora continua de la calidad en la atención

sanitaria, además de dar una respuesta

satisfactoria a los ciudadanos respondiendo a

sus necesidades y expectativas, concibe como

uno de sus objetivos fundamentales la

Seguridad del Paciente.

El sistema actual de atención sanitaria engloba

conocimiento, experiencia, procesos,

tecnología y relaciones humanas. Todo ello

aporta grandes beneficios pero también

comporta riesgos inevitables y potenciales

eventos adversos en la actividad clínica diaria.

La seguridad del Paciente es una preocupación

debido a que es un problema presente en todos

los países, en todos los niveles de la atención

en salud y en los diferentes aspectos de la

atención sanitaria.

Los últimos estudios e investigaciones en este

ámbito evidencian el impacto que los efectos

adversos tienen sobre la morbi-mortalidad,

apareciendo un amplio arsenal de problemas

relacionados con la seguridad.

Muchas situaciones detectadas son susceptibles

de mejora en base a cambios en los sistemas de

trabajo y de instauración de sistemas de

prevención. Así, cualquier mejora significativa

de la seguridad, pasa por actuar a nivel de toda

la organización, creando una cultura basada en

la comunicación, el análisis de las causas y la

implantación de acciones preventivas y

correctoras para la seguridad del paciente.

El Laboratorio Clínico juega un importante

papel en el proceso diagnóstico y terapéutico.



Son muchas las actividades del hospital

relacionadas con los pacientes en las que la

implicación del Laboratorio Clínico es

fundamental por ser preciso un control

analítico para su correcto funcionamiento,

garantizando así la adecuada asistencia

sanitaria incluso en situaciones de emergencia.

Entre otras, cabe destacar su papel en la

vigilancia activa y prevención de infecciones en

el medio hospitalario, que principalmente

afectan a los pacientes más vulnerables.

Por tanto, la vigilancia para la prevención de

infecciones en la Atención Sanitaria es un

indicador de seguridad y por consiguiente de

calidad.

La revisión sistemática de bibliografía en los

últimos años evidencia que la probabilidad de

infecciones quirúrgicas por hongos de origen

ambiental es, en general, bajo.

…llegando a porcentajes de 0,5 – 5 casos por

mil intervenciones y presentándose incidencias

de infección en prótesis articulares cifras en

torno al 1,5% en las prótesis de cadera y el 2,5%

en las de rodilla.

Esto se debería a la posible existencia de casos

de micosis invasoras de origen ambiental

ligados a contaminación, por defectos en el

mantenimiento de los equipos, obras, mal

funcionamiento de las instalaciones de

climatización y/o a una ruptura de las normas

de buena práctica en el control de la infección

que daría lugar a cambios de los parámetros

críticos. Esta puede llegar a tener

consecuencias graves, incluyendo la muerte de

los pacientes, por lo que hay que estar

expectante a las nuevas exigencias y

oportunidades que se plantean.

“Sin embargo, en las salas de alto

riesgo, y en especial en los

quirófanos, la aspergilosis

nosocomial constituye una grave

amenaza para los pacientes...”



OBJETIVO:

Implementación del Programa de Medición

Sistemática y Activa de Colonias de Hongos

Oportunistas y Bacterias

Analizar la evolución del PMHB en los

quirófanos del Hospital Serranía (HS) y su

impacto en la práctica clínica como mejora de

la Seguridad del Paciente.

MATERIAL Y MÉTODO:

Ámbito de actuación: Hospital Comarcal

Serranía. Es un hospital de 140 camas que da

cobertura a una población de unos 120.000

habitantes. Se trata de un hospital de tipo IV,

con una cartera de servicios adaptada a las

necesidades de una población de ámbito rural y

urbano.

Durante 2010 se realizaron 876 sesiones

quirúrgicas, siendo el total de 3002

intervenciones programadas.

Para conseguir el primer objetivo se crea un

grupo de trabajo específico para el desarrollo

del Programa de vigilancia activa y se

comienza con una búsqueda bibliográfica a fin

de contrastar información para establecer un

procedimiento adecuado a nuestra área.

En base a la evidencia científica disponible se

diseña y desarrolla un procedimiento de

actuación teniendo en cuenta los siguientes

aspectos: tipo de muestreo (diagnóstico,

preventivo, rutinario, correctivo), dispositivo

de muestreo, estado de las instalaciones,

fuentes de biocontaminación (aire y

superficies), tipo de actividad desarrollada,

frecuencia de la toma de muestreo,

condiciones de muestreo, tipo de flora a

investigar, medios y condiciones de cultivo.

“ Por todo lo anteriormente expuesto,

en el Hospital del Área de Gestión

Sanitaria Serranía, se implantó un

Programa de Medición Sistemática y

Activa de Colonias de Hongos

Oportunistas y Bacterias (PMHB) en

el que se establece el funcionamiento

y procedimiento a seguir, según los

conocimientos actuales y las mejores

evidencias científicas dispo-

niblesxxi,xxii,xxiii,xxiv, en cuanto a

efectividad y eficiencia para lograr la

mejor vigilancia, prevención y control

(VPC) de las infecciones

nosocomiales en los quirófanos del

hospital”



El Programa de Medición Sistemática y Activa

de Colonias de Hongos Oportunistas y Bacterias

desarrollado en nuestra Área incluye:

1. Tipo de muestreo: Muestreo periódico con

captación activa, preventivo y dinámico.

2. Dispositivo de muestreo: Se selecciona el

muestreador microbiológico del aire MAS-

100 NT, sistema Profesional de Monitoreo

Microbiológico del Aire dado que presenta

ventajas en cuanto a características de

seguridad y facilidad de uso. Igualmente

cumple con el Estándar Internacional ISO

14698-1.

3. Además es un instrumento de alto

rendimiento basado en el principio del

muestreador de aire de Andersen.

El muestreo está basado en el principio de

impacto. El flujo de aire resultante es

dirigido a una placa Petri estándar de agar

de 90 mm. Su tapa perforada tiene 400

orificios por 0.7mm y la velocidad de

Impacto es <11m/s. El analizador cuenta

con un caudal de 100l/minuto.

4. Estado de las instalaciones: Los controles

se realizan con actividad quirúrgica,

aunque en determinadas ocasiones, según

requerimiento de la Dirección-Gerencia y

el servicio de mantenimiento, se

establecen controles con la sala en reposo

(obras, limpiezas del sistemas de

ventilación, tras cambio de filtros, tras

resultados microbiológicos por encima del

nivel admisible y tras aparición de

infecciones nosocomiales).

5. En cualquier caso se verifica que el

sistema de ventilación esté siempre en

funcionamiento.

6. Tipo de actividad desarrollada: Se

identifican dos quirófanos tipo A (cirugía

con prótesis) y cuatro quirófanos tipo B

(resto de cirugía y Urgencias).

Quirófano clase A



7. Fuentes de biocontaminación consideradas

o zonas de muestreo: Se realiza muestreo

efectivo del aire en todas aquellas zonas

del quirófano donde los microorganismos

aerotransportados puedan producir

contaminación, principalmente en los

quirófanos donde se implantan prótesis.

8. Se establece en cada una de las salas los

siguientes puntos de muestreo:

• En la parte alta del quirófano donde se

encuentran la salida de los dispositivos

de impulsión de aire: permite evaluar la

calidad del aire que entra en la sala.

• Próximo al campo operatorio: que nos

permitirá evaluar la remoción de

esporas y bacterias de las superficies

horizontales

• En la puerta de entrada a un metro de

altura desde el suelo: permite evaluar

la entrada de éstas y promover la

adquisición de buenas prácticas (cierre

de puertas).

9. Frecuencia de muestreo: Periodicidad

bimestral, atendiendo a la disponibilidad y

la documentación revisada.

10. Condiciones de muestreo: En cada punto de

muestreo se pasan 1000 L de aire. Dado que

el analizador no tiene capacidad de

selección de caudales bajos, se ha

combinado el volumen y la seriación que,

resuelven en cierta medida esta

circunstancia. La selección de caudales más

bajos aseguraría la recuperación de mayor

número de microorganismos, disminuyendo

los "falsos negativos" al minimizar los

efectos “rebote" y "paso de largo".



11. Aunque en un principio se decidió pasar 250

L por placa (un total de 4 placas), para

evitar el efecto desecación, tras comprobar

que no existía dicha incidencia se disminuyó

el número de placas a 2, haciendo pasar

500 L por cada placa.

La toma del flujo del aire se realiza

situando el cabezal del analizador siempre

en perpendicular u oblicuo a la impulsión.

El cabezal del analizador se desinfecta

entre toma de muestras y se respeta el

tiempo de secado.

Las placas se rotulan e identificadas

previamente.

El transporte de las muestras al Laboratorio

Clínico es inmediato.

12. Tipo de flora a investigar: microorganismos

del ambiente, tanto de origen humano

como del medio: hongos filamentosos tipo

Aspergillus para la zona de impulsión del

aire y flora mesófila, además de hongos

para el campo operatorio y la puerta de

entrada de los quirófanos.

13. Dentro de la flora a investigar se prestó

especial precaución a microorganismos

patógenos como Pseudomonas aeruginosa,

Enterobactrias, Acinetobacter,

Streptococcus, Staphylococcus aureus entre

las bacterias y Aspergillus, Mucor,

Scedosporium y Rhizopus entre los hogos

filamentosos.

14. Medios y condiciones de cultivo utilizar:

• Medios de Cultivo: Placas Petri de uso

habitual (9cm de diámetro): Se utiliza TSA

para bacterias y Saboureaud con

cloramfenicol para hongos.

• Tiempo de incubación: Para bacterias: tras

48 horas. Inicialmente la incubación se

duplicó, manteniendo un grupo de placas a

22ºC y otro a 37ºC otras. Posteriormente,

tras comprobar que no existían diferencias

en la recuperación, se mantuvo la

incubación de bacterias a 37ºC. Para

hongos: tras 7 días a 22ºC.

“El profesional que realiza el

muestreo, está entrenado en

buenas prácticas para la toma de

muestra y manejo del analizador y

usa equipo de quirófano

convencional”.



• Recuento de colonias: En nuestro entorno

se admitió para un nivel de funcionamiento

mínimo una calidad del aire calificada como

aceptable, entre 100-200 ufc/m3 de

aerobios mesófilos totales y en el caso de

hongos 0 ufc/m3

La implantación del Programa de Medición


Oportunistas y Bacterias se realizó en julio de

2008. Durante los últimos 5 meses de ese año

se pilotó el programa en dos quirófanos y se

puso definitivamente en marcha en diciembre

de 2008.

