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Propagación in vitro de Echinocereus knippelianus Liebner (Cactaceae), especie amenazada

Neith Alejandra ISIDORO-‐CERVANTES1,*, Ana Laura LÓPEZ-‐ESCAMILLA2 y Laura Patricia OLGUÍN-‐SANTOS3 *[email protected]

1Laboratorio de Desarrollo en Plantas, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México 2Laboratorio de Morfofisiología Vegetal, Centro de Investigaciones Biológicas, Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, 42184 Pachuca, Hidalgo, México 3Unidad de Ambientes Controlados, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México

Echinocereus knippelianus (Cactaceae), especie endémica de México, se distribuye en los estados de Coahuila y Nuevo León y se encuentra catalogada como Amenazada en la NOM-‐059-‐SEMARNAT-‐2010. Las técnicas de cultivo de tejidos vegetales se han empleado exitosamente en varias especies de cactáceas, pero son escasos los trabajos para este género. El objetivo del presente trabajo fue establecer el protocolo para la propagación in vitro de Echinocereus knippelianus. Semillas de E. kinippelianus se escarificaron con ácido sulfúrico concentrado, se desinfectaron y sembraron en medio Murashige y Skoog (MS) al 50 % de todos sus componentes incluyendo la sacarosa + Carbón Activado 1 g L-‐1. Plántulas de 1 a 2 cm de altura se utilizaron como fuente de explantes laterales y apicales y se sembraron en medio MS adicionado con N-‐6 benciladenina (BA) 2 y 3 mg L-‐1. Posteriormente los explantes con los brotes formados se subcultivaron en medio en MS basal para promover su elongación. La germinación fue del 47 % después de 37 días de incubación. La formación de brotes fue por organogénesis directa después de ocho semanas. Los explantes apicales se elongaron y no formaron brotes; en cambio, los explantes laterales fueron más regenerativos. El número total de brotes con BA 2 mg L-‐1 fue de 36 y con BA 3 mg L-‐1 fue de 39. Los explantes con brotes, al ser subcultivados en medio MS basal para su elongación, generaron nuevos brotes a partir del explante inical, incrementando su número de 36 a 50 con BA 2 mg L-‐1 y de 39 a 58 con BA 3 mg L-‐1. A pesar de mostrar un porcentaje bajo de germinación, se determinó que los explantes laterales fueron más regenerativos y que esta técnica ofrece la posibilidad de obtener regenerantes como una estrategia de conservación ex situ para esta especie.

ID_1099 Modalidad: cartel Sesión CA6: PROPAGACIÓN DE PLANTAS

Propagación in vitro de Mammillaria hernandezii, cactácea endémica de México

Fernando PÉREZ HUERTA*, Octavio GONZÁLEZ CABALLERO y Víctor Manuel CHÁVEZ ÁVILA *[email protected]

Laboratorio de Cultivo de Tejidos Vegetales, Jardín Botánico, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, Circuito Exterior, México, D.F. 04510, México

El género Mammillaria es el más diverso dentro de la familia Cactaceae; México cuenta con 173 especies (148 endémicas). Mammillaria hernandezii tiene un alto grado de endemismo, es de lento crecimiento, sufre extracción y venta ilegal, se considera amenazada y no se cultiva. El cultivo de tejidos vegetales es una alternativa para su propagación como se ha logrado con muchas especies. Este estudio planteó lograr la regeneración de plantas a partir de distintos explantes de plántulas germinadas in vitro como una medida para su conservación. Se utilizaron 211 semillas divididas en tres lotes: 1 (20s), 2 (127s) y 3 (64s), que se desinfectaron con detergente durante 10 min, alcohol 70 % durante 1 min y solución de hipoclorito de sodio 30 % v/v durante 20 min; se enjuagaron en agua destilada esterilizada, se remojaron y estratificaron (5 °C) por tres días y se sembraron asépticamente en medio MS a 25 ± 2 °C, fotoperíodo 16 h, así como en oscuridad. Del Lote 1 plántulas de 6 a 12 meses fueron disectadas en ápices y bases, cultivados en medio MS con ANA/BA (mg/l): 0/0; 0/1; 0.5/1; 0/2; 1/2; 0.5/2; 0/3; 0.1/3 y 0.5/3. Se registró el inicio de la germinación a los siete días en fotoperíodo. A las nueve semanas se logró 55 %, 16 % y 65 % de germinación en los distintos lotes. La germinación del Lote 2 mejoró a 53 % después de pasarlo a medio con GA3 (47 d). La mejor respuesta morfogenética del Lote 1 se obtuvo en 0.5/3 con 78 brotes regenerados vía indirecta (1 año) de un solo ápice. De la disección de estos brotes, a los cuatro meses de cultivo se obtuvieron vía directa, en promedio 3 brotes/base en la concentración 0/3; en tanto que fueron 1.2 brotes/ápice en la concentración 0.5/3. El enraizamiento ha ocurrido de manera eventual. Se demostró la utilidad del cultivo de tejidos en la conservación de especies mexicanas en peligro de extinción.


Establecimiento in vitro y micropropagación de Agave lurida Aiton (Agavaceae), una especie mexicana en peligro de extinción

Héctor MÁRQUEZ PÉREZ*, Octavio GONZÁLEZ CABALLERO y Víctor M. CHÁVEZ AVILA

*[email protected]


Los agaves son especies clave de las regiones áridas, por su abundancia y diversidad y por los servicios ecológicos para otros organismos. Con aproximadamente 200 especies, 75% se distribuyen en México, donde Oaxaca presenta la mayor diversidad de especies (58). Agave lurida, especie endémica del distrito de Huajuapan, Oaxaca, se encuentra en peligro de extinción, por alteración del hábitat y limitada reproducción por semillas, ya que sus inflorescencias son cortadas para alimentar ganado caprino. La especies no se cultiva, cada vez quedan menos individuos y su situación se agudiza. El cultivo de tejidos vegetales ha hecho posible una propagación masiva a partir de pequeños fragmentos de numerosas especies, entre ellos algunos agaves. Para A. lurida éste fue el objetivo. Plántulas germinadas in vitro fueron disectadas en cotiledón, hojas, tallos y raíces, y sembrados en medio MS50%, con diferentes concentraciones de reguladores de crecimiento. Hojas y raíces, en las combinaciones (mg/L) de ANA (0, 0.1, 0.5) con BAP (0, 0.5, 1, 2); tallo, BAP (0.5 y 1); y cotiledón, 2-‐4 D (0.5 y 1). Al término de tres meses de cultivo, se regeneraron individuos completos a partir de los tallos. Las raíces habían formado callo en 0.5/0 y 0.5/1. Las hojas formaron callo en cuatro tratamientos y a los cinco meses en 0.1/2 y 0.5/0.5 se observaron embriones somáticos, que germinaron en plántulas. Al término de un año se tienen 122 plántulas, ca. 250 brotes in vitro y 8 individuos en invernadero. Esta investigación puede potenciar la conservación y la economía a través de un aprovechamiento sustentable de ésta y otras especies amenazadas.


