Post on 23-Dec-2015
Interacciones Beneficiosas
Microorganismos-Planta
DORIS ZÚÑIGA DÁVILA
LEMYB-UNALM
dzuniga@lamolina.edu.pe
Universidad San Antonio de Abad del Cusco
Setiembre 12, 2014
IX ENCUENTRO LATINOAMERICANO Y DEL CARIBE DE BIOTECNOLOGIA
REDBIO 2016 – PERU
Lima Junio 27-Julio 1, 2016
BIOTECNOLOGIA PARA EL DESARROLLO Y USO SOSTENIBLE DE LA
BIODIVERSIDAD
CUARTO TALLER 2014: TALLER REGIONAL
CUSCO PRE-IX ENCUENTRO REDBIO 2016-
PERU
Nitrobacter Nitrosomonas
Pseudomonas
Bacillus y otros aerobios
facultativos
Clostridium pasteurianum
Cianobacterias
Rhizobium
Azotobacter
Beijerinckia
Bacterias del ciclo del nitrógeno
Nitrobacter
Pseudomonas
Bacillus y otros aerobios
facultativos
Clostridium pasteurianum
Nitrobacter
Pseudomonas
Bacillus y otros aerobios
facultativos
Cianobacterias
Rhizobium
Azotobacter
Beijerinckia
Clostridium pasteurianum
Nitrobacter
Pseudomonas
Bacillus y otros aerobios
facultativos
N2
O2 CO
2 Fotosintato
FLOEMA
XILEMA Mitocondria
Bacteroide
Glucosa PEP AOA malato PEPC MDH
AOA
aspartato PHB ATC RF
CITOSOL
ATC ATP
cetoácidos
aminoácidos
ATP e-
NH4 N2 N
NH4
LbO2
Lb
O2
CO2
ATC
Bacteroides
H Leghemoglobina
Según Dakora y Keya (1997)
Leguminosas de árboles 43-581 Kg N/ha
Leguminosas de grano 15-210 Kg N/ha
Sesbania sesban cultivado con cereales en una ha:
448 Kg N, 31 Kg P, 125 Kg K, 114 Kg Ca y 27.3
Kg Mg.
Ibewiro et al (2000)
Mucuna pruriens cultivado con Zea mays
P. vulgaris 24 - 65 Kg N/ha
v. soya 54 -248 KgN/ha
Nitrógeno fijado por diferentes cultivos
Factores: genética bacteria, genética planta,
medio ambiente, manejo agrícola
N químico 20 100
Haba FN 75% 65%
Garbanzo 30% 15%
Haba mucho mejor en un sistema de policultivo
Vicia faba
var. amarilla
Peso Verde
Peso Seco
Peso Seco
Número
CEPAS
Altura
Parte Aérea
Parte Aérea
Raíz
Nódulos
(cm)
(gr)
(gr)
(gr)
Le 1
35.00 A
3.13 AB
0.30 BCD
0.12 CDE
1.33
Le 2
36.00 A
3.57 AB
0.33 ABCD
0.12 CDE
1.67
Le 3
37.66 A
3.27 AB
0.34 ABCD
0.16 ABCD
1
Le 4
34.00 A
3.10 AB
0.28 BCD
0.21 A
1
Le 5
32.33 AB
3.36 AB
0.35 ABCD
0.21 A
1.33
Le 6
34.00 A
3.10 AB
0.33 ABCD
0.11 DE
1.33
Le 7
32.00 AB
3.90 A
0.39 AB
0.18 ABC
2.33
Le 8
33.66 A
3.23 AB
0.35 ABC
0.14 BCDE
2.33
Le 9
36.00 A
3.63 AB
0.17 E
0.09 EF
1.33
Le 10
31.66 AB
3.20 AB
0.30 BCD
0.14 BCDE
2
Le 11
34.00 A
3.70 AB
0.38ABC
0.18 AB
2.33
Le 12
35.00 A
3.97 A
0.38 A B
0.11 DE
0
Le 13
29.66 AB
3.23 AB
0.33 ABCD
0.13 BCDE
0
Le 14
30.00 AB
3.03 AB
0.26 CDE
0.12 DE
0
Le 15
32.33 AB
3.63 AB
0.32 ABCD
0.17 ABCD
1.33
Le 16
35.00 A
3.83 A
0.44 A
0.13 BCDE
0
Le 17
35.00 A
3.17 AB
0.33 ABCD
0.14 BCDE
0
Le 18
35.33 A
3.53 AB
0.32ABCD
0.13 BCDE
1
Le 19
35.00 A
4.00 A
0.38 AB
0.16 ABCD
1.67
Control
24.66 B
2.53 B
0.23 DE
0.05 F
0
Análisis mecánico Cambiables
ClC Ca2+
Mg2+
K+ Na
+
Lugar C.E.