Para alcanzar el segundo objetivo se ha

estudiado un periodo de análisis desde

diciembre de 2008 hasta diciembre de 2010.

La fuente de datos son los informes y actas de

seguimiento de muestras seriadas por cada

actuación.

Se ha evaluado, de cada acta e informe de

seguimiento, el número de unidades

formadoras de colonias, los diferentes criterios

establecidos en el protocolo y descrito en la

metodología del objetivo 1, así como la

identificación de prácticas inseguras.

RESULTADOS:

En el análisis de los controles correspondientes

a la salida de los dispositivos de impulsión,

cabe destacar que en cuatro de los quirófanos

las muestras fueron negativas en todos los

controles realizados (tres salas tipo B y una A).

La otra sala tipo A dio un resultado positivo al

hacer el control tras la realización de una obra

de reforma, a pesar de haber realizado la

limpieza según protocolo para estos casos.

“Se tomaron muestras en 6

quirófanos realizando un total de 38

controles. Cada control incluía la

toma de muestras en tres puntos: la

salida de los dispositivos de

impulsión de aire, próximo al campo

operatorio y la puerta de entrada,

siguiendo el procedimiento

establecido”.



Esto, llevó a la suspensión de la actividad

quirúrgica mientras se realizaban las medidas

correctoras (revisión del sistema de

climatización, limpieza exhaustiva,

comprobación del cumplimiento de los

protocolos existentes y nuevo control

preventivo). Sin embargo, un problema mayor

apareció en la otra sala tipo B, específica para

maternidad, donde controles repetidos daban

positivo, llegando a crecer hasta un total de

41ufc/m3 de Aspergillus sp y Penicillium sp, a

pesar de aplicar las medidas básicas descritas

anteriormente, por lo que se decide recurrir a

una empresa externa para la revisión de los

conductos del ventilación.

Tras dos limpiezas exhaustivas de los conductos

y cambios de filtro, así como de otras medidas

específicas de regulación del aire y sellado de

posibles puntos problemáticos, los controles se

negativizaron. Esto ha dado lugar a que, en el

análisis realizado, el porcentaje de repetición

global de los controles de los quirófanos se

eleve a un 18,42%, aunque en un 60% de las

tomas, correspondientes a los 4 quirófanos

iniciales, no fue necesaria ninguna repetición.

En el resto de las zonas de muestreo, los

resultados fueron similares por quirófanos,

apareciendo también un número elevado de

bacterias, especialmente en los dos últimos

quirófanos reseñados.

En cuanto al análisis realizado sobre la flora

mesófila aerófila, del global de las tomas en los

puntos de entrada al quirófano y campo

operatorio (76 controles), en el 76,31% de los

casos y en base a la bibliografía consultada,

podemos afirmar que nos encontramos con un

ambiente limpio o muy limpio, llegando hasta

el 90,78% si contabilizamos los controles entre

100-200 ufc/m3, considerado como ambiente

aceptable.

Si diferenciamos entre las dos zonas, campo

operatorio y entrada del quirófano, dentro de

la clasificación de ambiente limpio y muy

limpio, se obtiene un 81,57% y un 71,05%

respectivamente. Si incluimos en el recuento

los controles admitidos como aceptables los

datos incrementan hasta un 92,1% y un 89,5%

respectivamente.

“Tras la experiencia del primer año se

protocolizó la revisión de las medidas

ambientales: En cuanto a hongos se

incidió en el funcionamiento

ininterrumpido de la ventilación,

limpieza de filtros, limpieza terminal y

sistematización en el control de

obras”.



Se realizaron actividades formativas con los

profesionales, incluyendo aspectos de prácticas

seguras en el quirófano dentro de la estrategia

de Seguridad del Paciente. Se formó al 80% de

los profesionales del bloque quirúrgico.

DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES:

Tras nuevas revisiones bibliográficas y

formación específica sobre “Controles

Microbiológicos en Hospitales: Quirófanos y

Áreas Críticas”, se han detectado diferentes

áreas de mejora en el Programa de Medición


Oportunistas y Bacterias implantado en el Área.

Entre las oportunidades de mejora

consideradas se encuentra la utilización de un

cabezal con menor número de orificios para

mejorar la sensibilidad, al disminuir el efecto

rebote y el efecto paso de largo. Mientras

tanto, sería necesario utilizar el factor de

corrección Número Más Probable (NMP),

utilizando la cifra deducida del número total

de gérmenes y ajustándola con ayuda de la

tabla de corrección estadística de Feller.

“Tras la adopción de las medidas

correspondientes, en todos los casos,

el resultado de las nuevas muestras

se mostró por debajo del límite de

detección del método empleado.

Según el informe de vigilancia

epidemiológica del Área, las tasas

globales de infección quirúrgica

especialmente en traumatología, han

disminuido al 50%”.

“Tras la revisión de la PRE-Norma Une 171330-4 de Aenor, sería

aconsejable el cambio de la frecuencia de muestreo, estableciendo

diferencias entre los quirófanos tipo A (control mensual) y los de tipo B

(control trimestral) y asumir el muestreo de otras zonas, que hasta el

momento no se habían considerado en la vigilancia activa establecida,

como las cabinas de farmacia (sala de citostáticos y nutrición

parenteral), salas de partos y sala de cuidados intensivos”.



Para garantizar la seguridad en las salas de

riesgo a nivel ambiental es necesario tener

presente la calidad del aire de impulsión así

como el seguimiento de prácticas seguras por lo

profesionales que minimicen la contaminación

ambiental de las salas controladas. Por tanto,

según la bibliografía consultada y la mejora de

hábitos relacionados como el cierre de puertas,

no sería necesario el control en la puerta de

entrada.

En cuanto a los medios de cultivo cabe destacar

que, aunque hay opiniones a favor de la

utilización del Rosa Bengala, por su mayor

capacidad de recuperación y la facilidad de

recuento, hay otros autores que no consideran

que haya tantas diferencias con los medios

clásicas como el Saboureaud más antibióticos,

por lo que no parece necesario el cambio de

medio. El mismo razonamiento se podría

aplicar a las Placas Rhodac frente a las Petri

convencionales.

Queda pendiente un análisis más exhaustivo de

los resultados en cuanto a tipo de

microorganismos por quirófano o si varía el

recuento según la época del año como refieren

algunos autores.

Tras este periodo de dos años de aplicación del

Programa, tanto el equipo directivo como los

profesionales han visto los beneficios en cuanto

a la prevención y disminución de infecciones.

La implantación de este programa ha

fomentado la implicación de diferentes

categorías profesionales (personal celador y de

mantenimiento) además de los sanitarios.

Esta medida se enmarca dentro de la estrategia

sobre seguridad del paciente de la Consejería

de Salud de la Junta de Andalucía y está

promovida a nivel internacional por la

Organización Mundial de la Salud, la

Organización Panamericana de Salud y el

Comité Europeo de Sanidad del Consejo de

Europa, entre otros, y a nivel nacional por el

Ministerio de Sanidad y Política Social.

Igualmente aparece reflejado en diferentes

estándares de acreditación.

“Se ha promovido la concienciación

del personal, detectándose un mayor

cumplimiento de prácticas seguras”.

“La detección precoz de

microorganismos puede prevenir

infecciones relacionadas con la

atención sanitaria mejorando la

Seguridad del paciente”.



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cumplimiento continúo con la Norma ISO

14644-1. (ISO 14644-2:2000). Métodos de

ensayo (ISO 14644-3:2005). Diseño,

construcción y puesta en servicio. (ISO 14644-

4:2001). Funcionamiento. (ISO 14644-5:2004).

Dispositivos de separación (campanas de aire

limpio, cajas de guantes, aisladores, mini

entornos) (ISO 14644-7:2004). Clasificación de

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34.- RESOLUCIÓN 28 de diciembre de 2006, de

la Secretaría General de Sanidad, por la que se

publica el Acuerdo de encomienda de gestión

entre el Ministerio de Sanidad y Consumo y el

Instituto Nacional de Gestión Sanitaria para el

impulso de prácticas seguras en los centros

sanitarios.


XI CURSO

CALIDAD AMBIENTAL EN HOSPITALES: QUIRÓFANOS Y SALAS DE AMBIENTE CONTROLADO

Barcelona, 16 de Junio de 2011

Sala de Actos, Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC).

c/Hospital, 64 - 08001 Barcelona

ACCESO WEB PROGRAMA Conferencia

10.00 - 10.45 h. PRE-NORMA 171330-4 AENOR: VALIDACIÓN Y CUALIFICACIÓN DE SALAS DE AMBIENTE CONTROLADO EN HOSPITALES. Dra. GLORIA CRUCETA, Doctora en Medicina, Directora de SEGLA, Presidenta del Comité 171 de AENOR. Máster en Prevención de Riesgos Laborales. Experto técnico de ENAC (Entidad Nacional de Acreditación) para Calidad Ambiental en Interiores, Técnico Superior en Calidad Ambiental Interior, fundadora y ex presidenta de la Federación de Empresas especialistas en Calidad Ambiental Interior (FEDECAI). Contenido temático: El comité CTN 171 de Calidad de ambientes interiores de AENOR, ha elaborado la Norma “Validación y Cualificación de salas de ambiente

controlado en hospitales” donde se clasifican zonas y definen parámetros, métodos de ensayo, tipos de validación, periodicidad y criterios. 10.45 a 11.15 h. Coffe-break . Conferencia

11.15-12.00 h. INOVACIÓN EN PREVENCIÓN DE LEGIONELLA EN HOSPITALES: FOTOCATÁLISIS OXIDATIVA FRENTE A OTRAS TECNOLOGÍAS. D. VICENTE PICÓ. Licenciado en C. Químicas, especialidad Bioquímica. Máster en Tecnología de los Alimentos por el CSIC. Técnico Superior en Calidad Ambiental Interior. Socio fundador y Director General de AMBIENTCARE. Socio fundador y asesor técnico de Aplicaciones y Proyectados Levante. Contenido temático: La utilización del TiO2 en la generación de radicales -OH ha abierto

nuevas y potentes posibilidades en el tratamiento desinfectante de aguas de consumo humano. Opciones tales como la adición directa de productos químicos, o su generación in situ, la pasteurización o el conocido como cobre plata tienen ventajas e inconvenientes. Con la fotocatálisis oxidativa avanzada se abre una nueva y sostenible forma de desinfección del agua, totalmente efectiva para la prevención de Legionella.