Regeneración in vitro de Leuchtenbergia principis, cactácea amenazada endémica de México

Oscar JIMÉNEZ DÍAZ*, Octavio GONZÁLEZ CABALLERO y Víctor M. CHÁVEZ ÁVILA *[email protected]

Laboratorio de Cultivo de Tejidos Vegetales, Jardín Botánico, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510, México, D.F., México

Las cactáceas son originarias del continente americano, con amplia distribución con 110 géneros y 1500 especies, y en México con ca. 52 géneros y 850 especies y un alto grado de endemismo (715 especies). Dentro de esta diversidad se encuentra Leuchtenbergia principis, especie endémica y amenazada de México que es considerada ornamental. El cultivo de tejidos vegetales in vitro es una estrategia para la propagación y conservación de especies en peligro de extinción. En la presente investigación se exploró la germinación y propagación in vitro de Leuchtenbergia principis. Se sometieron semillas a escarificación química (60) y mecánica (10); y a un tratamiento control (50); sembradas in vitro en medio MS e incubadas en oscuridad y en fotoperiodo 16h. Plántulas germinadas in vitro fueron disectadas (46) en la parte apical, el hipocótilo y la raíz, sembradas en medio MS50% semi-‐sólido y medio MS50% líquido con puentes de papel, adicionando diferentes concentraciones de reguladores de crecimiento ANA/BAP (mg/l). Tubérculos (1-‐4 cm) provenientes de plantas de invernadero fueron desinfectados, disectados en secciones (0.5-‐2 cm) apicales y basales y sembrados en las mismas condiciones. El mayor porcentaje de germinación (80 %) se obtuvo con la escarificación química en fotoperíodo. La germinación con escarificación mecánica fue del 50 % y en el control del 6 %. Secciones basales de tubérculos formaron callo en: 0.1/3, 0.1/1 y 0.5/3. De igual forma lo hicieron las secciones de plántulas hipocotilo (0.5/ 1) y raíz (0.5/3). Secciones apicales de plántulas (1 de 28) formaron nueve brotes, vía directa en 0.1/3 medio semi-‐sólido. El presente estudio contribuye a la conservación y conocimiento de especies en peligro de extinción y al desarrollo de nuevas técnicas para su propagación.


Micropropagación de Barkeria whartoniana y B. scandens (Orchidaceae), especies mexicanas en peligro de extinción

Alejandra VILLAFUERTE SALAZAR*, Uriel MARTÍNEZ HERNÁNDEZ, Octavio GONZÁLEZ CABALLERO y Víctor Manuel CHÁVEZ ÁVILA *[email protected]

Laboratorio de Cultivo de Tejidos Vegetales, Jardín Botánico, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, Circuito Exterior, México, D.F., 04510

Barkeria whartoniana y B. scandens son especies endémicas de México afectadas por actividades humanas, destrucción de su hábitat y alta tasa de colecta ilegal, lo que conlleva a una pérdida muy importante de su variabilidad genética y, con ella, la disminución de su capacidad de supervivencia. Actualmente están catalogadas como especies “Sujetas a protección especial” (NOM-‐059-‐SEMARNAT-‐2010) y en el Apéndice II de CITES. Esto demuestra que es urgente e indispensable implementar estrategias de manejo y conservación en virtud de que no se cultivan. Una alternativa potencial no sólo para mantener sino incrementar el número de individuos de ésta y otras familias de plantas es el CTV, que ha demostrado ser capaz de obtener altas tasas de multiplicación a partir de un explante inicial, debido a la totipotencialidad celular; sin embargo, no hay registros de estudios in vitro para el género Barkeria. Por ello, el objetivo de la investigación fue realizar la micropropagación y el análisis estructural de ambas especies para contribuir a su conocimiento y conservación. Para B. whartoniana se cultivaron explantes de protocormos. Para B. scandens se utilizaron explantes (hoja, tallo) de plántulas (1-‐3 cm altura). Ambas especies se cultivaron en medio MS con antioxidantes y reguladores de crecimiento: ANA/BA. Resultados a 180 d de inducción. B. whartoniana, el mejor tratamiento para obtener la mayor formación de PLBs se logró en el medio adicionado con 1 mg/L de ANA más 1 mg/L BA, con un total de 969 PLBs y un promedio por explante de 48.45 ± 0.99. B. scandens, el mayor número de regenerantes se logró en secciones de tallo en medio con 0.5/1 ANA/BA mg/L, formándose un total de 220 PLBs y un promedio de 22 ± 0.81 por explante. En el análisis estructural se probó que los regenerantes obtenidos fueron embriones somáticos.


Micropropagación de estrella de belén, Ornithogalum umbellatum (Hyacinthaceae), a partir de yemas axilares

Luis HERMOSO GALLARDO¹*, Teresa VARGAS CEDEÑO2, Andrea MENÉNDEZ-‐YUFFÁ¹ y Eva DE GARCÍA² *[email protected]

¹Laboratorio de Clonación y Genética Vegetal, 2Laboratorio de Biotecnología Vegetal, Centro de Botánica Tropical; Instituto de Biología Experimental, Facultad de Ciencias, Universidad Central de Venezuela, Apartado 47114. Caracas 1041A, Venezuela

Las plantas de estrella de belén tienen un alto valor comercial por su belleza y el tiempo de duración de sus flores una vez cortadas. Por sus propiedades curativas es también utilizada en la medicina homeopática. El objetivo de esta investigación fue la propagación y multiplicación in vitro de plantas de estrella de belén. Una vez desinfectadas, las yemas axilares fueron cultivadas en el medio de Murashige y Skoog 1962, suplementado con Tiamina 0,4 mg/l, Mioinositol 100 mg/l, Sacarosa 30 g/l, sin hormonas y con Benciladenina 1 mg/l. A los 30 días de cultivo, se apreció un 100 % de explantes con brotes en los 2 medios probados. A los 60 días, se observó un promedio de 19.5 brotes/yema en el medio con 1 mg/l de Benciladenina, y de 7.5 brotes/yema en el medio sin hormonas. En las hojas de los brotes obtenidos en los dos tratamientos empleados se observó una organogénesis directa y en la base de dichos brotes se observó una organogénesis indirecta, lo cual aumentó considerablemente la multiplicación de esta especie. En ambos medios hubo gran formación de raíces. Para la etapa de aclimatación se utilizó un sustrato compuesto con turba y tierra negra en una proporción 1/1, obteniéndose 95 % de plantas aclimatadas en vivero.