dS/m
Arena
%
Limo
%
Arcilla
% Textura
pH CaCO3
%
MO
%
P
ppm
K
ppm
cmol(+)kg
Al+3
+H+
me/100g
Acobamba 0.41 50 30 120 Franco 5.8 0.0 1.76 13 466 20.8 11.76 3.33 1.25 0.2 0.11
Pachacayo Franco 7.3 2.6 11.4 609
Lugar Altura
(msm)
T minima
(C0)
T máxima
(C0)
pp (mm/mes)
Acobamba 2500 8 22 0 - 500
Pachacayo 3600 -3.47 19.97 0 - 550.4
Características del suelo de Pachacayo (Jauja)
Clima de Pachacayo (Jauja)
0
Bacterias mesófilas
400
800
1200
Ene Mar May Jul Set Nov
Hongos totales
Con fósforo Sin fósforo
0
20
40
60
80
100
120
Ene Mar May Jul Set Nov
Rhizobium
0
100
200
300
Ene Mar May Jul Set Nov
Azotobacter
0
200
400
600
Ene Mart May Jul Set Nov
Capacidad inhibitoria de diferentes cepas de Azotobacter sp sobre cinco
cepas sobre el crecimiento de diferentes cepas de Rhizobium,
(Rhizobium incorporación)
CEPA DE RHIZOBIUM EN AGAR
LEVADURA MANITOL
PRUEBA DE ACIDEZ EN AGAR
LEVADURA MANITOL CON AZUL DE
BROMOTIMOL
PRUEBA DE AUTENTICACION
DE LAS CEPAS DE
BRADY(RHIZOBIUM)
NODULOS FORMADOS POR
LA CEPA PSC4N2
EN LA AUTENTICACION
PRUEBA DE ANTIBIOTICO EN DISCO CRECIMIENTO A pH
8.8
DIFERENCIAS ENTRE UNA RAIZ SIN
NODULOS Y UNA RAIZ CON NODULOS
FORMADOS POR LA CEPA PSNC4N2 EN
RAIZ DE PALLAR CRIOLLO
COLORACION INTERNA DEL
NODULO
CEPA PSNC4N2
MORFOLOGIA
Codigos Muestreo Lugar pH C.E. Tamaño crecim. viraje texturaaparie. goma
1% 2% 3% 4% 8 37 40 4 5 8 9
PPC5N3Pampa de los CastillosLa Venta 7.71 1.26 2.5 mm. Rapido Ama int Lig Brill Reg 3 3 2 0 1 0 1 1 1 2 2
PCEBL2N2Cerro Blanco Ocucaje 7.59 1.90 4 mm. Rapido Ama int Crem Opa Reg 3 3 1 0 1 0 1 0 0 0 0
PLV4N2 Las viñas Ocucaje 7.51 1.17 4 mm. Rapido Amarillo Crem Opa Reg 3 3 2 2 1 2 1 0 0 3 2
PLV4N3 Las viñas Ocucaje 7.51 1.17 3 mm. Rapido Amarillo Crem L. Opa Reg 3 2 2 1 1 2 1 0 1 3 2
VB2N1 Venta Baja La Venta 7.52 1.26 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 0 0 0 1 1 1 0 1 2 2
PCEBL4N1Cerro Blanco Ocucaje 7.59 1.90 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 1 0 0 0 3 0 0 0 2 3
PCEBL3N3Cerro Blanco Ocucaje 7.59 1.90 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 1 0 0 0 2 0 0 0 2 2
PCEBL1N4Cerro Blanco Ocucaje 7.59 1.90 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 1 1 0 1 2 1 0 0 2 3
PCYGIVN3 Cayango Cayango 7.49 0.86 0.2 mm. Lento Azul te Crem Opa L. Abu 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0
PCEBL1N2San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Esc 1 1 0 0 1 2 1 0 0 2 2
VB2N3 Venta Baja La Venta 7.52 1.26 1 mm. Lento Azul te Lig Opa Reg 1 1 0 0 1 2 1 0 1 1 2
PSRG2N3Sector GodoyLa Venta 7.42 1.26 1 mm. Extralen Azul in Crem Opa Reg 2 2 2 1 0 0 1 0 0 2 2