Conferencia

12.00 a 12.45 h. DISEÑO Y CONSTRUCCIÓN DEL LABORATORIO DE BIOSEGURIDAD.

D. JAUME CERA, Ingeniero Técnico Industrial, Director del Departamento de Climatización de JG Ingenieros. JG Ingenieros es miembro fundador de ASINCE (Asociación Española de Consultores en Ingeniería) y de First Q Consulting Engineers y ha llevado a cabo numerosos proyectos y direcciones de Obra civil e instalaciones de varios Laboratorios de Bioseguridad, destacando el Laboratorio de Retrovirología Nivel 3 de la Fundación IRSICaixa, del Hospital Universitario Germans Trias i Pujol. Contenido temático: La formación frente a la preocupación global por las enfermedades infecciosas emergentes y re-

emergentes, y las infecciones producidas en laboratorio, tanto de agentes conocidos como previamente desconocidos es un factor imprescindible en entornos de Bioseguridad. Desde esta perspectiva JG INGENIEROS aporta su experiencia en el diseño y construcción de Laboratorios de Bioseguridad.

Conferencia

-12.45 a 13.30 h. CERTIFICACIÓN DEL LABORATORIO DE BIOSEGURIDAD NIVEL 3.

Dr. JAVIER GARAIZAR, Doctor en Medicina, Profesor titular de Microbiología, Departamento de Inmunología, Microbiología y Parasitología, Facultad de Farmacia, Vitoria-Gasteiz, Universidad del País Vasco / Euskal Herriko Unibertsitatea. Contenido temático: Posteriormente al diseño y construcción de un laboratorio tipo 3 y antes de su puesta en marcha, es necesaria su validación y certificación. Para ello se debe hacer un seguimiento del procedimiento documental para obtener, registrar e interpretar los datos necesarios para demostrar que un proceso, equipamiento o actividad cumplirá permanentemente con las especificaciones predeterminadas.

13.30 - 15.00 h. Almuerzo en la Sede del Curso (CSIC) Conferencia

15.00 - 15.45 h. DISEÑO Y CONSTRUCCIÓN: BLOQUE QUIRÚRGICO DE FLUJO LAMINAR. D. DAVID BARRACHINA, Ingeniero Superior en Organización Industrial E.T.S.E.I.T. (UPC). Ingeniero Técnico Industrial Química Industrial, Máster en Prevención de Riesgos Laborales. Director de Servicios Generales en Fundació Sanitaria Hospital de Mollet. Miembro del Consejo Técnico Asesor de Infraestructuras y Equipamientos de la UNIÓ CATALANA D’HOSPITALS. Miembro del IFHE Europe Working group sobre la Prevención de Riesgos de Infección en Hospitales. Contenido temático: El pasado 31 de julio se inauguró el Nuevo Hospital de Mollet, se realizará una breve explicación

normativa, la descripción técnica del Bloque quirúrgico, distribución arquitectónica y de las instalaciones existentes.


Conferencia

15.45 - 16.30 h. DISEÑO DE UNA UNIDAD DE GRANDES QUEMADOS.

DR. JOAN PERE BARRET, Doctor en Medicina y Cirugía por la Universidad de Groningen y especialista en Cirugía Plástica y Reparadora. Actualmente dirige la Unidad de Quemados y Cirugía Reparadora del Hospital Universitario Vall d’Hebron (Barcelona), después de trabajar como jefe clínico en el Broomfield Hospital (Reino Unido), como médico adjunto en el Hospital Universitario de Groningen y como especialista en Cirugía Plástica y Quemados en la Universidad de Texas. Contenido temático: La Unidad de Quemados del Hospital Vall d´Hebron es una Unidad de referencia y goza de gran prestigio tanto

en el ámbito estatal, como a nivel europeo. Sus nuevas instalaciones ocupan una superficie de 1.403 m2 e incluyen 6 habitaciones individuales para grandes quemados, 10 de curas progresivas, Área de Quirófanos, Área de atención urgente, sala de tratamientos y sala de curas.

Conferencia 16.30 - 17.15 h. AGENTES QUÍMICOS EN EL ÁMBITO SANITARIO. D. JORGE PASCUAL DEL RIO, Técnico del Servicio de Prevención de Riesgos Laborales Servicio Navarro de Salud – Osasunbidea. Coordinador de la “Guía de agentes químicos en el ámbito sanitario”, editada por la asociación ANMTAS y la Escuela Nacional de Medicina del Trabajo del Instituto de Salud Carlos III (Ministerio de Ciencia e Innovación). Contenido temático: A través de esta Guía se ofrece una visión profunda de los principales agentes químicos presentes en el ámbito sanitario, recopilando la información obtenida de diferentes fuentes de reconocido prestigio, así como las medidas preventivas que se muestran más eficaces en la actualidad para evitar los riesgos asociados a esta exposición.

Dirigido a: Especialmente dirigido a: Comités de control de infección hospitalaria, Servicios de

Prevención, Medicina Preventiva, Laboratorios, Arquitecturas e Ingenierías Hospitalarias, Jefes y

técnicos de mantenimiento, Supervisión de Quirófanos, Médicos y D.U.E, etc.

Inscripciones www.segla.net (Tel información 934 364 061)

CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE INTERIO R DEL HOSPITAL


CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS EN EL AIRE DEL HOSPITAL

Cristina Neves Pimenta de Franca

Bióloga, Máster en Bioquímica aplicada, Universidad de Madeira, Portugal.

RESUMEN

Los bioaerosoles bacterianos que se encuentran

- a menudo - en el aire interior, son

potencialmente aliados a un aumento de la

probabilidad de desarrollo y transmisión de

enfermedades infecciosas, cuyas

complicaciones pueden llevar, en casos más

extremos, al aumento de la morbilidad y la

mortalidad.

Para ello hemos utilizado las técnicas

bioquímicas para la cuantificación,

identificación y caracterización de los

bioaerosoles recogidos por impacto en medio

semi-sólido selectivo.

INTRODUCCIÓN

En la actualidad, están disponibles varias

publicaciones científicas sobre los efectos

prejudiciales de ciertos parámetros

ambientales, a saber, la temperatura,

humedad relativa, la radiación/brillo y la

contaminación química en la calidad del aire

interior (CAI) de los edificios y la salud (Tang,

2009).

Además de los contaminantes químicos, el aire

interior contiene (como el aire exterior), una

miscelánea compleja de microorganismos,

fragmentos de los microorganismos,

endotoxinas, micotoxinas y compuestos

orgánicos volátiles, potencialmente

perjudiciales para la salud pública, que exigen

la necesidad de desarrollo de estudios, en el

área y sensibilización de la sociedad,

relativamente a su impacto en el nivel de salud

y ecología (Aydogdu et al., 2009; Peccia y

Hernandez, 2006).

“Este trabajo tuvo como objetivo la

cuantificación de S. aureus en dos

hospitales públicos portugueses,

desde una perspectiva preventiva,

para evitar el desarrollo y la

transmisión de infecciones

nosocomiales por Staphylococcus”.



Los primeros estudios basados en CA se han

centrado en los contaminantes químicos

(Zorman y Jeršek, 2008). Pero, los

contaminantes biológicos representan en la

actualidad un importante objeto de estudio

siendo considerados herramientas importantes

en la definición de CAI (Chan et al., 2009,

Rintala et al., 2008; Saadoun et al., 2008).

En la actualidad, el estudio de la ecología

microbiana hospitalaria se centra

principalmente en la detección de

microorganismos en las superficies inanimadas,

a pesar de ser fuertemente recomendada la

vigilancia da calidad microbiológica del aire

interior a partir de la determinación y

cuantificación de bioaerosoles bacterianos

cultivables (Klánová y Lajčiková, 2006).

Este trabajo tiene como objetivo fortalecer el

conocimiento, la comprensión y el interés sobre

la monitorización de CAI en hospitales,

incluyendo la caracterización de agentes

nosocomiales (staphylcoocci) y el

estabelecimiento de la prevención y el control

de IN.

DESAROLLO

El ambiente hospitalario, sobretodo el dedicado

a la prestación de la atención médica a la

comunidad, constituye un ambiente particular

(Curtis, 2008; Sobotová et al., 2006).

La alta concentración de microorganismos es un

componente asociado a la contaminación

biológica del aire interior resultando,

posteriormente, en la complicación de la

situación clínica (Sudharsanam et al., 2008;

Saadoun et al., 2008; Fang et al., 2007;

Piteira, 2007; Obbard y Fang, 2003).

“Por supuesto, la indeseable CAI en

hospitales representa una realidad

alarmante que fue considerada por la

Organización Mundial de la Salud

(OMS) como el 8º factor de riesgo de

mayor releváncia en los edificios y

responsable de 2,7% de las

enfermedades en el Mundo (Quadros,

2008).



Por lo tanto, el ambiente hospitalario establece

una íntima relación con IN y puede

proporcionar focos de contacto y transmisión

de bioaerosoles bacterianos (Andrade et al.,

2000(b)) a través de la flora permanente o

transitoria del paciente, de la flora del entorno

institucional y de la flora de los demás

ocupantes (DGS, 2002).

Las IN constituyen un problema de salud

pública en todo el Mundo, principalmente en

los Países desarrollados donde están menos

estudiadas y por lo tanto, con menos énfasis

(Habibi et al., 2008; Metintas et al., 2004).

Se estima que 2% a 12% de los pacientes

hospitalizados en los Países desarrollados

manifiestan IN (Ding et al., 2009), valores que

pueden alcanzar los 30% en los Países en

desarrollo (Távora et al., 2008). En la Europa,

la tasa de IN se encuentra entre 5 y 10%

(Kalliokoski, 2003).

Sin embargo, varios estudios tienen en cuenta,

que aproximadamente 1/3 de las IN son sin

duda evitables en el curso de la prestación

médica (PNCI, 2007). Dados obtenidos en una

investigación de prevalencia desenvuelto por la

OMS indican que alrededor de 8,7% de los

pacientes hospitalizados adquieren IN y que a

cada momento, 1,4 millones de personas en el

Mundo sufren complicaciones infecciosas

adquiridas en el hospital (OMS, 2002).