Organogénesis in vitro de Picea chihuahuana Martínez (Pinaceae)

Laura Patricia OLGUÍN-‐SANTOS1*, Ana Laura LÓPEZ-‐ESCAMILLA2, Víctor Manuel CHÁVEZ ÁVILA3, Judith MÁRQUEZ GUZMÁN4 y Robert BYE BOETTLER3 *[email protected]

1Unidad de Ambientes Controlados, Facultad de Ciencias, 4Laboratorio de Desarrollo en Plantas; Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México 2Laboratorio de Morfofisiología Vegetal, Centro de Investigaciones Biológicas, Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, 42184, Pachuca, Hidalgo, México 3Jardín Botánico, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México

Picea chihuahuana es un relicto endémico de los bosques de coníferas en México. Su distribución geográfica restringida, su baja producción de semillas viables y el escaso número de individuos en sus poblaciones la colocan como especie En Peligro de Extinción en la NOM-‐059-‐SEMARNAT-‐2010. Embriones cigóticos maduros fueron cultivados in vitro para determinar el mejor medio de cultivo, concentración hormonal, tiempo de inducción para la mayor proliferación de brotes y los eventos histológicos que ocurren durante su diferenciación. Se utilizaron tres medios: B5 modificado, Murashige y Skoog y Schenk y Hildebrandt modificado (SH) adicionados con Bencilaminopurina/Ácido Naftalenacético (5/0 y 5/0.5 mg L-‐1) y Kinetina/2,4-‐D (5/0 y 5/.01 mg L-‐1), mejores combinaciones determinadas en ensayos previos con 30 días de inducción. Después de 75 días de cultivo, el mayor número de brotes/tratamiento (133) se obtuvo en SH + Kinetina/2,4-‐D, 5/0.1 mg L-‐1. Los brotes adventicios fueron regenerados por organogénesis directa sobre los cotiledones y escasamente sobre el hipocótilo, únicamente en los tratamientos con hormonas. Los tratamientos con Kinetina/2,4-‐D (5/0 y 5/.01 mg L-‐1 ) fueron repetidos utilizando embriones obtenidos de semillas con dos y seis años de almacenamiento, aplicando dos tiempos de inducción: 30 y 60 días. Estadísticamente se corroboró que el mejor tratamiento para la proliferación de brotes adventicios fue el SH + Kinetina 5 mg L-‐1 con semillas almacenadas menos tiempo (2 años) y tiempo de inducción de 60 días, obteniéndose en promedio 18.1 brotes/embrión a los 140 días de cultivo. La oxidación fue controlada agregando antioxidantes a los medios y aplicándolos como enjuagues a los explantes antes de cada subcultivo. El análisis histológico reveló que en las capas subepidérmicas de los cotiledones se presentaron las divisiones que condujeron a la formación de grupos de tres a cuatro células (promeristemoides), las cuales precedieron la formación de meristemoides que posteriormente dieron origen a los brotes adventicios.


Regeneración in vitro de brotes de Echinocactus grusonii (Cactaceae) utilizando medio líquido

Clara Dolores SOTO-‐CORTES1,*, Laura Patricia OLGUÍN-‐SANTOS2 y Ana Laura LÓPEZ-‐ESCAMILLA3 *[email protected]

1Laboratorio de Desarrollo en Plantas, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México 2Unidad de Ambientes Controlados, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México 3Laboratorio de Morfofisiología Vegetal, Centro de Investigaciones Biológicas, Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, 42184, Pachuca, Hidalgo, México

Echinocactus grusonii (Cactaceae), especie endémica de México, se distribuye en los estados de Querétaro e Hidalgo. Su distribución geográfica restringida, el amplio uso ornamental y la destrucción de su hábitat la sitúan en la categoría En Peligro de Extinción de la NOM-‐059-‐SEMARNAT-‐2010. La propagación de cactáceas por cultivo de tejidos vegetales ha utilizado generalmente medio de cultivo sólido; sin embargo, se ha observado que la inducción y el desarrollo de brotes en medio líquido resulta mejor, dado que los nutrimentos están más disponibles para el explante en ausencia del agente gelificante. Por lo anterior, en este trabajo se utilizó a Echinocactus grusonii como modelo para evaluar la regeneración de brotes in vitro en medio líquido (puentes de papel filtro). Semillas de E. grusonii fueron sembradas en medio Murashige y Skoog al 50 % de sus componentes, líquido y sólido. El porcentaje de germinación in vitro después de 60 días fue mayor en medio sólido (78 %) que en líquido (57 %); sin embargo, a los 40 días de cultivo, la longitud de las plántulas en medio líquido fue mayor (1.2 cm) que en sólido (8 mm). Explantes longitudinales se sembraron en medio de inducción MS líquido y sólido adicionado con N6-‐2 isopentenil adenina 3 mg L-‐1. La formación de brotes ocurrió vía directa por activación de aréolas. El promedio de brotes por explante fue mayor en medio líquido (3) que en sólido (1.8) a los a los 90 días de inducción. El 97 % de los brotes individualizados formaron raíces de manera espontánea en medio MS basal sólido. Los brotes enraizados se aclimatizaron, obteniéndose 95 % de supervivencia ex vitro. El medio líquido hizo más eficiente el sistema de propagación, promovió la elongación de las plántulas facilitando la obtención de explantes e incrementó la regeneración in vitro de brotes en Echinocactus grusonii.