PSNC2N3 San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 0.1 mm. Extralen Azul in Lig Opa Esc 0 0 0 0 0 1 1 1 1 2 2
PSNC4N3 San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 0.1 - 0.2 mm.Extralen Azul in Crem Brill Esc 1 1 0 0 0 1 0 0 0 2 2
PTN1N1 Tambo Norte Ocucaje 7.32 0.39 0.1 mm. Extralen Azul in Lig Opa Esc 1 0 0 0 0 1 1 0 0 2 2
PSNC4N2 San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 0.5 mm. Extralen Azul in Lig Opa Esc 2 2 2 1 0 2 1 0 0 2 2
PSC3N2 San CamiloSan Camilo 7.49 1.01 0.2 mm. Extralen Azul in Lig Opa Esc 1 1 0 0 1 1 1 0 0 2 2
PSrG4N1(a)Sector GodoyLa Venta 7.42 1.26 0.2 mm. Extralen Azul in Lig Brill Esc 1 1 1 0 0 1 0 0 0 0 2
CUADRO DE CEPAS AISLADAS DE PALLARPRUEBAS BIOQUIMICAS
NaCl Temp. ph
Caracterización morfológica y bioquímica de las cepas de
Brady(Rhizobium) aisladas de pallar
o, no crecimiento 2, bueno
1, poco 3, abundante Ocucaje y Cayango: nodulos más grandes y más abundantes
N Codigo LMA Fenotipo del medio de cultivo Solub.Fosf
Tam Color Text C Halo
E1 BMP1Nod1 48h 1mm rosadas elástica + +
E5 BMP1Nod4-2 48h 3mm rosadas mucosa + +
E8 BMP2Nod4 48h 1mm rosadas mucosa + +
E10 FCCP1Nod2 48h 2mm rosadas mucosa + +
E13 FCCP2Nod2 48h 1mm rosadas mucosa + +
E14 FCCP2Nod3 48h 2mm rosadas mucosa + +
E15 FCCP2Nod4 48h 1y 2 d rosadas mucosa + +
E16 FCCP2Nod5- 48h 1y 2 d rosadas elástica + +
E17 FCCP3Nod1 48h 2mm rosadas mucosa + +
E18 FCCP3Nod2- 48h 2.5mm rosadas elástica 4+ 4+
E21 FCCP3Nod4 48h 2mm rosadas elástica 4+ 4+
E22 FCCP3Nod5 48h 0.5mm rosadas mucosa 3+ 3+
E26 AAP3Nod4-2 48h 2mm rosadas mucosa 3+ 3+
CIAT 899 R.tropici 48h 2mm rosadas mucosa 3+ +
CFN42 R.ettli 48h 2mm rosadas elástica 3+ 2+
Rhizobios aislados de tres variedades de P. vulgaris de La UNALM-Lima
E2 BMP1Nod2 24h 2mm Atorz/ros acuosas 2+ 5+
E3 BMP1Nod5 24h 3mm rosadas acuosas 2+ 4+
E4 BMP1Nod4-1 24h 3mm rosadas mucosa 2+ 2+
E6 BMP2Nod1 24h 4mm rosadas acuosas 4+ 2+
E7 BMP2Nod3 24h 4mm rosadas acuosas 4+ -
E9 FCCP1Nod1 24h 4mm rosadas acuosas 4+ -
E11 FCCP1Nod5 24h 2mm rosadas acuosas 4+ -
E20 FCCP3Nod3 24h 3mm rosadas acuosas + 2+
E27 AAP3Nod1-1 24h 3mm rosadas acuosas 3+ 3+
E28 AAP3Nod4 24h 3mm rosadas acuosas + 3+
PGPR? aislados de tres variedades de P. vulgaris de La UNALM-Lima
Perfil Eric de diferentes bacterias aisladas de P. vulgaris
rhizobios CFN42
CIAT 899
Cepa (9) 3 4 6 7 9 11 20 27 28
P(7) A B C D E E1 F G
Cepa (11) 1 5 10 13 14 15 16 17 18 21 26
P(5)+3* A B C C D C D1 E C1 D2
Bacterias PGPR? 1Kb
Gen 16S
Gen rpoB
*Secuencias consenso repetidas intergénicas de enterobacterias
Arbol filogenético del
gen 16S
Bacterias PGPR?