Para Portugal, los datos presentados por la

Encuesta Nacional sobre la Prevalencia (2003)

indican una prevalencia de 8,4% pacientes con

IN, valor que se encuentra dentro del rango de

prevalencia (5 a 10%) en la mayoría de los

Países de Europa (DGS, 2003).

“Varios autores consideran que la

transmisión aérea (a partir de una

fuente ambiental o humana) es la

principal causa de la propagación de

las infecciones en el entorno clínico,

contribuyendo al 10 a 20% de las IN

endémicas (Gupta et al., 2010;

Escombe et al, 2009; Qudiesat et al.,

2009; Curtis, 2008; Morawska, 2008;

Tambekar et al., 2007; Esen et al.,

2004; Obbard y Fang, 2003)”.

“La OMS lista Clostridium sp.,

Staphylococcus aureus, las

Enterobacteriaceae (E. coli, Proteus

spp., Klebsiella spp., Enterobacter

spp., Serratia marcescens) y

Pseudomonas spp., como las

bacterias patógenas frecuentemente

implicadas en las IN”.



S. aureus es un microorganismo problemático

en los hospitales Portugeses, especialmente en

la forma de Staphylococcus aureus resistentes a

meticilina (MRSA) y Staphylococcus aureus

sensibles à meticilina (MSSA).

Los estafilococos (especialmente S. aureus, S.

epidermidis, S. haemolyticus y S.

saprophyticus) establecen una relación benigna

o simbiótica con el hombre, pero, hacia una

mayor susceptibilidad del huésped pueden

comportar-se como patógenos invasores

(Heikens et al., 2005). Por lo tanto, los

estafilococos son considerados patógenos

oportunistas responsables de un amplio

espectro de enfermedades sistémicas,

incluyendo las infecciones de la piel y tejidos

blandos, así como infecciones del sistema

urinario (Murray et al., 2009).

El plan de muestreo consistió en la

identificación de peligros, inventario de

objetivos y la realización de encuesta

higiénica. Con respecto a la adopción de

estrategia de muestreo, toda la metodología

utilizada para evaluar a contaminación del aire

ha cumplido con las directrices definidas en la

nota técnica NT-SCE-02.

Hay que destacar el hecho de que no se han

realizado ajustes para la verificación de los

requisitos de la CAI previstos en el RSECE en el

contexto específico de los hospitales ya que el

reglamento actual no se pronuncia con

respecto a los ambientes especiales.

“La presente investigación y

cuantificación de Staphylococcus en

dos hospitales portugueses, implicó

la elaboración de un plan de muestreo

de bioaerosoles en servicios y áreas

hospitalarias afectados por IN y que

se incluyen en el sistema de

vigilancia epidemiológica de PNCI

(Circular Normativa 27/DSQC/DSC de

03/01/08)”

“Nota Técnica NT-SCE-02:

Metodología para las Auditorías

Periódicas de IAQ em Edificios de

Servicios existentes no ámbito do

RSECE”.



En cada una de las tres fases de muestreo

realizadas, también se llevó a cabo una toma

de muestras control exterior y la determinación

de los niveles de temperatura (ºC), humedad

relativa (%) y dióxido de carbono (ppm) (Q-

TRACKTM Plus IAQ Monitor, Modelo 8554).

El tiempo de muestreo se ha optimizado en

función de la norma europea EN 13098:2000. El

tiempo de muestreo (t) se estimo por la

igualdad t (min) = V/Q, donde Q es el flujo del

equipo de muestreo (20L/min) y V es el

volumen deseado en litros/min, lo cual de

acuerdo con la legislación portuguesa debe

estar entre los 250 y 300 litros de aire (NT-SCE-

02). Por lo tanto, el tiempo de muestreo se fijó

en 8 min, lo que corresponde a la toma de

muestras de 160 L del aire/min o 0,16 m3 de

aire.

Esta metodología es adecuada para entornos

con concentraciones relativamente bajas de

microorganismos. Es interesante observar que

el límite superior de referencia aplicable en

Portugal es 500UFC/m3 de aire; actualmente no

están definidos otros valores de referencia para

ambientes hospitalarios, incluso, no hay límites

para un determinado microorganismo.

Ya que los hospitales no están equipados con

sistemas de aire acondicionado, el equipo

Burkard fue puesto a la altura de las vías

respiratorias, cerca de la zona de alojamiento

de los pacientes. El equipo Burkard realiza un

muestreo activa en placas de medio semi-solido

de 90 mm. Para la investigación de

estafilococos el medio de cultivo utilizado fue o

Agar Manitol Sal-Vermelho (TSA).



La caracterización microbiana requerida por el

analista es crucial, no sólo en la elección del

método de muestreo, sino también en la

selección de la metodología para cuantificación

y determinación microbiana, que pueden variar

desde las técnicas de cultura tradicionales

hasta las análisis moleculares (Lignell, 2008).

Los métodos de cultivo para la identificación

de microorganismos utilizados en trabajo,

permite la detección de alrededor de 0,001% a

15% de bacterias ambientales cultivables

(Dugan y Leytem, 2009; Lignell, 2008). Las

ventajas del cultivo de microorganismos

contemplan la posibilidad de identificar

especies o géneros bacterianos y el aislamiento

de cepas para posterior caracterización

fenotípica y genotípica.

El método experimental utilizado para la

identificación bioquímica se presenta

brevemente en el diagrama de flujo 1.

Por razones de confidencialidad, se hará

referencia a los valores obtenidos para S.

aureus e SCoN; los datos obtenidos deben ser

considerados únicamente a título indicativo, sin

la representación correspondiente del universo

de los microorganismos en el ambiente

hospitalario.

Hasta la fecha no se ha fijado los límites de

concentración máxima aceptable para las

especies bacterianas en el aire interior para

garantizar una satisfactoria CAI y, en

consecuencia, la salud de sus ocupantes.

“El método de muestro activo permite

la recolección del volumen de aire

pre-determinado y la medición de la

contaminación microbiana en UFC por

metro cúbico de aire (UFC/m3),

parámetro considerado por

Pasquarella et al. (2000) como el más

importante y eficaz en la

cuantificación de microorganismos

viables en el aire”.

“Las pruebas bioquímicas utilizadas

para la identificación de nuestros

microorganismos se basan en la

evaluación de características

genéticamente codificados (Yuan et

al., 2007; Xu et al., 2004). Estos

incluyen la morfología, las

características de crecimiento, la

capacidad de metabolizar substratos

y otros (Zadoks et al., 2009)”.



Por lo tanto, el análisis sólo indica los dados de concentración máximos, mínimos y promedios y está

libre de los valores de referencia. Los Staphylococcus se detectaron en todos los sitios de muestreo,

con la concentración máxima registrada en el Servicio de emergencia (1445 UFC/m3 de aire). La

concentración promedio de Staphylococcus en el hospital analizado fué de 356 UFC/m3 de aire. La

concentración promedio de S. aureus fue superior a SCoN, com 197 UFC/m3 de aire contra 160 UFC/m3

de aire. El Servicio de urgencia es golpeado con más microorganismos en comparación con otras áreas

hospitalarias analizadas (770 UFC/m3 de S. aureus y 675 UFC/m3 de SCoN).

Pruebas Confirmatorias

Identificación Bacteriana Catalasa Coagulasa

Tipo respiratorio

Aerobiosis Anaerobiosis

+ + + + S. aureus

+ + + - Micrococcus luteus

+ - + + Staphylococcus coagulasa negativos

Diagrama de flujo 1. Protocolo para la detección de Staphylococcus

Colonias rosa con o sin

punto blanco

Colonias de color

amarillo, con/sin halo

Muestreo en

Agar Manitol-Sal Rojo Fenol

Tincción de Gram

Tipo respiratorio

M.E.V.A.G. (37ºC±1ºC

/ 24±4h) Test Catalasa

Teste Coagulasa

Caldo Cerebro-Corazon

0,5 ml plasma de Conejo +

0,5 ml de Caldo

(37ºC±1ºC / 4 a 24h)

Pruebas confirmatorias

Interpretación

DIAGRAMA DE FLUJO

INVESTIGACIÓN Y CUANTIFICACIÓN DE STAPHYLOCOCCUS SPP.

Repicaje para Agar Triptona Soja (TSA)



CONCLUSIONES

La presencia de estos microorganismos - uno de

los más temidos por los médicos y reconocidos

como agentes nosocomiales en Portugal - en el

aire interior se debe en parte, a la naturaleza

de las actividades realizadas en el entorno

hospitalario y de las patologías presentadas por

sus ocupantes, situaciones que hacen que sea

inevitable, salvo excesiva lucha y control, la

contaminación microbiana del medio ambiente

e infección de los individuos más susceptibles

(Pimenta de França, 2010).

Esto refuerza la observancia estricta de las

medidas de control y prevención propuesto por

la CCI, con el agravante del empeoramiento de

la contaminación microbiológica del ambiente

hospitalario y frecuencias cada vez mayores de

IN (Pimenta de França, 2010).

“Cerca de 1/3 de las IN, según registros bibliográficos, podrían

prevenirse a través de los programas de vigilancia y del control de

infecciones, con grandes beneficios para el nivel de salud pública

y la sostenibilidad de los sistemas de salud (Pimenta de França,

2010)”.



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La Asociación Chilena de Seguridad (ACHS) anuncia la realización del Noveno Congreso Internacional de Prevención de Riesgos Laborales (ORP'2011), a realizarse los días 9, 10 y 11 de Noviembre de 2011 en Santiago de Chile. http://www.orpconference.org

Chile nuevamente acoge este importante evento co-organizado con la Escuela Técnica Superior de Ingeniería Industrial de Barcelona (ETSEIB) de la Universidad Politécnica de Cataluña (España), la Universidad de Tecnología de Tampere (Finlandia), la Universidad de Tecnología de Delft (Holanda), la Università degli Studi di Milano (Italia) y el Centro de Ingeniería Industrial y Sistemas de Gestión de la Universidad de Florida Central, ofreciendo a empresarios, ejecutivos, profesionales, investigadores y académicos, un único punto de encuentro para el intercambio de experiencias con los más

connotados especialistas internacionales en seguridad y salud ocupacional.

Este evento se vincula con los Congresos Internacionales de Prevención de Riesgos Laborales ORP, que se han desarrollado en diferentes ciudades españolas y cuya octava versión en Mayo de 2010 tuvo por sede a Valencia, convocando a 1.605 personas provenientes de 40 países.