ID_493

Modalidad: cartel Sesión CA6: PROPAGACIÓN DE PLANTAS

Cultivo in vitro de cuatro especies de cactáceas endémicas de México

María Alejandra FERNÁNDEZ TÉLLEZ, Pablo GRACIDAS DÍAZ, Mariana Beatriz RIVERA BENÍTEZ, Octavio GONZÁLEZ CABALLERO y Víctor Manuel CHAVEZ ÁVILA [email protected]

Laboratorio de Cultivo de Tejidos Vegetales, Jardín Botánico, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F.

Numerosas especies de cactáceas mexicanas están en peligro de extinción. Para CITES toda la familia se encuentra amenazada por actividades humanas como la sobreexplotación, destrucción de su hábitat y la colecta ilegal de ejemplares para su venta. El cultivo de tejidos vegetales representa una alternativa viable para el estudio, propagación, conservación y base de su aprovechamiento sustentable de especies amenazadas. En este estudio a partir de fragmentos de tallos de plántulas que germinaron in vitro se logró la multiplicación de cuatro taxa mexicanos en alguna categoría de riesgo: Backebergia militaris (protección especial), Strombocactus disciformis ssp. disciformis, Strombocactus disciformis ssp. esperanzae (amenazadas) y Mammillaria luethyi (en peligro de extinción). Semillas de las cuatro especies fueron sembradas asépticamente bajo fotoperiodo 16 h en medio MS50 %. Plántulas germinadas (0.8-‐2 cm) fueron disectadas en ápices y fragmentos de tallo cultivados en MS50 % con Reguladores de Crecimiento Vegetal (RCV): KIN, BAP en combinación con ANA. Para B. militaris germinaron con una solución GA4+GA7 (3 mg/L) 40 embriones de 60 sembrados. La germinación de S. disciformis fue de 40 semillas (ssp. esperanzae) y de 76 (ssp. disciformis). En M. luethyi sólo germinaron 3 semillas de 22. La obtención de brotes en los cuatro taxones estuvo asociada a diferentes concentraciones de RCV. B. militaris: al término de 1.5 años se han logrado 12 plantas y 13 brotes. Para M. luethyi después de 1 año se obtuvieron 745 brotes. Para ambas especies de Strombocactus se obtuvieron brotes vía indirecta después de un mes en el medio de inducción. A 120 días de cultivo se obtuvo un promedio de 157 brotes/explante en S. disciformis ssp. esperanzae. Se logró la aclimatización de una plántula de B. militaris y un lote de ca. 100 plantas de M. luethyi. Estos resultados tienen implicaciones directas en la conservación de éstas y otras cactáceas en riesgo de extinción.

ID_503

Modalidad: cartel Sesión CA6: PROPAGACIÓN DE PLANTAS

Desarrollo ontogénico in vitro de Epidendrum radicans Pav. ex Lindl (Orchidaceae)

Ana Belén RODRIGUEZ-‐FARFÁN, Bárbara Susana LUNA-‐ROSALES*, y Amadeo BARBA-‐ÁLVAREZ *[email protected]

Unidad de Investigación en Biología Vegetal, Carrera de Biología, Facultad de Estudios Superiores-‐Zaragoza (Campo II), Universidad Nacional Autónoma de México, 09230 México, D.F., México

Epidendrum radicans es una orquídea nativa de México que ha sido poco estudiada en relación a su biología básica y en particular al proceso del desarrollo ontogénico del embrión de las semillas durante la geminación hasta su formación en plántula. En el presente estudio se describió el desarrollo ontogénico de esta especie utilizando la técnica de cultivo in vitro. Se compararon 12 tratamientos, los cuales consistieron en la variación del medio nutritivo, la presencia de carbón activado (Ca) y peptona (P). Los medios nutritivos utilizados fueron dos con sales inorgánicas analíticas, Kao & Mychayluk (KM) y Mitra (M), y dos con fertilizantes orgánicos comerciales, Superthrive ® (S) y XIBANI ® (H). Durante el proceso de germinación de las semillas de E. radicans se establecieron seis estadios ontogénicos a lo largo de 120 días de cultivo. En todos los tratamientos se observó a los siete días de cultivo el primer estadio o embrión hinchado, de color verde y dentro de la testa; posteriormente, a los 14 días de cultivo el embrión incrementó su volumen hasta romper la testa, estableciéndose el segundo estadio. Además, para este tiempo de cultivo, se observó el tercer estadio ontogénico o protocormo en los tratamientos M+Ca, KM+Ca y KM+Ca+P y sólo en estos dos últimos tratamientos se apreció, a partir de los 28 días, el estadio de protocormo con primordio foliar y hasta los 42 días de cultivo; solamente en el tratamiento KM+Ca, este primordio se diferenció en las primeras hojas de la plántula. En este mismo tratamiento, se observó a los 56 días de cultivo el sexto y último estadio ontogénico como una plántula completa o plántula con hojas y raíz. El carbón activado favorece el rápido desarrollo ontogénico del embrión de las semillas cuando es adicionado al medio nutritivo KM.

ID_532

Modalidad: cartel

Sesión CA6: PROPAGACIÓN DE PLANTAS

Propagación a partir de semilla y su posterior multiplicación vegetativa mediante BAP en Tillandsia caput-‐medusae Morren

Jonás MILLÁN CASTAÑEDA, María Elena HUIDOBRO SALAS, José Luis GAMA FLORES y Alejandra GARCÍA MARES

Módulo de Diversidad Vegetal I, Facultad de Estudios Superiores Iztacala, Universidad Nacional Autónoma de México, Av. De Los Barrios No. 1, C.P. 54090 Los Reyes Iztacala, Tlalnepantla, Estado de México, México