Aisladas de P. vulgaris
AY738130 R lusitanum p1 7 D14501D01257 A rhizogenes IFO1
U89832 R tropici CIAT899 USDA9 U29386 R leguminosarum USDA237
U28916 R etli CFN42 USDA9032 U71078 R hainanense I66
AF364068 R indigoferae CCBAU71 Y10170 R sullae IS123 USDA4950
U89817 R mongolense USDA1844 U86343 R gallicum R602sp
AF003375 R yanglingense SH2262 AF364069 R loessense CCBAU7190
D11343 R galegae ATCC43677 AF025852 R huautlense SO2 E4
Y17047 R undicola LMG11875 D14502D01258 A vitis NCPPB3554
U86344 R giardinii H152 AY341343 R daejeonense L61 KCT
D14503D01259 A rubi IFO13261 D14500D01256 A tumefaciens NCP E20 E27 E6 E3, E11, E9 E28
X67229 M loti LMG6125 Y14158 M plurifarium LMG11892 D13431 M huakuii IFO15243
99
100
93
100
83
69
70
75
97
100
92
99
99
64
98
75
90
87
98 60
80
61
67
0.005
S1, S4, S5 S6 S13 S11
S22 R. leguminosarum USDA 2370
R. indigoferae R. etli CFN42T
E10, E18, E13, E15 E17 E16, E14, E26 E1 P2N3
R yanglingense CCBAU71623 R. gallicum R602sp R. mongolense USDA1844 R. loessense CCBAU7190B
A. rhizogenes Kag3 R. tropici CFN299
A. rhizogenes Chag4 R. huautlense SO2 E5
R. galegae R. undicola LMG11875
A. tumefaciens C58 R3, R5 R6
Mesorhizobium loti USDA3471
100
100
94
79
51
100
55
100
93
100
100
54
100
99
100
95
89
98
100
98
99
87
65
0.02
Arbol filogenético del
Gen rpoB V. faba
P. vulgaris
P. lunatus
RESULTADOS PROMEDIOS DE LOS CARACTERES EVALUADOS EN EL
FRIJOL CANARIO CENTENARIO INOCULADOS CON CEPAS DE
RHIZOBIUM, APLICACIÓN DE BIOESTIMULANTES Y FERTILIZACIÓN .
Rhizobium y Rhizobium + bioestimulante a la floración presentaron
mayores rendimientos
Rhizobium y Bioestimulantes en prefloración y en floración alcanzaron mayores
valores de rentabilidad que el tratamiento químico – 5 -
RENTABILIDAD DE LOS TRATAMIENTOS EVALUADOS
Índice de rentabilidad en la arveja grano verde
T1 0 Kg N/ha (densidad alta)
T2 150 Kg N/ha (densidad alta)
T3 Inoculada (densidad alta)
T4 0 Kg N/ha (densidad baja)
T5 150 Kg N/ha (densidad baja)
T6 Inoculada (densidad baja)
T7 0 Kg N/ha (densidad media)
T8 150 Kg N/ha (densidad media)
T9 Inoculada (densidad media)
Rhizobium comparable al
N químico
Efecto de las PGPRs en la germinación y el
contenido de nutrientes del cultivo de quinua
Var. Witulla, kankolla y salcedo
Cn plantas control,
C14, c25, c32 plantas inoculadas
Var, kankolla y salcedo
R rhizobios
Ac actinomicetos
Invernadero-la molina
Campo -Arequipa
G con bacterias psicrótrofa
Muestreo de rizosfera del
Cultivo de papa
Análisis
microbiológico
Aislamiento de Bacterias del género
Bacillus spp. Actinomycetos spp. Azotobacter spp. Pseudomona spp.