En nombre de los organizadores, y atendiendo a la alta importancia de los temas de este Noveno Congreso Internacional para crear ambientes laborales sanos y seguros, invitamos a ustedes a contribuir técnicamente concursando trabajos, como también a participar activamente en tan trascendental evento.

Atentamente, JORGE MATETIC RIESTRA

Presidente ASOCIACIÓN CHILENA DE SEGURIDAD

CALIDAD DE AIRE EN CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN


CALIDAD DEL AIRE EN LAS CENTRALES DE ESTERILIZACIÓN

Enrique Isidoro Velasco.

Facultativo especialista de Área, Microbiología

Área de Gestión Clínica Laboratorio Clínico y

Medicina Preventiva Área Sanitaria Serranía.

Servicios Clínicos y Médicos Integrales, SA.

SERMED

Juan José Criado Álvarez.

Facultativo especialista de Área, Microbiología

Área de Gestión Clínica Laboratorio Clínico y

Servicios Clínicos y Médicos Integrales, SA.

SERMED

RESUMEN:

Partiendo de las pautas higiénicas establecidas

en el manual de procedimientos de la empresa

SERMED S.A., en cumplimiento de la normativa

actual. Se establece una serie de

procedimientos correctivos, basados en los

resultados obtenidos en los análisis

ambientales, realizados en las diferentes

centrales de esterilización que gestiona dicha

empresa. Y se establecen objetivos para el

desarrollo y mantenimiento del sistema de

calidad de la misma.

INTRODUCCIÓN:

Evaluar de forma periódica la calidad del aire

ambiente, en cuanto a sus características

microbiológicas de las centrales de

esterilización, así como las condiciones de

calidad higiénica del aire de inmisión de las

zonas de trabajo.

Con ello se pretende tener controladas las

condiciones de higiene ambiental de las

diferentes centrales de esterilización que

gestiona la empresa SERMED S.A.

Se realiza como parte del sistema de calidad.

Busca, no sólo llevar el control de estos

parámetros, sino en función de ellos,

establecer metodologías y acciones, que nos

ayuden a mejorar de manera continua como

objetivo final.

DESARROLLO:

“Estudio descriptivo transversal de

evaluación de la calidad del aire

medioambiental a lo largo del año

2010, de una muestra de las centrales

de esterilización gestionadas por la

empresa SERMED S.A.”:



- HIS: Hospital Infanta Sofía (San

Sebastián de los Reyes, Madrid)

- HUPHM: Hospital Universitario Puerta

de Hierro-Majadahonda (Majadahonda,

Madrid)

- HHC: Hospital del Henares-Coslada

(Coslada, Madrid)

- HIC: Hospital Infanta Cristina (Parla,

Madrid)

- HCCR: Hospital Central de la Cruz Roja

(Madrid)

- HCI: Hospital Comarcal de Inca (Inca,

Baleares)

- HURS: Hospital Universitario Reina

Sofía (Murcia)

- HOA: Hospital del Oriente de Asturias

(Arriendas, Asturias)

Las mediciones fueron realizadas por el Grupo

Bio-Accali. Los equipos de medida y materiales

utilizados fueron:

• SAS “Microflow” de bajo caudal con

capacidad de selección tanto de

volúmenes de aire como de velocidades

de paso y captación de aire

• Placas Rodac con Agar Envirocount TSA-

Neutralizing

• Placas Rodac con Agar Rosa bengala

Se ha muestreado en las 3 zonas principales de

la central (lavado, empaquetado y almacén de

productos estériles) los parámetros

microbiológicos relativos a la flora aerobia

mesófila total y flora total fúngica (mohos y

levaduras), con la climatización en

funcionamiento, de forma que sirviera para un

diagnóstico de la situación de calidad de aire

interior derivada de la utilización, tipo de

actividad y condiciones actuales del sistema de

climatización.

“Se consideran las salas como de

“Ambiente limpio” y el almacén

estéril como “Ambiente muy limpio”

(UNE EN ISO 100.713)”:



El muestreo se ha realizado en la impulsión

(conductos), superficie de rejillas de impulsión

y el centro de la sala. La totalidad de las

muestras se tomaron de forma rutinaria

protocolizada.

Los datos obtenidos (vease tabla 1) se

comparan con el estándar microbiológico

propuesto en la Guía del INSALUD de 1996 y la

Guía de la SEMPSPH-INSALUD de 1999. Se

considera la calidad del aire como muy limpio

(<10ufc/m3), limpio (10-100 ufc/m3) y

aceptable (>200 ufc/m3).

Tras los primeros resultados se decide

establecer las siguientes acciones correctivas

para la central de esterilización en general y

las diferentes zonas analizadas:

CENTRAL DE ESTERILIZACIÓN EN GENERAL:

- Controlar que la limpieza de suelos y

superficies se haga siempre con mopas y

gamuzas adecuadas, húmedas y bien

escurridas, para evitar que se levanten

partículas y agregados.

- Limpiar bien las rejillas de aire donde

suelen quedar restos del material textil

usado para la confección de los equipos

quirúrgicos.

ZONA DE LAVADO:

- Minimizar el tiempo de apertura de

puertas a la recepción del instrumental

o entrada y salida del personal.

ZONA DE EMPAQUETADO:

- Mantener las puertas de la esclusa o

zona de paso sucio-limpio cerradas y

usarlas correctamente.

- Evitar introducir carros para el

transporte de instrumental sucio en

dicha zona.

- Minimizar el movimiento de textil

utilizado para la confección de equipos

quirúrgicos: sábanas, paños, batas, etc.

Que proboca la suspensión de agregados

y párticulas en el aire.

ALMACÉN DE PRODUCTOS ESTÉRILES:

- Aumentar la periodicidad de la limpieza

de estanterías, incorporando en la

medida de lo posible estantes de rejilla,

para evitar acumulación de polvo y

partículas que son suspendidas al

colocar y retirar el instrumental.

Tabla 1



Tabla 1

Continuación Tabla 1

HIS HUPHM HHC HIC HCCR

Lavado Aerobios 0/10/30/

20/0/30/20/50

140/40/

0/400

60/330/10/10 290/120/70/220 60/20/190

/40

Mohos/Levad. 0/0/20/0/0/10/0

/30

280/0/10/1

10

0/10/0/0 110/20/10/40 10/10/30/

60

Empaquet. Aerobios 0/20/60/20/0/50

/10/40

0/80/30/10 130/80/0/0 80/0/10/230 20/60/90/

80

Mohos/Levad. 0/0/0/0/0/0/20/

10

10/0/20/0 30/10/0/0 40/3/0/20 10/0/30/0

Almacén Aerobios 0/0/10/0/0/0/30

/0

30/10/50/0 70/30/10/0 210/70/3/10 0/0/10/0

Mohos/Levad. 0/0/0/0/0/0 10/0/0/0 0/0/0/0 90/0/0/30 0/0/20/0

HCI HURS HOA Media Mediana 10-100

ufc

>100

ufc

total Nº

Lavado 320/170/

20/0

100/30/150/

30

10/40/60

/10

86,1 40 17

47,2%

10

27,8%

27

75,0%

36

0/0/0/0 10/40/50/50 0/50/60/

0

28,3 10 11

0,6%

3

8,3%

14

38,9%

36

Empaquet. 0/150/50

/0

150/30/180/

10

10/10/0/

20

47,5 20 16

4,4%

5

13,9%

21

58,3%

36

180/0/0/

0

120/10/20/7

0

0/40/40/

2

19,0 2,5 10

7,8%

2

5,6%

12

33,3%

36

Almacén 60/80/30

/0

220/130/80/

30

0/40/10/

10

34,3 10 12

3,3%

3

8,3%

15

41,7%

36

0/0/0/0 280/0/0/30 0/80/0/1 15,6 0 6

16,7%

1

2,8%

7

19,4%

36



CONCLUSIONES:

Se tomaron 216 muestras de aire ambiente, 108

de bacterias y 108 de hongos, en 96 (44,4%)

hubo crecimientos. De esos crecimiento, vemos

que dos tercios corresponden a crecimientos de

aerobios mesófilos (n=63) frente a los hongos

en (n=30) (Tabla 1)

La zona más contaminada, como es lógico es la

zona de lavado.

La calidad microbiológica del aire de la central

de esterilización fue adecuada en la mayoría de

las tomas estudiadas. No se detectaron hongos

especialmente peligrosos en el aire de la

central. Los controles rutinarios

microbiológicos permiten estudiar la calidad

del aire y garantizar un ambiente adecuado

para el personal y para el material.

De los resultados obtenidos, dentro siempre de

los márgenes aceptables establecidos, en los

que se observan variaciones sin una tendencia

clara. Y las acciones correctivas llevadas a

cabo, que requieren de la colaboración del

personal de esterilización, de la limpieza y el

resto de personal sanitario del hospital. A lo

que se añaden las diferentes condiciones de la

central en función de la actividad y carga de

trabajo.

BIBLIOGRAFÍA:

- Criado-Álvarez JJ. Capítulo 11: Garantía

de la efectividad de un proceso de

esterilización. Sistemas de registro de

los controles de rutina. En:

Esterilización en centros sanitarios.

Edita: FISCAM. Madrid: Grupo Aula

Médica, 2006

- Muro Ceballos I, Criado-Álvarez JJ.

Capítulo 10: Gestión de la central de

esterilización. En: Ayuso Murillo D,

Grande Sellera R. La gestión de

enfermería y los servicios generales en

las organizaciones sanitarias. Madrid:

Editorial Díaz de Santos, 2006.

“Se interpreta que las condiciones

ambientales de la central tenderán

siempre a variar y se establece como

objetivo, la continuación en la

práctica de las medidas correctivas

llevadas a cabo para asegurar unos

mínimos adecuados para cada zona

de las centrales de esterilización

objeto del estudio.

”:



- Criado-Álvarez JJ, Muro I. Errores en la

Central de Esterilización: Seguridad de

los dispositivos sanitarios. Medicina

Preventiva 2007; 13: 9-13

- Criado-Álvarez JJ, Muro I. Normativa y

calidad en la central de esterilización.

Rev Calidad Asistencial; 2006; 21: 110-

6.