El objetivo principal fue la propagación de Tillandsia caput-‐medusae en medios de cultivo in vitro y la evaluación del efecto de diferentes concentraciones de BAP. Como objetivos particulares se realizó un análisis de germinación en cultivo in vitro, así como un análisis del efecto producido en las plántulas sometidas a BAP. La fase de propagación fue en tres etapas (hinchamiento, emergencia y desarrollo de raíz). Se obtuvieron respuestas positivas en 99 %, 73 % y 68 % de las semillas, respectivamente, lo cual señala que la capacidad de adsorción de las semillas es casi total tras tres días. La emergencia se presentó del día 14 al 17 y la raíz tras 30 días; las plántulas que no lograron sobrevivir fueron por efecto de oxidación. La fase de multiplicación vegetativa se trabajó con plántulas producto de la propagación; se seleccionaron por talla y número de hojas. El tratamiento que presentó efecto en menor tiempo fue la concentración 2 mg/l, seguido por 0.5 mg/l y por último el de 1 mg/l; el grupo control no presentó brotes laterales. Analizando estadísticamente los resultados respecto al número de plántulas formadoras de brotes, se encontró un menor efecto en la concentración de 1 mg/l con respecto al efecto en los tratamientos de 0.5 y 2 mg/l (60 %, 44 % y 60 % de los individuos por tratamiento), mientras que respecto al número total de brotes producidos por tratamiento el mayor efecto se presentó en el tratamiento de 2 mg/l. En cuanto a la oxidación, se presentó en los tratamientos de 0.5 mg/l y 2 mg/l (12 % y 32 % de los individuos, respectivamente), lo cual señala un efecto directamente proporcional a la concentración empleada de BAP. Las plántulas parecen responder al regulador de crecimiento BAP no sólo con la estimulación en formación de brotes, también se provoca la oxidación.

ID_535 Modalidad: cartel


Evaluación de la propagación in vitro de Laelia speciosa (Kunth) Schltr. (Orchidaceae) empleando un sistema de inmersión temporal

Fernando CUÉLLAR-‐GONZÁLEZ* y Ana Laura LÓPEZ-‐ESCAMILLA *[email protected]

Laboratorio de Morfofisiología Vegetal, Centro de Investigaciones Biológicas, Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, 42184 Pachuca, Hidalgo, México

Los sistemas de inmersión temporal han demostrado incrementar la eficiencia en las técnicas de micropropagación. El presente estudio tuvo como objetivo establecer uno de estos sistemas de bajo costo y validarlo con la propagación in vitro de Laelia speciosa (Orchidaceae), especie endémica de México y sujeta a protección especial por la Norma Oficial Mexicana. Para el sistema de inmersión se emplearon envases de vidrio, mangueras, electroválvulas, programadores digitales, una compresora, filtros de aire y conectores. Para su validación, se utilizaron plántulas de 2 a 3 cm previamente regeneradas in vitro, subcultivadas en medio Murashige y Skoog sólido y para el sistema de inmersión temporal en medio líquido, ambos con bencilaminopurina/ácido naftalenacético 1/2 mg L-‐1. Las frecuencias de inmersión fueron cuatro, seis y ocho veces al día, con inmersiones de 2 min durante 30 días; posteriormente se transfirieron a medio Murashige y Skoog basal otros 30 días. Se evaluaron parámetros morfológicos, el coeficiente de multiplicación y la cantidad de clorofila en unidades SPAD. El porcentaje de supervivencia ex vitro se evaluó a 40 días. Plántulas provenientes del sistema de inmersión temporal presentaron mayor talla en comparación con las obtenidas mediante el cultivo sólido. Se observaron diferencias estadísticamente significativas (P = 0.00) en las variables evaluadas, la mejor frecuencia de inmersión fue de seis veces al día y 2 min de inmersión, registrando en promedio entre 36.08 y 42.67 unidades SPAD, un coeficiente de multiplicación de 3.33, y el 80 % de supervivencia ex vitro. Se estableció un sistema de inmersión eficiente y económico con insumos nacionales, logrando validar el sistema y obteniendo plantas con mejores características morfológicas y fisiológicas en 60 días con altos porcentajes de supervivencia en comparación con el medio sólido. El uso de esta técnica biotecnológica hizo más eficiente la micropropagación de L. speciosa, siendo una alternativa viable para contribuir a su conservación.

ID_620 Modalidad: cartel


Cultivo in vitro de Poliomintha bustamanta B.L. Turner

María Luisa CÁRDENAS AVILA1, Sergio MORENO LIMÓN2, Rahim FOROUGHBAKHCH POURNAVAB2, Lidia Rosaura SALAS CRUZ2, Jorge Alberto VILLARREAL GARZA2 y Deyanira QUISTIÁN MARTÍNEZ2

1Departamento de Biología Celular y Genética, 2Departamento de Botánica; Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Autónoma de Nuevo León, Ciudad Universitaria, 66451 San Nicolás de los Garza, Nuevo León, México

El orégano describe a más de 60 especies con un aroma y sabor en común y está representado por Origanum vulgare (L.) en Europa y por diferentes especies de Lippia (L.) y Poliomintha (Gray) en América. Es apreciado como condimento y por sus propiedades medicinales; su aceite se emplea en la elaboración de jabones, perfumes y cosméticos. El propósito de esta investigación fue lograr la inducción de callo in vitro de explantes de hoja y tallo de orégano mexicano (Poliomintha bustamanta B.L. Turner), en el medio de cultivo Murashige y Skoog (MS) modificado y con diferentes concentraciones y combinaciones de reguladores de crecimiento vegetal (RCV): ácido 2,4-‐diclorofenoxiacético (2,4-‐D) (0, 2.5, 5, 7.5 y 10 mg/L) y ácido naftalenacético (ANA) (0, 0.5, 1 mg/L). Asimismo se empleó la regeneración directa, elongación y desarrollo de brotes apicales en medio de cultivo MS, modificado con 1 mg/L de ácido indolacético (AIA) y 2 mg/L de 6-‐bencilaminopurina (BAP). Los explantes (hoja y tallo) de orégano mexicano se sembraron bajo condiciones asépticas, logrando mayor proliferación en el tratamiento (MS + 5 mg 2,4-‐D) a los 20 días después de la siembra. En la regeneración directa de brotes apicales, el medio de cultivo MS + 1 mg/L AIA y 2 mg BAP/L es el adecuado para la elongación, crecimiento del explante y desarrollo de brotes laterales. El Análisis de Varianza demostró que en relación a la formación de callo in vitro, la diferencia significativa (P < 0.01) solamente se presenta entre los tratamientos, pero no entre los tipos de explante ni en la interacción de ambos factores. La Comparación Múltiple de Medias muestra la mejor respuesta de formación de callo en el tratamiento MS + 5 mg 2,4-‐D, cuyo resultado es estadísticamente diferente del obtenido en el resto de los tratamientos.