Control de fitopatógenos
1
2 3
4 5
6
Control de Rhizoctonia solani por cepas de Bacillus
Bacterias y control de fitopatógenos
National Botanical Research
Institute's phosphate growth
medium (NBRIP) Nautiyal C. S.
1999.
Solubilización de fosfato
Azotobacter
Variedad Yungay
0
5
10
15
20
25
Control
B.A
BacE
1a
Bac17M
8+
pe
so
(g
r)
Peso seco de tuberculo Peso seco planta
Variedad Canchan
0
5
10
15
20
25
30
Con
trol
B.A
Bac
C7M
1IB1
pe
so
(g
r)
Peso seco tuberculo Peso seco de planta
Peso de tubérculo y de la planta
Prueba de Tukey HSD
Perfil Box de cepas de Bacillus
Box-PCR
Total de cepas 20
Perfiles Box 8
Perfiles Erick 8
Plus 2g 2p 6 8 10 12 26 27 9 21 22 23 24 25 + 14 15 19 20 17 30
A A B C C C C C C1 C1 C1 C1 C1 C1 D E E E F G
DNA
1Kb
12000
2000
1650
1000
850
500
200
100
Eric-PCR A B C C C C C D C C C C C E F F F G H
Análisis tipo fingerprint o huella
genómica con alta reproducibilidad
encontrada en S. pneumoniae
(secuencia repetida conservada)
Caja:boxA, boxB y boxC, 59,45,50
pb
B. amyloliquefaciens BCRC 14193 (EF433408)
B. amyloliquefaciens Bac3M7
B. amyloliquefaciens Bac17M13, Bac17M9
B. amyloliquefaciens Bac7M3
B. amyloliquefaciens BCRC 17467 (EF433407)
B. amyloliquefaciens FZB42,Bac3M5
B. amyloliquefaciens Bac8M7(1), BacNe2d
B. amyloliquefaciens BCRC 17038 (DQ993675)
B. amyloliquefaciens BCRC 11601T (EF433406)
B. amyloliquefaciens BCRC 14711 (EF423607)
B. vallismortis
B. subtilis subsp. subtilis
B. subtilis subsp. spizizenii
B. mojavensis
Bacillus sp. Bac17M11
B. atrophaeus
B. cereus group100
95
60
68
72
84
88
0.005
Arbol filogenético de
cepas de Bacillus
Con el gen r16S - +, - + *
+ -, + +
*Sol. Fósforo,
Pro. AIA
+ +
Género Cepa P. I. (%)
Pseudomonas sp
IcPS01-17 84.0%
IcPS01-18 83.3%
IcPS01-19 88%
IcPS02 82.0%
IcPS02-27 75.3%
Bacillus sp
IcBac01-4 78.7%
IcBac02-1 84.7%
IcBac02-9 86%
IcBac02-
12 91.3%
IcBac02-
13 93.3%
IcBac02-
14 83.3%
IcBac02-
15 74.0%
IcBac02-
16 85.3%
IcBac02-
21 77.3%
IcBac02-
22 76.7%
IcBac02-
23 85.3%
IcBac03-4 82.7%
IcBac03-5 83.3%
P.I. Porcentaje de Inhibición
Actividad antagonista in vitro de bacterias del género
Pseudomonas sp y Bacillus sp contra Sclerotinia slcerotiorum
Actividad antagónica de (A) cepas de Bacillus sp (IcBac02-1) y (B) Pseudomonas sp (IcPs02) contra (C) S. sclerotiorum al 3er día de evaluación
A B
C
Resientes estudios Control de fitopatógenos en Frijol
Figura 3. Actividad antagónica de cepas
obtenidas de la filósfera de plantas de café frente a M.
citricolor. A: M. citricolor (control) y B y C: Interacción M. citricolor
– cepa.