- Criado-Álvarez JJ, Muro I. Normativas y

legislación aplicables en las Centrales

de Esterilización. Todo Hospital; 2005;

217: 337-344

- Criado-Álvarez JJ, Muro I. Logística y

trazabilidad en la Central de

Esterilización. Todo Hospital; 2004; 210:

545-552.

- Criado-Álvarez JJ, Muro Ceballos I.

Validación y puesta en funcionamiento

de una central de esterilización

externalizada. Medicina Preventiva

2001, 7: 24-28

- Criado-Álvarez JJ. Diseño y

equipamiento actual de las centrales de

esterilización. Medicina Preventiva

2009; 15: 5-12

- Guía práctica para el diseño y

mantenimiento de la climatización en

quirófanos. Edita: INSALUD, Secretaría

General. Madrid, 1995

- García J, Hernández S. Bioseguridad

ambiental en instituciones sanitarias.

Medicina Preventiva; 2001; 7: 23-34

- CLIVEGESA. Directriz para la

climatización y ventilación de bloques

quirúrgicos. SACyL, 2007

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BIOSEGURIDAD DE AIRE EN QUIRÓFANOS


BIOSEGURIDAD DE AIRE EN

QUIRÓFANOS

Mª Angeles Torres Cañadillas

Enfermera de Medicina Preventiva del Hospital

General de Ciudad Real.

RESUMEN :

Con el objetivo principal de proteger la

bioseguridad ambiental del aire de nuestro

Hospital, se lleva a cabo por parte de Medicina

Preventiva, una estricta vigilancia

fundamentalmente en quirófanos, habitaciones

de flujo variable, y campanas de preparación

de citostáticos y nutrición parenteral. Por eso a

continuación se expone la manera de llevarlo a

cabo.

INTRODUCCIÓN:

La literatura médica sobre las epidemias de

infección nosocomial por Aspergillus, ponen de

manifiesto la importancia de mantener el

medio ambiente hospitalario tan libre de

esporas de hongos como sea posible,

especialmente en aquellas áreas donde se

atiende a pacientes con un alto riesgo de

contraer ésa infección.

Definimos como nivel adecuado de seguridad

ambiental como aquella situación con niveles

aceptables de contaminación de esporas

fúngicas, que hace improbable que enfermos

susceptibles adquieran un proceso infeccioso

DESARROLLO DEL PROCESO:

1- Control microbiológico.

2- Verificación de parámetros de

climatización (temperatura, humedad

relativa, verificación de la renovación

del aire, así como estado de filtros

absolutos).



MATERIAL NECESARIO PARA LA OBTENCIÓN DE

MUESTRAS:

Captador MAS 100 de Merck.

Soporte del captador.

Placas de Petri con medio de Saboureaud-

gentamicina.

Cinta selladora.

Guantes, mascarilla quirúrgica, calzas, bata

y gorro.

Rotulador, volante para laboratorio.

Registro en Medicina Preventiva.

PASOS DEL PROCESO:

La enfermera se traslada al bloque

quirúrgico con todo el material. En el

antequirófano se colocará bata, gorro,

calzas y mascarilla. Antes de colocarse los

guantes se lavará las manos

A continuación abre el filtro del captador

para depositar con cuidado la placa de

Petri, destapada, colocando la tapa boca

abajo sobre una mesa auxiliar. Después

vuelve a tapar con el filtro y ya puede

programar el captador para que comience a

funcionar.

Finalizado el proceso, vuelve a tapar la

placa de Petri con su tapa y la sella para

evitar contaminaciones durante el traslado

al laboratorio



De cada quirófano se toman dos muestras, una de la rejilla de impulsión que se elija, y otra en el

centro del quirófano.

Secuencialmente:



CONCLUSIONES:

BIBLIOGRAFÍA:

.CDC. Guidelines for environmental control in

health-care facilities.

.Cruceta Arbolés, G. Verificación de la

bioseguridad en áreas

quirúrgicas.www.segla.net.

.Orden 29-6-07 de la Consejería de Sanidad de

Castilla la Mancha sobre autorización

administrativa de Centros y Servicios de

Cirugía.

.Pelaez Ros Beatriz et al. Prevención y control

de la infecciones de origen ambiental. Salud.

Madrid.

“La vigilancia de la bioseguridad

ambiental del aire de quirófanos y

salas especiales, se realizará de

manera rutinaria cada mes en el caso

de quirófanos de alto riesgo, y cada

tres meses en los de bajo riesgo . Si

ocurre alguna circunstancia

excepcional, donde fuera necesaria

una comprobación adicional, por

supuesto se hará a criterio de

Medicina Preventiva, cuando sea

necesario.

PROPUESTA DE ACTUACIONES EN CASO DE PÉRDIDA DE BIOSEGURIDADN EN UN CENTRO SANITARIO


PROPUESTA DE

ACTUACIONES EN CASO DE

PÉRDIDA DE LA

BIOSEGURIDAD EN UN

CENTRO SANITARIO

Fco Javier de la Vega Olías

Médico especialista en Medicina Preventiva y

Salud Pública, Hospital Mancha Centro de

Alcázar de San Juan.

0.- RESUMEN:

Los dos principales problemas de las alertas

generadas por bioseguridad se encuentran, en

primer lugar, en la multidisciplinariedad de su

resolución, la cual implica una necesidad de

coordinación que no siempre se produce. El

segundo problema está en que se trata de una

ruptura de la dinámica de trabajo de la Unidad,

con el desajuste que esto implica y conduce a

la pérdida de tiempo de actividad, problemas

de ubicación de pacientes, desabastecimiento

de preparaciones estériles, etc.

La propuesta presentada convierte al Servicio

de Medicina Preventiva en el eje integrador de

la actividad, de manera que coordina, junto

con la Supervisión de la Unidad implicada toda

la actividad necesaria, evitando así los tiempos

muertos y las actividades ineficientes.

Asimismo, Medicina Preventiva se

responsabiliza de mantener un flujo de

información adecuado tanto hacia la Dirección

como a las Unidades.

1.- INTRODUCCIÓN:

“El presente trabajo es una propuesta

de protocolo basado en los

conocimientos adquiridos en el curso

de Controles Microbiológicos en

Hospitales: Quirófanos y Áreas

críticas, aplicados de manera

práctica a una situación de pérdida

de la bioseguridad”.

“El objetivo principal de este trabajo

es, por tanto, la sistematización de

las actividades en caso de alerta por

pérdida de Bioseguridad para

aumentar la eficiencia de los

procesos de resolución de la misma”.



Las Áreas Ambiente Controlado de un Centro

Sanitario son aquellas que se caracterizan por

disponer de instalaciones para el control de los

parámetros ambientales mediante sistemas de

mantenimiento y estabilización de la

temperatura y humedad relativa, la ventilación

y el filtrado del aire y el mantenimiento de un

diferencial de flujos y presiones con respecto a

las áreas adyacentes.

En concreto en esta propuesta de Protocolo se

someterán a Vigilancia y Control de

Bioseguridad las siguientes áreas:

• Quirófanos. Ver clasificación según ISO.

• Habitaciones de Flujo Variable. Se

considerarán según las características

del paciente que alberguen y su

patología concreta.

• Campanas,y/o cabinas de Preparaciones

Estériles, Nutrición Parenteral o

Citostáticos. Se considerarán zona de

Ambiente Muy Limpio.

• Almacenes de productos estériles de la

central de Esterilización. Se

considerarán zona de Ambiente Limpio.

• Salas de UCIy UCI Pediatrica, en función

de la presencia de pacientes de riesgo:

Inmunodeprimidos e inmunosuprimidos,

grandes quemados, trasplantes,

prematuros. Se considerarán zonas de

Ambiente Aceptable.

“La Bioseguridad en un Centro

Sanitario puede definirse como la

aplicación de conocimientos,

técnicas y equipamientos para

prevenir la exposición del personal y

pacientes a agentes potencialmente

infecciosos o considerados de riesgo

biológico en las Áreas de Ambiente

Controlado.



Se entiende por Pérdida de la Bioseguridad Ambiental de un Área de Ambiente Controlado la aparición

de:

TIPO DE AMBIENTE (ISO)

AEROBIOS MESÓFILOS

TOTALES

HONGOS

ISO 5-6 - Ambiente

muy limpio

≥ 10ufc/m3

≥ 0 ufc/m3

ISO 7 - Ambiente

limpio

> 10-100 ufc/m3

≥ 0 ufc/m3

ISO 7-8 - Ambiente

Aceptable

> 100-200ufc/m3

≥ 0 ufc/m3

• ISO 5-6 Ambiente muy limpio. Quirófanos de Muy Alto Riesgo: Transplantes, Cirugía cardiaca,

Cirugía ortopédica, con prótesis.

• ISO 7 - Ambiente limpio. Quirófanos de Alto Riesgo: Cirugía Convencional y de Urgencia (resto

de operaciones quirúrgicas).

• ISO 7-8 - Ambiente aceptable. Quirófanos de Cirugía Ambulatoria y Salas de Partos.

(Hongos: se contabilizarán las siguientes especies Aspergillus, Rhizopus, Mucor y Scedosporium).

En el caso de que en las inspecciones apareciera una variación de algún parámetro ambiental, se

registrará el valor anómalo y la fecha en que tuvo y se considerará una anomalía, pero no pérdida de

bioseguridad ambiental.



2.- PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE DE

QUIRÓFANOS: ACTUACIONES

1.- El Facultativo de Medicina Preventiva

comunica la situación a la Dirección Médica, a

la vez que facilita un plan de actuación

preliminar.

2.-Se comunica al Supervisor /a de Quirófanos

la situación, con objeto de revisar

conjuntamente el parte de quirófano, y

proponer los cambios necesarios para que en

el/los quirófano(s) afecto(s) no se lleven a

cabo:

• Intervenciones con material implantable

o protésico.

• Intervenciones de cualquier tipo sobre

pacientes inmunodeprimidos, esto es:

• Neutropénicos:

o < 500/mm3 más de dos

semanas.

o < 100/mm3 independientemente

de la duración.

• Pacientes con corticoterapia : >1mg/Kg

durante tres semanas.

• Trasplantados celulares alogénicos.

• Grandes Quemados.

Asimismo, se le comunicará la necesidad de

que quede(n) libre(s) lo antes posible para

las actuaciones pertinentes. Se le informará

asimismo de la necesidad de coordinar a los

Servicios de Limpieza y/o Mantenimiento y

de mantener informada a Medicina

Preventiva sobre su actividad.