Germinación asimbiótica y propagación in vitro de Epidendrum radicans Pav. ex Lindl. (Orchidaceae)

Nancy Araceli CANDIDO DÍAZ1*, Ana Laura LÓPEZ-‐ESCAMILLA2 y Laura Patricia OLGUÍN-‐SANTOS3 *[email protected]

1Laboratorio de Desarrollo en Plantas, 3Unidad de Ambientes Controlados; Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México 2Laboratorio de Morfofisiología Vegetal, Centro de Investigaciones Biológicas, Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, 42184 Pachuca, Hidalgo, México

México tiene un inventario de 1264 especies de orquídeas, de las cuales el 40 % son endémicas. Las orquídeas son reconocidas y valoradas por la gran diversidad de formas florales, por lo que muchas especies son vulnerables a la extinción. La germinación de sus semillas requiere de una asociación micorrízica; sin embargo, ésta ha podido lograrse de forma asimbiótica utilizando las técnicas de cultivo de tejidos vegetales, incorporando al medio los azúcares que en condiciones naturales son proporcionados por el hongo. El objetivo del presente trabajo fue establecer la metodología para la germinación asimbiótica y la propagación in vitro de Epidendrum radicans como modelo para otras orquídeas de hábitos terrestres que se encuentren en la Norma Oficial Mexicana. Semillas de E. radicans se desinfectaron y sembraron en medio Murashige y Skoog (MS). Para la propagación, se utilizaron como explantes mitades de protocormos que se sembraron en medio MS al 50 % de sus componentes adicionado con Ácido Naftalenacético 0, 2 y 4 mgL-‐1, siendo 2 mgL-‐1 la mejor concentración al generar un promedio de 1159 cuerpos parecidos a protocormos a partir de 100 explantes en cuatro meses. Las plántulas desarrolladas se subcultivaron a medio MS y después de cuatro meses se transfirieron al mismo medio adicionado con pulpa de plátano para estimular su crecimiento. Las plántulas se aclimatizaron en charolas de plástico transparente con una mezcla de carbón:tezontle:corteza de pino (1:1:1) a 27 °C. Después de tres meses, las plántulas procedentes de las concentraciones 0, 2 y 4 mgL-‐1, sobrevivieron en un 5 %, 70 %, 60 %, respectivamente. El presente trabajo demuestra la potencialidad regenerativa de las mitades de protocormos como fuente de explante para la propagación masiva de esta especie terrestre.


Micropropagación de Mammillaria coahuilensis (Boed.) (Cactaceae) Moran a partir de semillas de plantas regeneradas in vitro

Laura Lorena RODRÍGUEZ-‐NÚÑEZ1,*, Ana Laura LÓPEZ-‐ESCAMILLA2 y Laura Patricia OLGUÍN-‐SANTOS3 *[email protected]

1Laboratorio de Desarrollo en Plantas, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México 2Laboratorio de Morfofisiología Vegetal, Centro de Investigaciones Biológicas, Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, 42184 Pachuca, Hidalgo, México 3Unidad de Ambientes Controlados, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México

Mammillaria coahuilensis, especie endémica del estado de Coahuila, México, y de distribución restringida está amenazada de extinción de acuerdo con la Norma Oficial Mexicana. Las técnicas de propagación in vitro se han aplicado exitosamente en especies de este género como estrategia de conservación ex situ. El objetivo del presente trabajo fue evaluar la capacidad de germinación y regeneración in vitro de semillas provenientes de plantas propagadas previamente por cultivo de tejidos, establecidas en invernadero y polinizadas manualmente. Semillas de M. coahuilensis se desinfectaron y sembraron en medio Murashige y Skoog (MS). Para promover su elongación, las plántulas se transfirieron a MS líquido con puentes de papel filtro durante 25 días y posteriormente en MS + Carbón Activado 1.5 gL-‐1 para evitar la hiperhidratación. Plántulas de 0.5-‐16 mm de longitud se utilizaron como fuente de explantes apicales y laterales y se sembraron en medio de inducción MS adicionado con Benciladenina y N62-‐isopentiladenina ambas a 0.5, 1 y 2 mgL-‐1. La germinación fue menor (75 %) que la obtenida en trabajos previos en semillas de plantas silvestres (100 %). Los brotes se formaron por organogénesis directa a partir de aréolas florales y vegetativas en ambos explantes. En explantes laterales, el mayor número promedio de brotes (13.3) se obtuvo con BA 2 mgL-‐1 y en los apicales (10.6) en la misma concentración. Con N62-‐isopentiladenina los laterales formaron en promedio 7.25 brotes por explante con 2 mgL-‐1 y fue nula en los apicales. Estudios previos con la misma especie reportaron 21.25 brotes por explante con 1 mgL-‐1 Benciladenina y 8.86 con 0.5 mgL -‐1. Se concluye que las semillas procedentes de una primera generación obtenida in vitro disminuyeron en su porcentaje de germinación y en el número de brotes regenerados, sin embargo, conservan su viabilidad y alta capacidad regenerativa.


Propagación in vitro y descripción histológica de estructuras embrionarias de Agave victoriae-‐reginae

Betzy Rosaura RIVERA FUENTES1, Guitele Dalia GOLDHABER PASILLAS2, Mónica Karina PÉREZ PACHECO3, Judith MÁRQUEZ GUZMÁN3 y Víctor Manuel CHÁVEZ ÁVILA1

1Laboratorio de Cultivo de Tejidos Vegetales, Jardín Botánico, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, 04510 México, D.F., México 2Natural Products Laboratory, Leiden Institute of Biology, Leiden University, 2300 Leiden, South Holland, Países Bajos 3 Laboratorio del Desarrollo en Plantas, Departamento de Biología Comparada, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México