A B
† Prueba estadística ANOVA LSD (p value < 0.05)
A B
C
CEPA Porcentaje de inhibición †
Control 0 a
TS FL T7 9 b
CS ED T6 12 b
CS ED T5 13 b
CS ED T9 15.5 b
CRS FL T5 31 c
CS ED T7 31 c
TS FL T8 33 cd
TS FL T10 33 cd
TS FL T4 33 cd
CS FL T6 35.5 cd
CRR FL T6 35.5 cd
TS FL T3 35.5 cd
TR FL T8 36.5 cde
TS FL T2 38 cde
CRR FL T8 39 cde
CRR FL T5 39 cde
CRR FL T7 39 cde
CS FL T7 40 de
CS FL T5 44 e
CS FL T4 44 e
Tabla 4. Capacidad de cepas aisladas de la Filósfera de café para inhibir el crecimiento del hongo Mycena citricolor, un fitopatógeno foliar del café.
control de la roya en el cafe
Ensayo a nivel de invernadero ALTURA DE PLANTAS DE QUINUA
var. Kcancolla Ensayo a nivel de Invernadero. Todos los tratamientos inoculados son superiores al control usando pellets y usando inoculante liquido.
Donde
CN: Control;
BA: Bacillus; AC:
Actinomiceto y
RH: Rhizobium;
todos aislados de
la rizósfera de
quinua
Peletización en Quinua
Ensayo a nivel de campo
Efecto de la Inoculación en el
crecimiento del cultivo de
Quinua en los campos de
Santa Rita (Arequipa) y
Salcedo (Puno) utilizando
cepas PGPR
Donde C32: Pseudomona
aislada de la rizósfera de maca;
PS44, AC4, RH27:
Son cepas aisladas de la rizósfera de
quinua
Universidad Nacional
San Cristóbal de Huamanga
Universidad Nacional
Agraria La Molina
Universidad Nacional
de Cajamarca
Universidad Nacional
San Agustín de Arequipa
Universidad Nacional
Pedro Ruiz Gallo
Instituciones que producen inoculantes
Amazonía
Andes
Costa
Universidad Nacional Agraria
de la Selva, Tingo María
Estación Ecológica de Andahuaylas (micorrizas)
IDEMA, Instituto de Defensa del Medio Ambiente Azotolam y Rizolam
Rizomack
Rizocaj
Ecorizo
Producción de bioinoculantes
Control de calidad de inoculantes
comercializados •:
Soporte sólidos* y líquidos
•Control Microbiológico •Control físico químico
Recuento de heterótrofos Ph
Recuento de mohos y
levaduras
CE
Recuento de actinomycetos Humedad
Recuento de Escherichia coli Metales pesados*
Anaerobios totales otros
Recuento de Rhizobium,
Azotobacter, según el caso
NMP de Rhizobium en plantas
Análisis Moleculares
Plásmidos simbióticos
Perfiles Box
Definición de parámetros
Para límites permisibles
Mínimos para Rhizobium
108 cel/ml o 108 cel/ g
Máximos para el resto de mo.
Interacción del inoculante con otros
productos
NORMATIVA EN BRASIL, URUGUAY Y
ARGENTINA, EN PERU INSIPIENTE
20%
9%
13%
37%
9%
12%
0
5
10
15
20
25
30
35
40
Productos Biológicos
- Bacterias
Productos Biológicos
- Hongos
Productos Biológicos
- extractos vegetales
Bioestimulantes Feromonas Otros
Bacterias: Bacillus thurigiensis, B. subtilis Hongos: Trichoderma spp., Paecilomyces lilacinus
Extractos vegetales: aceites de ricinus, ficus Bioestimulantes: Giberelinas, Auxinas
Feromonas: Gossyplure Otros: Ác. Ascórbico, quitosano, etc.
