植物总 DNA 的提取 及琼脂糖凝胶电泳检测
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农业生物学实验教学中心
植物总植物总 DNADNA 的提取的提取及琼脂糖凝胶电泳检测及琼脂糖凝胶电泳检测
制作人:刘红梅
植物基因组 DNA的提取
琼脂糖凝胶电泳检测
脱氧核糖核酸 (DNA)、核糖核酸 (RNA) 与蛋白质结合在一起以核蛋白( DNP)的形式存
在。在制备核酸时通常破坏细胞壁及细胞膜来使核蛋白释放出来。
植物总 DNA包括细胞核 DNA和细胞核外 DNA,前者存在于细胞核内,后者存在于细胞质中有半自主性复制活性的细胞器内,例如线粒体DNA(mtDNA)和叶绿体 DNA(ctDNA)。
背景知识
核酸的存在形式
DNA为白色类似石棉样的纤维状物, RNA的纯品呈白色粉末或结晶。核酸和核苷酸大都呈酸味。 DNA、 RNA和核苷酸都是极性化合物,一般都溶于水,不溶于乙醇、氯仿等有机溶剂,它们的钠盐比游离酸易溶于水。在酸性溶液中,核酸易水解,中性或弱碱性溶液中较稳定。
核酸的理化性质
细胞破碎 抽提去蛋白质 沉淀核酸
基本过程
①机械方法: 超声波处理法、研磨法、匀浆法; ②化学试剂法:用 SDS处理细胞; ③酶解法: 加入溶菌酶或蜗牛酶,破坏细胞壁。
细胞破碎
SDS法 SDS是有效的阴离子去垢剂 , 细胞中 DNA与蛋白质之间 常借静电引力或配位键结合 , SDS能够破坏这种价键。
CTAB法 CTAB是一种阳离子去垢剂,它可以溶解膜与脂膜,使细胞中的 DNA-蛋白质复合物释放出来,并使蛋白质变性,使 DNA与蛋白质分离。
DNA提取
蛋白质 常用苯酚:氯仿:异戊醇( 25: 24:1 )或氯仿:异戊醇( 24: 1 )抽提。
RNA 常选用 RNase消化 ,或是用 LiCl来消除大分子的 RNA。
酚类物质 提取液中加少量巯基乙醇,选取幼嫩的材料。
多糖 提取液中加 1 % PVP。
DNA纯化(去杂质)
实验材料 新鲜蔬菜叶片 ( 去叶脉 )
试剂 2×CTAB抽提液 TE 缓冲液 (pH=8.0)
氯仿:异戊醇 (24:1)
材料与试剂
①离心机
②水浴锅
③研钵
④微量移液器
仪器用具
移液器-量程的选择
1 .取 2g 清洗凉干的新鲜叶片于研钵中,加 1/3 药匙石英砂和 4mL 2 倍的 CTAB 提取液,迅速研磨。
2 .将 1mL 研磨液转入 1.5mL 离心管中,置于 65℃水浴中保温 20min ,其间颠倒混匀 2 - 3 次。破碎细胞
3. 12000r/min 离心 5min ,取上清液 700μL 转到另一离心管中。加入等体积氯仿:异戊醇( 24:1 )混合液,充分颠倒混匀。 12000r/min ,离心 5min 。抽提去蛋白
4 .将上清液移入新的 1.5mL 离心管内,加 600µL 异丙醇。颠倒混匀,可见 DNA 絮状沉淀。沉淀核酸
5 . 12000r/min ,离心 1min ,倒掉上清液,将离心管倒置干燥。 将沉淀回溶于 20µL TE 缓冲液待测。
操作步骤
1) 选取新鲜材料,研磨迅速彻底,研磨好的材料应与 CTAB 抽提液充分混匀;
2)若提取产物有颜色,可能是材料中含有较多的多酚类物质,添加巯基乙醇( 2 - 5%),尽可能选取幼嫩的材料;
3 )收集 CTAB 与核酸形成的复合物时不要离心过度,否则沉淀再溶解难;
4 )为了获得具有生物活性的天然核酸,在分离制备过程中必须采用温和的条件,避免过酸过碱、剧烈地搅拌,防止热变性,同时还要避免核酸降解酶类的降解。
注意事项
DNA分子在高于等电点的 PH溶液中带负电荷,在电场中向正极移动。在一定电场强度下, DNA分子的迁移速度与相对分子质量的对数成反比。
电泳原理
琼脂糖是一种线性多糖聚合物。浓度越高,孔隙越小,其分辨能力就越强。
琼脂糖浓度琼脂糖浓度(%)(%)
线型线型 DNADNA分子的分离范围分子的分离范围(Kb)(Kb)
0.30.3 55 ~~ 6060
0.60.6 11 ~~ 2020
0.70.7 0.80.8 ~~ 1010
0.90.9 0.50.5 ~~ 77
1.21.2 0.90.9 ~~ 66
1.51.5 0.20.2 ~~ 33
12.012.0 0.10.1 ~~ 22
仪器和试剂
仪器– 电泳仪– 电泳槽– 灌胶模具等
–Tris-硼酸( TBE) Tris-乙酸( TAE) Tris-磷酸( TPE)
常用电泳缓冲液
电泳指示剂溴酚兰在碱性液体中呈紫兰色,一般与蔗糖、甘油或聚蔗糖 400组成上样缓冲液。 作用:
①增加样品比重,以确保 DNA均匀沉入加样孔内。
②形成肉眼可见的指示带,预测核酸电泳的速度和位置。
③使样品呈色,使加样操作更方便。
上样缓冲液
溴化乙锭( EB)是一种荧光染料, EB分子可嵌入核酸双链的碱基对之间,在紫外线激发下,发出红色荧光。其荧光强度与 DNA的含量成正比。据此可粗略估计样品 DNA浓度。
琼脂糖凝胶 EB染色,肉眼可见核酸电泳带,其 DNA量一般 >5ng。
核酸染色剂
注意事项:EB是致癌物质,切勿用手接触,更不要污染环境。
–DNA分子量标准
不同种类D
NA
Mark
er
1.凝胶制备 制备 0.8%琼脂糖凝胶。称取适量琼脂糖加入 20mL 0.5×TBE,加热至琼脂糖全部熔化,冷却至 50-60 ℃ 时,加入 EB 至终浓度 0.5µg/mL。缓慢倒入胶板,待胶凝固后拔出梳子。2.加样 取 10µl DNA样液与 2µl 上样 buffeer 混匀,用微量移液器小心加入样品槽。3.电泳 接通电源,切记靠近加样孔的一端为负,电压为 1~5V/cm(长度以两个电极之间的距离计算) , 待溴酚兰移动到一定位置,停止电泳。4.观察拍照
四、操作步骤
紫外仪上观察电泳带及其位置。绘制核酸电泳示意图。
作业
1. 结合原理,简述 CTAB 法分离提取植物总 DNA 的基本过程。
2. 为了获得高质量的植物总DNA,在分离提取过程中应注意那些问题?
What?!
How?!
思考