Agave victoriae-‐reginae es una especie endémica de México con una gran importancia económica y cultural, pues constituye un grupo de plantas clave por los recursos que otorgan al ecosistema y al ser humano. Los factores antropogénicos han alterado sus poblaciones silvestres debido a la colecta ilegal de plantas y semillas para su comercialización ornamental y la destrucción del hábitat natural, del cual se extraen minerales para compañías cementeras. Por esta situación crítica ha sido catalogada como en peligro de extinción por la NOM-‐059-‐ECOL-‐2001 y bajo el estatus de amenazada de acuerdo con CITES, Apéndice II. El objetivo fue establecer las condiciones in vitro para inducir la regeneración de plantas completas a partir de explantes de hoja, tallo y raíz en medio MS 50 % con PVP y carbón activado, adicionado con 2,4-‐D (0, 0.1, 0.5, 1, 2, 3, 4 mg/L) y BA (0, 0.5, 1, 2, 3 mg/L). Se logró obtener organogénesis indirecta a partir de hoja y directa a partir de tallo, así como embriogénesis somática a partir de hojas y la descripción del desarrollo ontogénico, morfológico y anatómico in vitro de callo embriogénico, primordios foliares y hojas. Los cortes obtenidos muestran células de callo con paredes celulares delgadas y núcleo excéntrico, células meristemáticas con núcleos conspicuos, formación de proembriones, mitosis, embrión y suspensor, haz vascular de raíz con periciclo y endodermis, cofia, primordios foliares y brotes. Con este trabajo se demostró que el cultivo de tejidos vegetales es una herramienta eficaz y viable para la propagación in vitro de especies en peligro de extinción y que a su vez permite la reintroducción a la vida silvestre, promoviendo así la conservación y su aprovechamiento sostenible.


Propagación in vitro de tres especies endémicas mexicanas del género Mammillaria (Cactaceae): M. longiflora, M. napina y M. sanchez-‐mejoradae

Marlene HERNÁNDEZ PACHECO*, Octavio GONZÁLEZ CABALLERO y Víctor M. CHÁVEZ AVILA *[email protected]


Mammillaria, género casi endémico de México y con ca. 1,025 especies y subespecies, incluye plantas que son fuente de recursos ecológicos, sufren degradación de hábitats y saqueo por su valor ornamental, económico y cultural. Estos procesos, sumado a largos ciclos de vida, errática producción de semillas y germinación, hacen que estén en situación crítica. La NOM-‐059-‐SEMARNAT-‐2010 incluye 103 especies, 25 como amenazadas (A) y 10 en peligro de extinción (P). M. longiflora, M. napina (A), endémicas de Durango y del Valle de Tehuacán-‐Cuicatlán, Puebla, respectivamente, y M. sanchez-‐mejoradae (P), endémica de Nuevo León, se comercializan pero no se cultivan, excepto esta última. El cultivo de tejidos vegetales permite producir numerosos individuos a partir de fragmentos pequeños y es una alternativa para la conservación de especies, objetivo del presente estudio. Ápices y distintos fragmentos fueron cultivados en medio MS50% con ANA/BAP (0/0; 0/1; 0/3, 0.5/0; 0.5/1, 0.5/3 mg/l). M. longiflora: de 14 plántulas germinadas in vitro (40 %), se cultivaron ápice, tallo y raíces, 11 semanas con ANA/BAP. El tallo en 0.5/3 formó mayor número de brotes vía directa e indirecta. A 1.5 años se obtuvieron 1349 brotes in vitro y 75 plantas en invernadero. M. napina: dos plantas silvestres y dos injertadas (cultivadas). Fueron disectadas (ápice y 2 segmentos de tallo c/u), sembradas en medio con ANA/BAP 7 semanas. Los brotes generados fueron divididos igualmente; además, seis raíces obtenidas de rizogénesis in vitro fueron sembradas en medio con ANA/BAP con los explantes originales. Estos últimos permanecieron en inducción 14 semanas. Después de 22 meses se obtuvieron 16 brotes vía directa. M. sanchez-‐mejoradae: de un brote in vitro (cinco meses), se cultivaron tubérculos y tubérculos con médula (1-‐3 mm de largo). A dos años se tienen 112 brotes vía indirecta. La conservación de recursos bióticos y el incremento de la productividad se deben lograr con el desarrollo de la ciencia y la tecnología.


Embriogénesis somática en Zamia furfuracea (Zamiaceae), especie endémica mexicana

Paulina HEREDIA GUZMÁN1,*, Sandra CABRERA HILERIO2, Octavio GONZÁLEZ CABALLERO1, Víctor Manuel CHÁVEZ ÁVILA1 y Richard E. LITZ3 *[email protected]

1Laboratorio de Cultivo de Tejidos Vegetales, Jardín Botánico, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, México 04510 D.F., México 2Jardín Botánico y Herbario de la Benemérita Universidad de Puebla, Puebla, Pue., México 3University of Florida, Homestead, Estados Unidos de América

Zamia furfuracea, especie endémica del estado de Veracruz y con escasas poblaciones e individuos, está considerada en peligro de extinción (NOM-‐059-‐SEMARNAT-‐2010). No obstante su importancia ecológica, cultural y económica, no se cuenta con un sistema eficiente de propagación; su ciclo de vida largo y la destrucción del hábitat agravan su situación, por lo que la exploración del potencial morfogenético in vitro podría contribuir a su conservación. A partir de hojas inmaduras de individuos adultos se establecieron cultivos asépticos de folíolos y pecíolos que formaron callo en medio Litz adicionado de kinetina (0, 0.1, 0.5, 1, 2 mg/l) con 2,4-‐D (0, 1, 2 mg/l) al término de 1-‐2 meses de cultivo. El callo obtenido de pecíolos fue de rápido crecimiento, blanco, compacto, poco hidratado, amorfo, mientras el de folíolos fue de más lento crecimiento, blanco-‐hialino, friable, húmedo, nodular, con filamentos cristalinos semejantes a las etapas embriogénicas tempranas citadas en la literatura. Cultivos en medio líquido han permitido incrementar la biomasa y determinar su curva de crecimiento. Después de ocho meses de cultivo se formaron embriones somáticos a partir del callo generado por foliolos. Con el propósito de caracterizar las estructuras formadas in vitro se realizó un análisis histológico de los callos y embriones somáticos formados in vitro comprobándose su identidad. Este es el primer reporte a nivel mundial de embriogénesis somática a partir de estructuras somáticas de individuos adultos (hojas inmaduras) en el género Zamia que abre la posibilidad de contar con un sistema de regeneración controlado que haga posible la conservación de este grupo vegetal en peligro de extinción.