PLAGUICIDAS BIOLOGICOS DE USO AGRICOLA REGISTRADOS EN SENASA - 2013
PQ, 545
PB, 250
Conclusiones
• Según la Dra Hungría , se aproxima una década de oro para la microbiología del suelo en la industria, agricultores y la sociedad.
• Para el 2040, 2 billones de personas necesitan ser alimentadas, pero a su vez el mapa concetración demografica coincide con el mapa de degradación de suelos, tornandose mas critico la producción de alimentos en lugares mas vulnerables.
• El consumo de fertilizantes es cuantioso, 173 millones de toneladas y sigue creciendo, y resulta muy costoso para los paises que lo importan.
• Hay contribuciones significativas por Arachis, Censtrosema, Desmodium y Lupinus por ej, entre 200 a 520 kg de N ha. Por ello las bfn son fundamentales en la agricultura.
• Todos estos estudios nos permite hacer una selección integral de las mejores cepas bacterianas capaces de promover el crecimiento de la planta aun en condiciones de estres para una aplicación en el campo.
• Se han encontrado respuestas positivas en cultivos de frijol, pallar, papa, maca, aguaymanto, quinua entre otros, aplicando inoculantes microbianos.
• Los parámetros mejorados son, rendimiento, materia seca, contenido de nutrientes, acido arcorbico, glucosinolatos.
• También baja la incidencia de daño causado por agentes fitopatógenos, Rhizoctonia, Fusarium, nematodes entre otros.
• Los microorganismos claves funcionan en condiciones de estres por frio, deficiencia de humedad, suelos salinos, entre otros.
• formulación de un biofertilizante/controlador biológico que sea económico cuyo uso este orientado hacia la agricultura sustentable y aplicable en diferentes regiones del pais.
Instituciones Internacionales
•CCG, U Nacional Autónoma de México, Cuernavaca-México, Dra. E.
Martínez.
•Universidad de Salamanca. España, Dra. E. Velásquez.
•CSIC, Granada España, Dr. J. Sanjuan
•U Central de Venezuela, Dra. M. Toro
•U. Estadual de Londrina-Brasil, Dr. G.Andrade
•CNR-Italia, Dra. M. Finetti
•CERELA, Tucumán – Argentina. Dra. Graciela Vignolo
Instituciones Nacionales
. UNALM Programa de tuberosas, Programa de leguminosas, Ind.
Alimentarias
. INIA-Ministerio de Agricultura, Estación Experimental Ilpa-Puno. Estación
Experimental Santa Rita – Arequipa
. UNSLGI-Ica
.UNSCH-Ayacucho
Otros: Ecoandino SAC, AA Ica, AA Ocucaje, AA Aymara
Colaboraciones, Redes
Redes: BIOFAG, Cyted-España, Comclara-Alice2
R Peruana de Biofertilizantes, Concytec-UNALM
Publicaciones en Libros
2012. Manual de Microbiología Agrícola. Rhizobium, PGPRs, indicadores de
fertilidad e Inocuidad. D. Zúñiga Dávila. Universidad Nacional Agraria La
Molina.
2011. Microorganisms in Industry and Environment. D. Zúñiga Dávila, J.
Tolentino Macalupú, M. García Wong, W. Pérez Porras, M. Matsubara Bautista,
L. Ramos Pajuelo & K. Ogata. Characterization of rhizospheric bacteria isolated
from maca (Lepidium meyenii W.) in the highlands of Junin-Peru. From scientific
and industrial research to consumer products. Antonio Mendez Vilas (ed) World
Scientific Pub Co. Chapter: 21-25.
2011. Microorganisms in Industry and Environment. D. Yino Oshiro, L.
Ramos Pajuelo, M. Matsubara Bautista, L. Espinoza Melgar and D. Zúñiga
Dávila. Effect of different rhizospheric bacterias in the growth of Gossypium
barbadense L. in Perú. From scientific and industrial research to consumer
products. Antonio Mendez Vilas (ed) World Scientific Pub Co. Chapter: 41-44.