3.-Se informa de la situación a la Dirección

de Gestión para que ésta tome las medidas

pertinentes sobre los Servicios de Limpieza

y/o Mantenimiento:

a) Si la muestra positiva no ha sido tomada

en la impulsión del Sistema de Ventilación,

sino a nivel del área de trabajo/centro del

quirófano, se trata de un problema

contingente, no de funcionamiento, por lo

que se puede resolver realizando una

limpieza exhaustiva del quirófano (en

especial de las superficies horizontales),

comprobando el cierre de puertas y

guillotinas, mejorando la disciplina

intraquirófano y tomando muestras

nuevamente para comprobar su resolución.

b) Si la muestra positiva ha sido de la

rejilla de la impulsión, se ha de comprobar

el estado de la misma y de los filtros, por lo

que también deben intervenir los Servicios

de Mantenimiento y Limpieza, actuando en

el siguiente orden :



a) Servicio de Mantenimiento:

- Comprobación del estado de

los filtros mediante revisión de

registros del último cambio y

comprobación de la colmatación

según flujos y capacidad de

impulsión.

- Desmontaje de la rejilla.

b) Servicio de Limpieza:

- Limpieza de la rejilla por

inmersión en desinfectante y

cepillado. Inspección y limpieza

del hueco de la rejilla hasta

donde sea posible sin dañar los

filtros.

c) Servicio de Mantenimiento:

- Colocación de la rejilla.

4.-Se informa a la Dirección de los cambios

recomendados respecto a las intervenciones

quirúrgicas programadas así como del

cronograma de actuaciones.

5.- El Servicio de Medicina Preventiva

contacta con la gobernanta de limpieza y

con el encargado de Mantenimiento,

manteniendo los canales de comunicación

abiertos con cada uno mientras dure la

alerta.

6.-El/La Supervisor/a de quirófano coordina

las labores de Mantenimiento y Limpieza e

informa a Medicina Preventiva de su

progreso y sobre todo de su término.

7.- Se procede a tomar muestras de nuevo

por parte de la enfermera de Medicina

Preventiva y se entregan en el laboratorio

de Microbiología.

Hasta el punto nº 7 inclusive, el proceso

debería llevarse a cabo en un intervalo

aproximado de 2-3 horas.

8.-Procesamiento de las muestras, y lectura

de resultados por parte del Servicio de

Microbiología en dos pasos:

- Lectura provisional a las 48h

con resultados de mesófilos y

primera aproximación a flora

fúngica.

- Lectura definitiva a las 120h

con resultados de flora fúngica.

9.- Información de resultados al Facultativo

de Medicina Preventiva.



10.-Si el resultado del control microbiológico

es negativo, el Facultativo de Medicina

Preventiva informa a la Dirección Médica,

anota en un registro dicho episodio y

garantiza mediante firma del mismo que

existe bioseguridad.

11.-En caso de que no se subsane el

problema, el ciclo se repite. Si persiste más

allá de las actuaciones ya expuestas, el

Facultativo de Medicina Preventiva

coordinará un Grupo de Trabajo que integre

a los Servicios implicados, incluidos

Dirección, Mantenimiento y Limpieza para

buscar y corregir las deficiencias en los

procesos que pudieran conducir a la pérdida

de la Bioseguridad.

3.- PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE DE

LAS HABITACIONES DE FLUJO

VARIABLE/SALAS DE UCI: ACTUACIONES.

1.-El Médico de Medicina Preventiva

informará a la Dirección Médica y facilitará

un plan de actuación preliminar.

2.-Se informará asimismo a la Dirección de

Gestión de la situación.

3.-Se contactará con el Servicio de

Mantenimiento para comprobar los

parámetros ambientales de la habitación

(registro de dichas condiciones).

a) Si la muestra positiva no ha sido

tomada en la impulsión del Sistema de

Ventilación, sino a nivel de la cama del

paciente, se tratará de un problema

contingente, no de funcionamiento del

Sistema de Ventilación, por lo que se

puede resolver realizando una limpieza

exhaustiva de las superficies

horizontales), comprobando el cierre de

puertas y ventanas, así como el tráfico

mantenido en la habitación/sala en las

horas anteriores. Se tomarán muestras

nuevamente para comprobar su

resolución.

b) Si la muestra positiva ha sido de la

rejilla de la impulsión, se ha de

comprobar el estado de la misma y de

los filtros, por lo que también deben

intervenir los Servicios de

Mantenimiento y Limpieza, actuando en

el siguiente orden :



a. Servicio de Mantenimiento:

- Comprobación del estado de

los filtros mediante revisión de

registros del último cambio y

comprobación de la colmatación

según la capacidad de impulsión.

- Desmontaje de la rejilla.

b. Servicio de Limpieza:

- Limpieza de la rejilla por

inmersión en desinfectante y

cepillado. Inspección y limpieza

del hueco de la rejilla hasta

donde sea posible sin dañar los

filtros.

c. Servicio de Mantenimiento:

- Colocación de la rejilla.

4.-Se contactará con el Servicio de

Limpieza, el cual deberá llevar a cabo una

limpieza exhaustiva de la habitación, en

especial de las superficies horizontales.

5.-Tras la misma, se procede a una nueva

toma de muestras, según el procedimiento

ordinario.

6.-Si tras conocer los resultados de las

nuevas muestras el resultado es de nuevo

positivo, existe un problema recurrente y se

debe buscar su origen en el seno de un grupo

de trabajo en colaboración con el Servicio

de Mantenimiento y de la Supervisión de la

Planta, investigando posibles focos de

colonización de las infraestructuras,

material, no conformidades en la dinámica

de trabajo del personal, etc.

7.-Durante la investigación, si la habitación

está ocupada por un paciente necesitado de

aislamiento inverso, se valorará junto al

clínico responsable de su tratamiento la

posibilidad de reubicación en otra

habitación de estas características.

4.- PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE EN

LAS CAMPANAS,Y/O CABINAS DE

PREPARACIONES ESTÉRILES, NUTRICIÓN

PARENTERAL O CITOSTÁTICOS: ACTUACIONES.

a) Ante pérdida de bioseguridad de las

campanas por fallo en la validación del

flujo:

1.- El personal responsable de la Unidad de

Mezclas Intravenosas-Preparaciones

Estériles interrumpirá la actividad

mientras se toman medidas correctoras, y

pondrá en conocimiento de la Unidad de

Electromedicina, Medicina Preventiva y

Prevención de Riesgos Laborales la

situación.

2.-Medicina Preventiva revisará junto al

personal responsable de la Unidad los

Registros de mantenimiento de las cabinas.



3.- Medicina Preventiva mantendrá

contacto con los Servicios de Farmacia y

Electromedicina hasta la resolución del

incidente.

b) Ante pérdida de bioseguridad ambiental

del aire de la cabina:

1.- Se pondrá en conocimiento del personal

responsable de la Unidad de Mezclas

Intravenosas-Preparaciones Estériles y se

establecerá de manera conjunta un plan de

actuaciones en función de la actividad para

la programación de medidas correctoras.

2.- Se avisará al Servicio de Limpieza para

realizar una limpieza concurrente a la

notificación de las superficies de la cabina

a fondo, utilizando la solución

desinfectante habitual para superficies.

3.- Se revisará junto al personal

responsable de la Unidad el Protocolo de

Limpieza del área de preparaciones de

mezclas intravenosas estériles y su grado de

cumplimiento.

4.- Se revisarán los registros de la

instalación de ventilación de la cabina para

comprobar su estado y mantenimiento.

Si es necesario, se llevará a cabo una

revisión del estado de los filtros.

5.- En caso de contaminación por hongos:

a) Se realizará una revisión

retrospectiva de los listados de

pacientes que en el curso del último

trimestre han recibido nutrición

parenteral/citostáticos en busca de

algún episodio infeccioso que pudiera

tener relación con las preparaciones

estériles, es decir, con compatibilidad

para el microorganismo aislado en las

muestras ambientales.

b) Se realizará un seguimiento

prospectivo de infecciones en el

episodio actual o en reingresos en los

pacientes atendidos de al menos 15

días.

6.- En el caso de crecimiento positivo en las

placas para bacterias:

a) Se realizará una revisión

retrospectiva revisando el listado de

pacientes que en el curso del último

trimestre han recibido nutrición

parenteral/citostáticos para

seguimiento de los mismos en busca de

algún episodio infeccioso que pudiera

tener relación con las preparaciones

estériles.



b) Se mantendrá un seguimiento

prospectivo de los pacientes atendidos

por la Unidad en esa jornada durante 72

horas de las infecciones con

compatibilidad para el microorganismo

aislado en las muestras ambientales.

Para ello es necesario incluir

antibiograma en dichas muestras al

objeto de poder comparar los perfiles

de los microorganismos aislados en el

medio y en el paciente.

7.- Se realizarán dos nuevas tomas de

muestras, una de manera inmediata a las

medidas correctoras y otra dentro de un

periodo de dos semanas respecto al

incidente.

8.- Se emitirá informe a la Dirección del

Servicio de Farmacia sobre el incidente,

medidas tomadas y resolución del mismo.

9.- Si los resultados positivos se repiten,

existe un problema recurrente y se debe

buscar su origen en el seno de un grupo de

trabajo tal como se ha comentado en los

anteriores entornos de Bioseguridad,

investigando posibles focos de colonización

de las infraestructuras, material, no

conformidades en la dinámica de trabajo

del personal, etc.

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5.- RESPONSABILIDADES Y REGISTROS:

PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE DE QUIRÓFANOS

ACTIVIDADES

RESPONSABLE

REGISTROS

GENERADOS

INFORMACIÓN A DIRECCIÓN DE LA SITUACIÓN Y PROPORCIÓN DE

PLAN DE ACTUACIÓN PRELIMINAR

FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA

INFORMACIÓN A SUPERVISOR/A DE QUIRÓFANO


REVISIÓN DE INTERVENCIONES QUIRÚRGICAS A SUSPENDER EN EL

QUIRÓFANO AFECTO.

FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA Y

SUPERVISOR/A DE QUIRÓFANO.

RECOMENDACIÓN A DIRECCIÓN MÉDICA DE LAS INTERVENCIONES

QUIRÚRGICAS A SUSPENDER.


TOMA DE DECISIONES

DIRECCIÓN

INFORMACIÓN A DIRECCIÓN DE GESTIÓN responsable de LOS

SERVICIOS DE LIMPIEZA Y MANTENIMIENTO DE LAS ACTUACIONES A

SEGUIR.