Cultivo de callo in vitro del orégano mexicano Lippia graveolens Kunth

Sergio MORENO LIMÓN1, María Luisa CÁRDENAS AVILA2, Rahim FOROUGHBAKHCH POURNAVAB1, Mario Rodolfo MORALES VALLARTA1, José Guadalupe ALMANZA ENRÍQUEZ1 y Ma. Adriana NÚÑEZ GONZÁLEZ3

1Departamento de Botánica, 2Departamento de Biología Celular y Genética, 3Departamento de Química Analítica; Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad Autónoma de Nuevo León, Ciudad Universitaria, 66451 San Nicolás de los Garza, Nuevo León, México

El término orégano se aplica a un conjunto de plantas pertenecientes a cuatro familias taxonómicas, pero la más representativa de nuestro país es la familia Verbenaceae. Lippia graveolens Kunth es un arbusto pequeño de hojas aromáticas con diversos usos: culinarios, medicinales y estéticos, entre otros. Una rama importante de la biotecnología es el cultivo in vitro, que es el cultivo en medio nutritivo, en condiciones estériles, de plantas, semillas, embriones, órganos, explantes, tejidos, células y protoplastos de vegetales. Se forma una masa desdiferenciada sin control en su crecimiento que recibe el nombre de callo, creado a partir de una porción de planta en contacto con un medio adecuado para su proliferación. El propósito de la siguiente investigación es desarrollar un protocolo de asepsia y cultivo de callo in vitro del orégano mexicano en medio adicionado con jugo de naranja como agente antioxidante. Se utilizaron explantes de hoja sanas, que se pasaron por un proceso aséptico que consistió en 30 segundos en etanol 100 %, hipoclorito de sodio comercial (15 %) por 15 minutos de 3 a 5 enjuagues en agua destilada esterilizada; posteriormente fueron sembrados en medio de cultivo Murashige-‐Skoog (MS) (Sigma Aldrich) con el RCV 2,4-‐Diclorofenoxiacético y jugo de naranja en concentraciones de 0, 10 y 20 %. La inducción de tejido desdiferenciado se logró a los 10 días; el tratamiento T3 (3 mg/L de 2,4-‐D) mostró los mejores resultados a los 40 días al presentar callo de gran tamaño y calidad; el callo es friable con una coloración verde cristalino. El uso del complejo natural jugo de naranja no mejoró la respuesta sobre la inducción en los tratamientos. El Análisis de Varianza demostró que hay una diferencia significativa entre los tratamientos en relación a la promoción de la formación de callo de Lippia graveolens (P < 0.01).


Evaluación de la viabilidad económica de la micropropagación de Alsophila firma Baker

Carlos Iván LINARES GARCÍA, Guillermo Alfonso HERRERA QUECHOL, María Sol MONTERRUBIO ROBLEDO, Oswaldo NÚÑEZ CASTILLO y Juan Carlos PEÑA BECERRIL

Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, 04510 México, D.F., México

Los helechos arborescentes tienen una gran importancia económica ya que son comercializados como maquique (fibra para cultivar epífitas) o para uso ornamental. La extracción excesiva junto con el indiscriminado deterioro de su hábitat ha provocado que muchas especies estén incluidas en la NOM-‐059. El objetivo es analizar la sustentabilidad de la aplicación de una técnica de micropropagación de Alsophila firma contra la extracción ilegal. Para ello se realizó un análisis de la relación costo-‐beneficio de la micropropagación y de la extracción ilegal a corto, mediano y largo plazo. Para recabar información se realizaron salidas a campo a los sitios de venta de maquique y de plantas ornamentales de la especie, y a su vez se recopiló información bibliográfica. A corto plazo a través de la micropropagación no se obtiene una ganancia neta comparada con lo invertido por lo que se considera no viable. A mediano plazo hay ganancia del 60 % sobre lo ganado ilegalmente por lo que no se equipara. A largo plazo se supera la ganancia con la técnica de micropropagación en un 162 % sobre la venta ilegal. Para la producción de maquique, en ningún lapso la micropropagación es redituable, ya que los costos de inversión superan a las ganancias en un 84 %. La técnica de micropropagación es redituable a largo y tal vez a mediano plazo cuando se propaga a la especie con el fin de venta para ornato.


Germinación asimbiótica in vitro de la orquídea Epidendrum radicans

Yareli Odemaris BUENDÍA LÓPEZ1,*, Julio Enrique MÉNDEZ FLORES1, Alejandro HERNÁNDEZ GARCÍA1, Héctor SERRANO2 y María Dolores GARCÍA SUÁREZ1 *[email protected]

1Laboratorio de Micropropagación y Ecofisiología Vegetal, Departamento de Biología, 2Laboratorio de Biología Molecular, Departamento de Ciencias de la Salud; División de CBS, Universidad Autónoma Metropolitana-‐Iztapalapa. Av. San Rafael Atlixco 186, Col. Vicentina, 09340 México, D.F., México

Epidendrum radicans, planta terrestre o litófita que llega a medir 2 m de alto, con cañas delgadas y hojas alternadas carnosas en toda su longitud, con raíces laterales adventicias a lo largo que se adhieren a rocas y troncos, llega a formar grandes cúmulos. Sus inflorescencias forma racimos que producen hasta 30 flores en sucesión de color naranja brillante. La especie puede florecer y formar frutos durante todo el año y, a diferencia de muchas orquídeas, es de fácil cultivo. Se pusieron a germinar las semillas asimbióticamente e in vitro provenientes de una cápsula colectada y sembrada en diciembre 2012; su germinación se dio utilizando como medio de cultivo Knudson C adicionado con plátano, sacarosa al 3 % y agargel. Los cultivos se mantuvieron en cámara de crecimiento con un temperatura de 32.5 °C/20 °C y fotoperiodo de 16 h/8 h luz/obscuridad. Los resultados muestran una germinación asimbiótica muy uniforme con una tasa de crecimiento bastante acelerada, ya que las plántulas hasta ahora obtenidas después de seis meses miden 1.5 cm, al igual que para otros géneros de orquídea como Laelia, los cuales presentan la misma longitud pero con un año de edad. Este resultado sugiere que esta planta presenta características semejantes a una colonizadora con una gran adaptación a proliferar fácilmente en condiciones naturales, así como también creciendo en sitios perturbados como ha sido reportada. Se le ha recolectado en diversos tipos de vegetación como bosques mesófilos, selvas tropicales y bosques de pino-‐encino; así mismo, se distribuye ampliamente desde Puebla, Veracruz, Oaxaca, Tabasco y Chiapas en México, y en Centroamérica hasta Panamá.


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