• 2014. Ormeño et al. cepas nuevas de bradyrhizobium aisladas de pallar
• 2014. Arcos y Zúñiga. Rizobacterias en el cultivo de papa
• 2014. Zúñiga et al. rizobacterias en el cultivo de quinua en zona de arequipa
• 2013. Ramos et al. P. punonensis aisladas de la zona de Puno
• 2010. Annals of Applied Biology. 157: 259-271. Oswald A, Calvo P, Zúñiga D, Arcos J. 2010. Evaluating soil rhizobacteria for their ability to enhance plant growth and tuber yield in potato
• 2010. Braziliam Journal of Microbiology 41: 899-906. Calvo, P. Ormeño, E. Martínez, E., Zúñiga, D. 2010. Characterization of Bacillus isolates of potato rhizosphere from Andean soils of Peru and their potential PGPR characteristics.
• 2010. Biological Nitrogen Fixation and Plant Associated Microorganisms. Ogata K, Lorite M J, Sanjuan J, Zúñiga D. Growth and motility of plant growth promoting rhizobacteria isolated from maca rhizophere. In XIII Sefin. 15 18 June. Ed. M Becana. Zaragoza. Spain. Pag 35-36.
• 2010. Ecología Aplicada 9: 31-39. Calvo, P. y Zúñiga, D. 2010. Caracterización bioquímica y fisiológica de cepas de Bacillus spp. aislados de la rizosfera de papa (Solanum tuberosum).
• 2009. Archives of Microbiology 191: 659 – 668. Alvarez-Martinez, E; Valverde, A; Ramirez-Bahena, M; Garcia-Fraile, P; Tejedor, C; Mateos, P; Santillana, N; Zúñiga, D; Peix, A; Velázquez, E. 2009. The analysis of core and symbiotic genes of Vicia sativa and Vicia faba rhizobial endosymbionts from different continents reveals their common phylogenetic origin and suggests the distribution of R. leguminosarum strains together with Vicia seeds in the world.
• 2008. Ecología Aplicada 7: 141-148. Calvo, P., Reymundo, L. y Zúñiga, D.. Estudio de las Poblaciones Microbianas de la rizosfera del cultivo de papa (Solanum tuberosum) en zonas altoandinas.
• 2008. Ecología Aplicada 7: 131-139. Ramos, E. y Zúñiga, D. Efecto de diferentes inoculantes sobre la actividad microbiana en la rizósfera del cultivo de pallar (Phaseolus lunatus var. sieva) en condiciones de campo.
Publicaciones en Revistas Científicas
Tesis de Biología
P Calvo, N Kohashikawa, C la Torre, M García, W Pérez, J Tolentino, L
Ramos, C Arango, P Ortiz, C Ayaipoma, J. Mayo.
Tesis de Maestría y Doctorado
E Ramos, M. Memenza, M Matsubara, K Ogata, R Santos
N Santillana, J Arcos, L Reymundo, L Espinoza,
Proyectos
Procyt-Concytec, Especial-Concytec, Protec-Concytec, Procom-Concytec
L’oreal-Unesco-Concytec, Proyecto bilateral CSIC- Concytec, Proyecto
bilateral Mincyt – Concytec, Proyecto Fincyt, Proyecto Fidecom, Itunalm.
Profesores
UNALM: Dra. C. Velezmoro, Dr. F. Camarena, Biol. K. Ogatta Ing. R.
Egúzquiza, Dr. F. Camarena, Ing. A. Huaringa, A. Mostaceros
Proyectos de Investigación
Laboratorio de Ecología Microbiana Y Biotecnología
Universidad Nacional Agraria La Molina
Lima - Perú
ENTREGADO EL 17 DE JULIO 2014
III IBEMPA 27 RELAR-2017
Bioreactores
cromatógrafo de gases
termociclador en
tiempo real entre otros
.Producción de bioinoculantes
A bajos costos
.Producción de metabolitos
.Transcriptómica de la
interacciones Moleculares
entre la bacteria,
fitopatógeno-planta