FACULTATIVO MEDICINA PREVENTIVA.

COORDINACIÓN DE LAS LABORES DE LOS SERVICIOS DE LIMPIEZA Y

MANTENIMIENTO.

SUPERVISOR/A DE QUIRÓFANO.

COMUNICACIÓN AL SERVICIO DE MEDICINA PREVENTIVA DEL

TÉRMINO DE LAS LABORES.

SUPERVISOR/A DE QUIRÓFANO

OBTENCIÓN DE MUESTRAS

ENFERMERA DE MEDICINA PREVENTIVA

REGISTRO DE

OBTENCIÓN DE

MUESTRAS DE AIRE

DE QUIRÓFANO

PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS, LECTURA DE LOS

RESULTADOS Y COMUNICACIÓN.

UNIDAD DE MICROBIOLOGÍA

INFORMACIÓN DE LOS RESULTADOS.

ENFERMERA DE MEDICINA PREVENTIVA.

VERIFICACIÓN DEL RESTABLECIMIENTO DE LA BIOSEGURIDAD

FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA.

INFORME CON

FECHA Y FIRMA

ENVÍO DEL INFORME A DIRECCIÓN Y A LOS DISTINTOS SERVICIOS

IMPLICADOS Y ARCHIVADO.

SECRETARIA DE MEDICINA PREVENTIVA



PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE DE LAS HABITACIONES DE FLUJO VARIABLE.

ACTIVIDADES RESPONSABLE REGISTROS GENERADOS

INFORMACIÓN A DIRECCIÓN DE LA

SITUACIÓN Y PROPORCIÓN DE PLAN DE

ACTUACIÓN PRELIMINAR

FACULTATIVO DE MEDICINA

PREVENTIVA

INFORMACIÓN A DIRECCIÓN DE GESTIÓN


PREVENTIVA

INFORMACIÓN AL SERVICIO DE

MANTENIMIENTO Y COMPROBACIÓN DE

PARÁMETROS REGISTRADOS.


PREVENTIVA

COMUNICACIÓN A SERVICIO DE

LIMPIEZA


PREVENTIVA

LIMPIEZA PROFUNDA DE SUPERFICIES

HORIZONTALES.

SERVICIO DE LIMPIEZA

OBTENCIÓN DE MUESTRAS.


REGISTRO DE OBTENCIÓN

DE MUESTRAS AIRE

HABITACIONES FLUJO

VARIABLE

PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS,

LECTURA Y COMUNICACIÓN.


INFORMACIÓN DE RESULTADOS


VERIFICACIÓN DEL RESTABLECIMIENTO

DE LA BIOSEGURIDAD.


PREVENTIVA

INFORME CON FECHA Y

FIRMA

ENVIÓ DEL INFORME A DIRECCIÓN Y A

LOS DISTINTOS SERVICIOS IMPLICADOS Y

FINALIZACIÓN DE LA ALERTA.

SECRETARIA DE MEDICINA PREVENTIVA.


PREVENTIVA.



PÉRDIDA DE BIOSEGURIDAD EN AIRE EN LAS CAMPANAS,Y/O CABINAS DE PREPARACIONES ESTÉRILES,

ACTIVIDADES RESPONSABLE REGISTRO GENERADO

COMUNICACIÓN A LA UNIDAD DE FARMACIA PARA LA

INTERRUPCIÓN DE LA ACTIVIDAD EN LAS CABINAS.


REVISIÓN DEL PROTOCOLO DE LIMPIEZA DE LAS CABINAS

FACULTATIVOS MEDICINA

PREVENTIVA/UNIDAD DE FARMACIA.

REVISIÓN DE LOS REGISTROS DE LOS FILTROS DE LA

INSTALACIÓN PARA COMPROBAR SU ESTADO Y

MANTENIMIENTO.

SERVICIO DE ELECTROMEDICINA/UNIDAD DE

FARMACIA.

AVISO AL SERVICIO DE LIMPIEZA PARA LA REALIZACIÓN DE

UNA LIMPIEZA A FONDO DE LAS SUPERFICIES DE LA

CABINA.


TOMA DE MUESTRAS AMBIENTAL


REGISTRO DE OBTENCIÓN DE

MUESTRAS AIRE EN

CAMPANAS CT/NP

REVISIÓN DEL LISTADO DE PACIENTES QUE EN EL ÚLTIMO

TRIMESTRE HAN RECIBIDO NUTRICIÓN PARENTERAL PARA

EL SEGUIMIENTO DE LOS MISMOS.


PROCESAMIENTO DE LAS MUESTRAS, LECTURA Y

COMUNICACIÓN.


INFORMACIÓN DE RESULTADOS


VERIFICACIÓN DEL RESTABLECIMIENTO DE LA

BIOSEGURIDAD.


INFORME CON FECHA Y

FIRMA

ENVIÓ DEL INFORME A DIRECCIÓN Y A LOS DISTINTOS

SERVICIOS IMPLICADOS Y FINALIZACIÓN DE LA ALERTA.

SECRETARIA DE MEDICINA PREVENTIVA.

FACULTATIVO DE MEDICINA PREVENTIVA.



En relación a las responsabilidades en las

campanas de citostáticos y nutrición

parenteral, los controles de validación de las

cabinas y de las Preparaciones Estériles serán

coordinados por los facultativos responsables

de dicho área de trabajo del Servicio de

Farmacia. Los relacionados con el entorno de

preparación y del Personal serán coordinados

por un facultativo de Medicina Preventiva.

Los registros de todos estos controles serán

revisados anualmente o cuando se estime

necesario por la Unidad de Medicina Preventiva

y/o la de Prevención de Riesgos Laborales. Por

parte de Medicina Preventiva, se remitirá a

Farmacia el resultado de los controles

realizados de manera rutinaria. Será en este

Servicio donde se conserven los registros para

su posterior revisión.



ESQUEMA DE FUNCIONES Y FLUJOS DE INFORMACIÓN EN UNA SITUACIÓN DE PÉRDIDA DE

BIOSEGURIDAD.



6.- CONCLUSIONES:

Poco podemos concluir de manera general en

algo tan relacionado con la dinámica y la

cultura interna de cada Centro Hospitalario

como es la gestión de una crisis. Sin embargo,

sí podemos inferir de nuestra experiencia que

una adecuada coordinación de los procesos

implicados en la resolución de una alerta

facilita dicha resolución, disminuye costes por

retrasos y a la vez mejora la confianza del

personal sanitario y los pacientes en la

eficiencia del control de la Bioseguridad

Ambiental.

7.- BIBLIOGRAFÍA:

1. Cruceta Arbolés Gloria, Dominguez rojas

Vicente, Vidal Lucena Julio et al. Curso de

especialización: Controles Microbiológicos

en Hospitales: Quirófanos y Áreas críticas.

Disponible en: URL: http:// www. segla.net

2. Cruceta Arbolés Gloria. Verificación de

la bioseguridad en áreas quirúrgicas.

Disponible en: URL: http:// www. segla.net

3. Cruceta Arbolés Gloria. Verificación y

validación de la calidad ambiental en áreas

quirúricas. Disponible en: URL: http://

www. segla. net.

4. CDC. Guidelines for environmental

control in health-care facilities.

Recommendations of CDC and the

Healthcare Infection Control Practices

Advisory Committee (HICPAC). U.S.

Department of Health and Human Services

Centers for Disease Control and Prevention

(CDC). Atlanta, 2003.

5. Borges Sá Márcio, Liebana Fiederling

Ana. Presentaciones clínicas de la

aspergilosis nosocomial. Rev Iberoam Micol;

17: S85-S89. 2000.

6. Generalitat de Catalunya. Departament

de Salut. Prevenció de la infecció

nosocomial relacionada amb el

desenvolupament d”obres als centres

sanitaris. Direcció General de Salut Pública.

Barcelona, setembre de 2007.

“Esta propuesta de protocolo

pretende ser un documento práctico

que sirva de guía, tras una lógica

adaptación, al Servicio de Medicina

Preventiva en el desempeño de sus

funciones ante una crisis de pérdida

de bioseguridad”.



7. Gost J et al. Vigilancia y control de las

infecciones originadas por gérmenes

oportunistas: aspergilosis. ANALES. Sis San

Navarra 2000, 23 (Supl. 2): 185-192.

8. Orden de 29-06-2007, de la Consejería

de Sanidad de Castilla la Mancha, sobre

Autorizaciones Administrativas de Centros y

Servicios de Cirugía. Diario Oficial de

Castilla La Mancha. Nº 146 (18518-18527)

9. Peláez Ros Beatriz, Andrade Lobato

Raquel, Rodríguez Caravaca Gil y González

Solana Ildefonso. Prevención y control de

las infecciones de origen ambiental. Salud

Madrid.

10. Consejería de Salud (Junta de

Andalucía). Protocolo de actuación en

brotes de infección nosocomial causados

por Aspegillus. En: Protocolos de Alerta

Epidemiológica. Protocolos de vigilancia

epidemiológica del SVEA. Sevilla; 2003.

p.XXIX.1-XXIX.9

11. Recomendaciones para la Verificación

de la Bioseguridad Ambiental (BSA) respecto

a Hongos Oportunistas. Grupo de trabajo de

la Sociedad Española de Medicina

Preventiva, Salud Pública e Higiene y el

INSALUD. Madrid, 20 de marzo del 2000.

12. Recomendaciones para la Vigilancia,

Prevención y Control de Infecciones en

Hospitales en Obras. Grupo de trabajo de

la Sociedad Española de Medicina

Preventiva, Salud Pública e Higiene y el

INSALUD. Madrid, 21 de marzo del 2000.

13. Robles García M et al. Prevención de la

infección nosocomial de origen fúngico:

verificación de la bioseguridad ambiental

en quirófanos. Rev Clin Esp 2005; 205: 601-

606.

14. Sánchez Payá, José. Prevención de la

aspergilosis nosocomial. Rev Iberoam Micol

2000; 17:S100-S102

15. Torrens García Llum. Muestras

Ambientales: ¿Cuándo, Cómo y Por qué?

Mesa Redonda I: “Condiciones ambientales

en el área quirúrgica.”II Jornada Nacional

IV Jornada Catalana ACICI. Infecció de

localització quirurgica: nuevos aspectos.

2007 Oct 26; Barcelona.


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